ISSN 0300-9092 (Print)
ISSN 2412-5679 (Online)

Изучение формирования биопленок на сетчатых имплантах, применяемых при хирургическом лечении пролапса тазовых органов

Шалепо К.В., Хуснутдинова Т.А., Будиловская О.В., Крысанова А.А., Русина Е.И., Цыпурдеева А.А., Ярмолинская М.И., Савичева А.М.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта», Санкт-Петербург Россия

Цель. Изучение формирования биопленок in vitro на сетчатых имплантатах, применяемых при хирургическом лечении пролапса тазовых органов.
Материалы и методы. В исследовании использовали 6 фрагментов медицинских сетчатых имплантатов: полипропиленовые (Реперен, Россия – (КС1), Gynemesh PS, США – (КС2)) и титановый (Титановый шелк, Россия – (КС3)). Применяли клинические изоляты микроорганизмов, выделенных из вагинального биотопа и образующих бактериальные биопленки: Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Streptococcus agalactiae и Candida albicans. Способность к образованию биопленок определяли в полистироловых плоскодонных планшетах. Уровень образования биопленки на дне лунки планшета и на поверхности сетки после совместного культивирования изолятов микроорганизмов и фрагментов сетки в течение 24 и 48 ч определяли в единицах оптической плотности.
Результаты. На поверхности всех исследуемых сетчатых имплантатов бактериальные пленки не образовывались как в течение 24, так и 48 ч: оптическая плотность элюента при совместном культивировании полипропиленовой сетки и S. aureus составила 0,174 и 0,179 через 24 и 48 ч соответственно, т.е. была на уровне оптической плотности отрицательного контроля. Аналогичные результаты были получены для других исследуемых сетчатых имплантатов. 
Заключение. Полипропиленовые и титановые сетчатые материалы высоко устойчивы к колонизации микроорганизмами и образованию биопленок на их поверхности.

Вклад авторов. Шалепо К.В. – методология, дизайн и координация исследования, написание и редактирование рукописи; Хуснутдинова Т.А., Будиловская О.В., Крысанова А.А. – участие в подготовке рукописи и редактирование рукописи; Русина Е.И. – координация исследования, участие в подготовке рукописи и редактирование рукописи; Цыпурдеева А.А., Ярмолинская М.И. – редактирование рукописи, утверждение окончательного варианта статьи; Савичева А.М. – концепция и координация исследования, редактирование рукописи, утверждение окончательного варианта статьи. Все авторы подтверждают соответствие своего авторства критериям ICMJE, внесли существенный вклад в проведение поисково-аналитической работы и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию для публикации.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликтов интересов.
Финансирование. Исследование выполнено в рамках научной темы ФНИ «Разработка лечебных стратегий, направленных на активное долголетие женщин», рег. № 1024032800068-4-3.2.2.
Одобрение этического комитета. Исследование было одобрено экспертной комиссией ФГБНУ «НИИ АГиР им. Д.О. Отта» 13 января 2026 г.
Обмен исследовательскими данными. Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.
Для цитирования: Шалепо К.В., Хуснутдинова Т.А., Будиловская О.В., Крысанова А.А., Русина Е.И., Цыпурдеева А.А., Ярмолинская М.И., Савичева А.М. Изучение формирования биопленок на сетчатых имплантах, применяемых при хирургическом лечении пролапса тазовых органов.
Акушерство и гинекология. 2026; 5: 99-106
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2026.17

