Диалог эмбриона и эндометрия: ключевые факторы имплантации
Александрова Н.В., Асатурова А.В., Боженко В.К.
Ключевой проблемой в программах вспомогательных репродуктивных технологий остается повторная неудача имплантации (ПНИ), значительная доля случаев которой обусловлена нарушением рецептивности эндометрия и сложностью точного определения времени «окна имплантации».
В статье представлен систематический анализ современных методов оценки рецептивности эндометрия – от традиционных ультразвуковых и морфологических подходов до высокотехнологичных омиксных платформ (тесты ERA, rsERT, beREADY). Детально рассмотрены результаты клинических и экспериментальных исследований, демонстрирующих эффективность подходов для расчета персонального «окна имплантации». Особое внимание уделено необходимости внедрения неинвазивных методов оценки рецептивности эндометрия, в том числе на основе анализа секретома эндометрия (белков, цитокинов, внеклеточных везикул), что позволит проводить мониторинг в режиме реального времени.
Заключение. Дальнейшее развитие диагностических панелей представляется в интеграции мультиомиксных технологий (транскриптомики, протеомики, метаболомики) с методами искусственного интеллекта для создания динамических прогностических моделей с последующей разработкой персонализированных терапевтических стратегий.
Вклад авторов. Боженко В.К. – концепция и дизайн обзора; Александрова Н.В. – поиск и анализ литературных источников, написание текста; Асатурова А.В. – редактирование и критический пересмотр содержания.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование. Работа выполнена без спонсорской поддержки.
Генеративный искусственный интеллект. При подготовке статьи технологии генеративного искусственного интеллекта не использовали.
Для цитирования: Александрова Н.В., Асатурова А.В., Боженко В.К.
Диалог эмбриона и эндометрия: ключевые факторы имплантации.
Акушерство и гинекология. 2026; 8: 22-28
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2026.67
Ключевые слова
Список литературы
- Кадыров З.А., Фаниев М.В., Прокопьев Я.В., Фаустова К.В., Севрюков Ф.А., Водолажский Д.И., Крупин В.Н. Репродуктивное здоровье населения России как ключевой фактор демографической динамики. Вестник современной клинической медицины. 2022; 15(5): 100-6. https://dx.doi.org/10.20969/VSKM.2022.15(5).100-106 [Kadyrov Z.A., Faniev M.V., Prokopiev Y.V., Faustova K.V., Sevryukov F.A., Vodolazhsky D.I., Krupin V.N. Reproductive health of the Russian population as a key factor of demographic dynamics. The Bulletin of Contemporary Clinical Medicine. 2022; 15(5): 100-6 (in Russian). https://dx.doi.org/10.20969/VSKM.2022.15(5).100-106].
- Kushnir V.A., Smith G.D., Adashi E.Y. The future of IVF : the new normal in human reproduction. Reprod. Sci. 2022; 29(3): 849-56. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-021-00829-3
- Tschare L., Ennemoser A., Carli L., Vaccari E., Feichtinger M. Impact of maternally derived meiotic aneuploidies on early embryonic development in vitro. J. Assist. Reprod. Genet. 2023; 40(11): 2715-23. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-023-02922-9
- Karimi S., Baharaghdam S., Danaii S., Yousefi M. Embryo-maternal cross-talk: key players in successful implantation and live birth rates. Reprod. Biol. Endocrinol. 2025; 23(1): 136. https://dx.doi.org/10.1186/s12958-025-01477-x
- Cozzolino M., Diaz-Gimeno P., Pellicer A., Garrido N. Evaluation of the endometrial receptivity assay and the preimplantation genetic test for aneuploidy in overcoming recurrent implantation failure. J. Assist. Reprod. Genet. 2020; 37(12): 2989-97. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-020-01948-7
- Cimadomo D., de Los Santos M.J., Griesinger G., Lainas G., Le Clef N., McLernon D.J. et al.; ESHRE Working Group on Recurrent Implantation Failure. ESHRE good practice recommendations on recurrent implantation failure. Hum. Reprod. Open. 2023; 2023(3): hoad023. https://dx.doi.org/10.1093/hropen/hoad023
- Matsumoto H., Fukui E., Yoshizawa M. Molecular and cellular events involved in the completion of blastocyst implantation. Reprod. Med. Biol. 2016; 15(2): 53-8. https://dx.doi.org/10.1007/s12522-015-0222-8
