Оценка эффективности in vitro компонентов препарата «Депантол» против биопленок, сформированных вагинальными микроорганизмами

Шалепо К.В., Спасибова Е.В., Будиловская О.В., Крысанова А.А., Хуснутдинова Т.А., Чеберя А.С., Чеберя А.Р., Савичева А.М.

1) ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии имени Д.О. Отта», Санкт-Петербург, Россия; 2) ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России, Санкт-Петербург, Россия; 3) ФГБОУ ВО «Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова», Санкт-Петербург, Россия

Цель: Оценка эффективности in vitro компонентов препарата «Депантол» против биопленок,
сформированных вагинальными микроорганизмами.
Материалы и методы: Исследовано 33 клинических изолята чистых культур микроорганизмов, выделенных из вагинального биотопа и образующих бактериальные пленки: G. vaginalis (2 изолята), E. coli (3 изолята), K. pneumoniae (3 изолята), K. piersonii (1 изолят), C. freundii (3 изолята), A. baumannii (3 изолята), S. agalactiae (3 изолята), E. faecalis (3 изолята), S. aureus (3 изолята), и дрожжеподобных грибов рода Candida (9 изолятов). 
Для исследования использовали плотные и жидкие селективные питательные среды. Идентификацию микроорганизмов проводили методом MALDI-TOF-масс-спектрометрии (Bruker Microflex). Способность к образованию биопленок оценивали по модифицированному протоколу Christensen 
et al. (1985).
Для оценки эффективности действия in vitro компонентов препарата «Депантол» против биопленок использовали разные разведения компонентов препарата (хлоргексидина биглюконат, декспантенол, макроголы).
Результаты: Все 33 клинических изолята образовывали биопленки разной степени плотности. Декспантенол в исследуемых концентрациях и макрогол не оказали влияния на биопленки. Хлоргексидина биглюконат 1% раствор оказывал разрушающее действие на биопленки, сформированные большинством вагинальных бактерий. Это в первую очередь G. vaginalis – оба тестируемых изолята, все E. coli, клинический изолят K. piersonii, все E. faecalis, S. aureus и все изоляты дрожжеподобных грибов рода Candida, как C. albicans, так и C. non-albicans (C. parapsilosis и C. glabrata). Среди трех изолятов K. pneumoniae, C. freundii, A. baumannii, S. agalactiae разрушение биопленок имело место у двух.
Заключение: Среди компонентов препарата «Депантол» эффективность хлоргексидина биглюконата 1% раствора по действию на бактериальные пленки в отношении Gardnerella vaginalis, Escherichia coli, Klebsiella piersonii, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus и дрожжеподобных грибов рода Candida, как C. albicans, так и C. non-albicans (C. parapsilosis и C. glabrata), была 100%. В отношении других микроорганизмов она составила 70%.

Вклад авторов: Савичева А.М. – обзор публикаций по теме статьи, анализ полученных данных, одобрение окончательной версии статьи; Шалепо К.В., Спасибова Е.В. – проведение исследования, написание рукописи; Будиловская О.В., Хуснутдинова Т.А., Крысанова А.А., Чеберя А.С., Чеберя А.Р. – редактирование текста, одобрение окончательной версии статьи.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликтов интересов.
Финансирование: Работа выполнена без спонсорской поддержки. 
Одобрение Этического комитета: Исследование одобрено локальным Этическим комитетом ФГБНУ 
«НИИ АГиР им. Д.О. Отта».
Обмен исследовательскими данными: Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.
Для цитирования: Шалепо К.В., Спасибова Е.В., Будиловская О.В., Крысанова А.А., Хуснутдинова Т.А., Чеберя А.С., Чеберя А.Р., Савичева А.М. Оценка эффективности in vitro компонентов препарата «Депантол» против биопленок, сформированных вагинальными микроорганизмами. 
Акушерство и гинекология. 2024; 10: 158-166
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2024.256

Ключевые слова

биопленки
вагинальные микроорганизмы
хлоргексидина биглюконат
декспантенол
макрогол
Депантол