Ключевые слова

бактериальные биопленки
вагинальные микроорганизмы
сетчатый имплантат

Список литературы

  1. Deffieux X., Perrouin-Verbe M.A., Campagne-Loiseau S., Donon L., Levesque A., Rigaud J. et al. Diagnosis and management of complications following pelvic organ prolapse surgery using a synthetic mesh: French national guidelines for clinical practice. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2024; 294(2): 170-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2024.01.015
  2. Donlan R.M., Costerton J.W. Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms. Clin. Microbiol. Rev. 2002; 15(2): 167-93. https://dx.doi.org/10.1128/CMR.15.2.167-193.20023
  3. Yin W., Wang Y., Liu L., He J. Biofilms: the microbial "protective clothing" in extreme environments. Int. J. Mol. Sci. 2019; 20(14): 3423. https://dx.doi.org/10.3390/ijms20143423
  4. Hall C.W., Mah T.F. Molecular mechanisms of biofilm-based antibiotic resistance and tolerance in pathogenic bacteria. FEMS Microbiol. Rev. 2017; 41(3): 276-301. https://dx.doi.org/10.1093/femsre/fux010
  5. Høiby N., Bjarnsholt T., Moser C., Bassi G.L., Coenye T., Donelli G. et al. ESCMID guideline for the diagnosis and treatment of biofilm infections 2014. Clin. Microbiol. Infect. 2015; 21 Suppl 1: S1-S25. https://dx.doi.org/10.1016/j.cmi.2014.10.024
  6. Roman S., Mangir N., Bissoli J., Chapple C.R., MacNeil S. Biodegradable scaffolds designed to mimic fascia-like properties for the treatment of pelvic organ prolapse and stress urinary incontinence. J. Biomater. Appl. 2016; 30(10): 1578-88. https://dx.doi.org/10.1177/0885328216633373
  7. Wi Y.M., Patel R. Understanding biofilms and novel approaches to the diagnosis, prevention, and treatment of medical device-associated infections. Infect. Dis. Clin. North Am. 2018; 32(4): 915-29. https://dx.doi.org/10.1016/j.idc.2018.06.009
  8. Francolini I., Donelli G. Prevention and control of biofilm-based medical-device-related infections. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2010; 59(3): 227-38. https://dx.doi.org/10.1111/j.1574-695X.2010.00665.x
  9. Khatoon Z., McTiernan C.D., Suuronen E.J., Mah T.F., Alarcon E.I. Bacterial biofilm formation on implantable devices and approaches to its treatment and prevention. Heliyon. 2018; 4(12): e01067. https://dx.doi.org/10.1016/j.heliyon.2018.e01067
  10. Omwenga E.O., Awuor S.O. The bacterial biofilms: formation, impacts, and possible management targets in the healthcare system. Can. J. Infect. Dis. Med. Microbiol. 2024; 2024: 1542576. https://dx.doi.org/10.1155/cjid/1542576
  11. Serrano-Aroca Á., Pous-Serrano S. Prosthetic meshes for hernia repair: state of art, classification, biomaterials, antimicrobial approaches, and fabrication methods. J. Biomed. Mater. Res. A. 2021; 109(12): 2695-719. https://dx.doi.org/10.1002/jbm.a.37238
  12. Calabrese G., Franco D., Petralia S., Monforte F., Condorelli G.G., Squarzoni S. et al. Dual-functional nano-functionalized titanium scaffolds to inhibit bacterial growth and enhance osteointegration. Nanomaterials (Basel). 2021; 11(10): 2634. https://dx.doi.org/10.3390/nano11102634
  13. Lin F.C., Gilleran J.P., Powell C.R., Atiemo H.O. To mesh or not mesh "apical prolapse," that is the question! Neurourol. Urodyn. 2024; 43(7): 1626-30. https://dx.doi.org/10.1002/nau.25469
  14. Mangir N., Roman S., Chapple C.R., MacNeil S. Complications related to use of mesh implants in surgical treatment of stress urinary incontinence and pelvic organ prolapse: infection or inflammation? World J. Urol. 2020; 38(1): 73-80. https://dx.doi.org/10.1007/s00345-019-02679-w
  15. Birolini C., Faro Junior M.P., Terhoch C.B., de Miranda J.S., Tanaka E.Y., Utiyama E.M. Microbiology of chronic mesh infection. Hernia. 2023; 27(4): 1017-23. https://dx.doi.org/10.1007/s10029-023-02747-6
  16. Cevasco M., Itani K.M. Ventral hernia repair with synthetic, composite, and biologic mesh: characteristics, indications, and infection profile. Surg. Infect. (Larchmt). 2012; 13(4): 209-15. https://dx.doi.org/10.1089/sur.2012.123
  17. Kao A.M., Arnold M.R., Augenstein V.A., Heniford B.T. Prevention and treatment strategies for mesh infection in abdominal wall reconstruction. Plast. Reconstr. Surg. 2018; 142(3S): 149S-55S. https://dx.doi.org/10.1097/PRS.0000000000004871
  18. Dipp Ramos R., O’Brien W.J., Gupta K., Itani K.M.F. Re-infection after explantation of infected hernia mesh: are the same micro-organisms involved? Surg. Infect. (Larchmt). 2021; 22(10): 1077-80. https://dx.doi.org/10.1089/sur.2021.142
  19. Birolini C., Tanaka E.Y., de Miranda J.S., Murakami A.H., Damous S.H.B., Utiyama E.M. The early outcomes of complex abdominal wall reconstruction with polyvinylidene (PVDF) mesh in the setting of active infection: a prospective series. Langenbecks Arch. Surg. 2022; 407(7): 3089-99. https://dx.doi.org/10.1007/s00423-022-02625-2
  20. Birolini C., de Miranda J.S., Tanaka E.Y., Utiyama E.M., Rasslan S., Birolini D. The use of synthetic mesh in contaminated and infected abdominal wall repairs: challenging the dogma-A long-term prospective clinical trial. Hernia. 2020; 24(2): 307-23. https://dx.doi.org/10.1007/s10029-019-02035-2
  21. Birolini C., de Miranda J.S., Utiyama E.M., Rasslan S. A retrospective review and observations over a 16-year clinical experience on the surgical treatment of chronic mesh infection. What about replacing a synthetic mesh on the infected surgical field? Hernia. 2015; 19(2): 239-46. https://dx.doi.org/10.1007/s10029-014-1225-9
  22. Christensen G.D., Simpson W.A., Younger J.J., Baddour L.M., Barrett F.F., Melton D.M. et al. Adherence of coagulase-negative staphylococci to plastic tissue culture plates: a quantitative model for the adherence of staphylococci to medical devices. J. Clin. Microbiol. 1985; 22(6): 996-1006. https://dx.doi.org/10.1128/jcm.22.6.996-1006.1985
  23. Slade E.A., Thorn R.M.S., Young A.E., Reynolds D.M. Real-time detection of volatile metabolites enabling species-level discrimination of bacterial biofilms associated with wound infection. J. Appl. Microbiol. 2022; 132(3): 1558-72. https://dx.doi.org/10.1111/jam.15313
  24. Ganj F.A., Ibeanu O.A., Bedestani A., Nolan T.E., Chesson R.R. Complications of transvaginal monofilament polypropylene mesh in pelvic organ prolapse repair. Int. Urogynecol. J. Pelvic. Floor Dysfunct. 2009; 20(8): 919-25. https://dx.doi.org/10.1007/s00192-009-0879-9
  25. Negut I., Albu C., Bita B. Advances in antimicrobial coatings for preventing infections of head-related implantable medical devices. Coatings. 2024; 14(3): 256. https://dx.doi.org/10.3390/coatings14030256
  26. Okui N., Okui M.A. Pathological insights on polypropylene mesh complications from laparoscopic sacrocolpopexy: a case series. Cureus. 2024; 16(3): e56354. https://dx.doi.org/10.7759/cureus.56354
  27. Franco-Duarte R., Černáková L., Kadam S., Kaushik K.S., Salehi B., Bevilacqua A. et al. Advances in chemical and biological methods to identify microorganisms-from past to present. Microorganisms. 2019; 7(5): 130. https://dx.doi.org/10.3390/microorganisms7050130
  28. Verhorstert K.W.J., Guler Z., de Boer L., Riool M., Roovers J.W.R., Zaat S.A.J. In vitro bacterial adhesion and biofilm formation on fully absorbable poly-4-hydroxybutyrate and nonabsorbable polypropylene pelvic floor implants. ACS Appl. Mater. Interfaces. 2020; 12(48): 53646-53. https://dx.doi.org/10.1021/acsami.0c14668

Поступила 11.01.2026

Принята в печать 23.04.2026

Об авторах / Для корреспонденции

Шалепо Кира Валентиновна, к.б.н., с.н.с. группы экспериментальной микробиологии, НИИ АГиР им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург,
Менделеевская линия, д. 3, +7(911)247-41-51, 2474151@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-3002-3874
Хуснутдинова Татьяна Алексеевна, к.м.н., с.н.с. группы экспериментальной микробиологии, НИИ АГиР им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург,
Менделеевская линия, д. 3, husnutdinovat@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0002-2742-2655
Будиловская Ольга Викторовна, к.м.н., с.н.с. группы экспериментальной микробиологии, НИИ АГиР им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург,
Менделеевская линия, д. 3, o.budilovskaya@gmail.com, https://orcid.org/0000-0001-7673-6274
Крысанова Анна Александровна, к.м.н., с.н.с. группы экспериментальной микробиологии, НИИ АГиР им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург,
Менделеевская линия, д. 3, krusanova.anna@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-4798-1881
Русина Елена Ивановна, д.м.н., в.н.с. группы экспериментальной микробиологии, НИИ АГиР им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург,
Менделеевская линия, д. 3, pismo_rusina@mail.ru, eLibrary SPIN: 3527-5104, https://orcid.org/0000-0002-8744-678X
Цыпурдеева Анна Алексеевна, к.м.н., с.н.с. группы экспериментальной микробиологии, НИИ АГиР им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург,
Менделеевская линия, д. 3, tsypurdeeva@mail.ru, eLibrary SPIN: 5208-9707, https://orcid.org/0000-0001-7774-2094
Ярмолинская Мария Игоревна, профессор РАН, д.м.н., профессор, Заслуженный деятель науки РФ, руководитель отдела гинекологии и эндокринологии,
НИИ АГиР им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, m.yarmolinskaya@gmail.com, eLibrary SPIN: 3686-3605,
https://orcid.org/0000-0002-6551-4147
Савичева Алевтина Михайловна, заслуженный деятель науки РФ, д.м.н., профессор, заведующая отделом медицинской микробиологии, НИИ АГиР им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3, savitcheva@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-3870-5930
Автор, ответственный за переписку: Кира Валентиновна Шалепо, 2474151@mail.ru

Также по теме