Список литературы

  1. Limoli D.H., Jones C.J., Wozniak D.J. Bacterial extracellular polysaccharides in biofilm formation and function. Microbiol. Spectr. 2015; 3(3): 10.1128/microbiolspec.MB-0011-2014. https://dx.doi.org/10.1128/microbiolspec.MB-0011-2014.
  2. Atiencia-Carrera M.B., Cabezas-Mera F.S., Tejera E, Machado A. Prevalence of biofilms in Candida spp. bloodstream infections: A meta-analysis. PLoS One. 2022; 17(2): e0263522. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0263522.
  3. Cangui-Panchi S.P., Ñacato-Toapanta A.L., Enríquez-Martínez L.J., Reyes J., Garzon-Chavez D., Machado A. Biofilm-forming microorganisms causing hospital-acquired infections from intravenous catheter: A systematic review. Curr. Res. Microb. Sci. 2022; 3: 100175. https://dx.doi.org/10.1016/j.crmicr.2022.100175.
  4. Yin W., Wang Y., Liu L., He J. Biofilms: the microbial "Protective Clothing" in extreme environments. Int. J. Mol. Sci. 2019; 20(14): 3423. https://dx.doi.org/10.3390/ijms20143423.
  5. Cangui-Panchi S.P., Ñacato-Toapanta A.L., Enríquez-Martínez L.J., Salinas-Delgado G.A., Reyes J., Garzon-Chavez D. et al. Battle royale: Immune response on biofilms - host-pathogen interactions. Curr. Res. Immunol. 2023; 4: 100057. https://dx.doi.org/10.1016/j.crimmu.2023.100057.
  6. Ciarolla A.A., Lapin N., Williams D., Chopra R., Greenberg D.E. Physical approaches to prevent and treat bacterial biofilm. Antibiotics (Basel). 2022; 12(1): 54. https://dx.doi.org/10.3390/antibiotics12010054.
  7. Hall-Stoodley L., Stoodley P., Kathju S., Høiby N., Moser C., Costerton J.W. et al. Towards diagnostic guidelines for biofilm-associated infections. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2012; 65(2): 127-45. https://dx.doi.org/10.1111/j.1574-695X.2012.00968.x.
  8. Lebeaux D., Chauhan A., Rendueles O., Beloin C. From in vitro to in vivo models of bacterial biofilm-related infections. Pathogens. 2013; 2(2): 288-356. https://dx.doi.org/10.3390/pathogens2020288.
  9. Bjarnsholt T., Ciofu O., Molin S., Givskov M., Høiby N. Applying insights from biofilm biology to drug development - can a new approach be developed?. Nat. Rev. Drug Discov. 2013; 12(10): 791-808. https://dx.doi.org/10.1038/nrd4000.
  10. Swidsinski A., Mendling W., Loening-Baucke V., Swidsinski S., Dörffel Y., Scholze J. et al. An adherent Gardnerella vaginalis biofilm persists on the vaginal epithelium after standard therapy with oral metronidazole. Am J Obstet Gynecol. 2008; 198(1): 97.e1-6.1. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2007.06.039.
  11. Machado A., Jefferson K.K., Cerca N. Interactions between Lactobacillus crispatus and bacterial vaginosis (BV)-associated bacterial species in initial attachment and biofilm formation. Int. J. Mol. Sci. 2013; 14(6): 12004-12. https://dx.doi.org/10.3390/ijms140612004.
  12. Савичева А.М., Крысанова А.А., Шалепо К.В., Спасибова Е.В., Будиловская О.В., Хуснутдинова Т.А., Тапильская Н.И., Коган И.Ю., Свидзинский А.В., Свидзинская С. Применение метода флуоресцентной гибридизации in situ в диагностике бактериального вагиноза. Акушерство и гинекология. 2023; 12: 68-77.
  13. Савичева А.М., Спасибова Е.В., Шалепо К.В. Исследование чувствительности Streptococcus agalactiae, выделенных из урогенитального тракта, к действующим веществам, входящим в состав препарата «Депантол». Российский вестник акушера-гинеколога. 2017; 17(6): 96-100.
  14. Gristina A.G., Costerton J.W. Bacterial adherence to biomaterials and tissue. The significance of its role in clinical sepsis. J. Bone Joint Surg. Am. 1985; 67: 264-73.
  15. LaFleur M.D., Kumamoto C.A., Lewis K. Candida albicans biofilms produce antifungal-tolerant persister cells. Antimicrob. Agents Chemother. 2006; 50(11): 3839-46. https://dx.doi.org/10.1128/AAC.00684-06.
  16. Lewis K. Riddle of biofilm resistance. Antimicrob. Agents Chemother. 2001; 45(4): 999-1007. https://dx.doi.org/10.1128/AAC.45.4.999-1007.2001.
  17. Zhao A., Sun J., Liu Y. Understanding bacterial biofilms: From definition to treatment strategies. Front Cell Infect. Microbiol. 2023; 13: 1137947. https://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2023.1137947.
  18. Шалепо К.В., Михайленко Т.Г., Савичева А.М. Роль бактериальных пленок в формировании хронических патологических процессов во влагалище и эндометрии. Журнал акушерства и женских болезней. 2016; 65(4): 65-75.
  19. Wang S., Zhao Y., Breslawec A.P., Liang T., Deng Z., Kuperman L.L. et al. Strategy to combat biofilms: a focus on biofilm dispersal enzymes. NPJ Biofilms Microbiomes. 2023; 9(1): 63. https://dx.doi.org/10.1038/s41522-023-00427-y.
  20. Harris J.B., Monir R.L., Schoch J.J. Chlorhexidine gluconate for antisepsis in preterm neonates: A review of safety and efficacy. Pediatr. Dermatol. 2024; 41(5): 786-92. https://dx.doi.org/10.1111/pde.15709.
  21. Sionov R.V., Steinberg D. Targeting the holy triangle of quorum sensing, biofilm formation, and antibiotic resistance in pathogenic bacteria. Microorganisms. 2022; 10(6): 1239. https://dx.doi.org/10.3390/microorganisms10061239.
  22. Shen Y., Stojicic S., Haapasalo M. Antimicrobial efficacy of chlorhexidine against bacteria in biofilms at different stages of development. J. Endod. 2011; 37(5): 657-61. https://dx.doi.org/10.1016/j.joen.2011.02.007.
  23. Alvendal C., Mohanty S., Bohm-Starke N., Brauner A. Anti-biofilm activity of chlorhexidine digluconate against Candida albicans vaginal isolates. PLoS One. 2020; 15(9): e0238428. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0238428.
  24. Kramer A., Assadian O., Koburger-Janssen T. Antimicrobial efficacy of the combination of chlorhexidine digluconate and dexpanthenol. GMS Hyg. Infect. Control. 2016; 11: Doc24. https://dx.doi.org/10.3205/dgkh000284.

Поступила 18.10.2024

Принята в печать 23.10.2024

Об авторах / Для корреспонденции

Шалепо Кира Валентиновна, к.б.н., с.н.с. отдела медицинской микробиологии, НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия,
Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3; доцент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО, Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет Минздрава России, +7(911)247-41-51, 2474151@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-3002-3874
Спасибова Елена Владимировна, врач-бактериолог лаборатории клинической микробиологии, НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта,
199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3; ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО, Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет Минздрава России, elena.graciosae@gmail.com, https://orcid.org/0009-0002-6070-4651
Будиловская Ольга Викторовна, к.м.н., с.н.с. группы экпериментальной микробиологии, НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3; ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО, Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет Минздрава России, o.budilovskaya@gmail.com, https://orcid.org/ 0000-0001-7673-6274
Крысанова Анна Александровна, к.м.н., с.н.с. отдела медицинской микробиологии, НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3; ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО, Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет, krusanova.anna@mail.ru, https://orcid.org/ 0000-0003-4798-1881
Хуснутдинова Татьяна Алексеевна, к.м.н., с.н.с. группы экпериментальной микробиологии, НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3; ассистент кафедры клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО, Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет Минздрава России, husnutdinovat@yandex.ru, https://orcid.org/ 0000-0002-2742-2655
Чеберя Александра Сергеевна, лаборант-исследователь лаборатории микробиологии, НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3; студентка 6 курса, Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова, alexa-vorobjeva.09@yandex.ru,
https://orcid.org/0009-0008-1091-5753
Чеберя Александр Романович, лаборант-исследователь лаборатории микробиологии, НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3; студент 6 курса, Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова, sanekcheberya@yandex.ru,
https://orcid.org/0009-0006-9058-6720
Савичева Алевтина Михайловна, д.м.н., профессор, Заслуженный деятель науки РФ, заведующая отделом медицинской микробиологии, НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта, 199034, Россия, Санкт-Петербург, Менделеевская линия, д. 3; заведующая кафедрой клинической лабораторной диагностики ФП и ДПО, Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет Минздрава России, savitcheva@mail.ru, https://orcid.org/ 0000-0003-3870-5930
Автор, ответственный за переписку: Кира Валентиновна Шалепо, 2474151@mail.ru

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.