- Paulson R.J. Introduction: Endometrial receptivity: evaluation, induction and inhibition. Fertil. Steril. 2019; 111(4): 609-10. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2019.02.029
- Maziotis E., Kalampokas T., Giannelou P., Grigoriadis S., Rapani A., Anifantakis M. et al. Commercially available molecular approaches to evaluate endometrial receptivity: a systematic review and critical analysis of the literature. Diagnostics. 2022; 12(11): 2611. https://dx.doi.org/10.3390/diagnostics12112611
- Harvey A.J., Willson B.E., Surrey E.S., Gardner D.W. Ovarian stimulation protocols: impact on oocyte and endometrial quality and function. Fertil. Steril. 2025; 123(1): 10-21. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2024.08.340
- Ochoa-Bernal M.A., Fazleabas A.T. Physiologic events of embryo implantation and decidualization in human and non-human primates. Int. J. Mol. Sci. 2020; 21(6): 1973. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21061973
- Liu K.E., Hartman M., Hartman A., Luo Z.C., Mahutte N. The impact of a thin endometrial lining on fresh and frozen–thaw IVF outcomes: an analysis of over 40 000 embryo transfers. Hum. Reprod. 2018; 33(10): 1883-8. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dey281
- Noyes R.W., Hertig A.T., Rock J. Reprint of: Dating the endometrial biopsy. Fertil. Steril. 2019; 112(4 Suppl1):e93-e115. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2019.08.079
- Quinn K.E., Matson B.C., Wetendorf M., Caron K.M. Pinopodes: recent advancements, current perspectives, and future directions. Mol. Cell. Endocrinol. 2020; 501: 110644. https://dx.doi.org/10.1016/j.mce.2019.110644
- Li J., Liu H., Lim J., Xing H., Chen Y., Yang S. et al. Molecular and biological markers for assessing endometrial receptivity in infertile women: a narrative review. J. Int. Med. Res. 2025; 53(4): 03000605251328893. https://dx.doi.org/10.1177/03000605251328893
- Fox C., Morin S., Jeong J.W., Scott R.T. Jr, Lessey B.A. Local and systemic factors and implantation: what is the evidence? Fertil. Steril. 2016; 105(4): 873-84. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2016.02.018
- Massimiani M., Lacconi V., La Civita F., Ticconi C., Rago R., Campagnolo L. Molecular signaling regulating endometrium-blastocyst crosstalk. Int. J. Mol. Sci. 2019; 21(1): 23. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21010023
- Chung T.W., Park M.J., Kim H.S., Choi H.J., Ha K.T. Integrin αVβ3 and αVβ5 are required for leukemia inhibitory factor-mediated the adhesion of trophoblast cells to the endometrial cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2016; 469(4): 936-40. https://dx.doi.org/10.1016/j.bbrc.2015.12.103
- Zhang Y., Tang L., Liu H., Cheng Y. The multiple functions of HB-EGF in female reproduction and related cancer: molecular mechanisms and targeting strategies. Reprod. Sci. 2024; 31(9): 2588-603. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-024-01454-6
- Rottenstreich A., Coller B.S. The potential role of the αVβ3 integrin receptor in placental biology and normal and complicated pregnancies. Br. J. Haematol. 2025; 206(4): 1054-61. https://dx.doi.org/10.1111/bjh.20019
- D’Occhio M.J., Campanile G., Zicarelli L., Visintin J.A., Baruselli P.S. Adhesion molecules in gamete transport, fertilization, early embryonic development, and implantation-role in establishing a pregnancy in cattle: A review. Mol. Reprod. Dev. 2020; 87(2): 206-22. https://dx.doi.org/10.1002/mrd.23312
- Francis L.W., Yao S.N., Powell L.C., Griffiths S., Berquand A., Piasecki T. et al. Highly glycosylated MUC1 mediates high affinity L-selectin binding at the human endometrial surface. J. Nanobiotechnology. 2021; 19(1): 50. https://dx.doi.org/10.1186/s12951-021-00793-9
- Zhou M., Tian T., Wu C. Mechanism underlying the regulation of mucin secretion in the uterus during pregnancy. Int. J. Mol. Sci. 2023; 24(21): 15896. https://dx.doi.org/10.3390/ijms242115896
- Jain M., Samokhodskaya L., Mladova E., Panina O. Mucosal biomarkers for endometrial receptivity: A promising yet underexplored aspect of reproductive medicine. Syst. Biol. Reprod. Med. 2022; 68(1): 13-24. https://dx.doi.org/10.1080/19396368.2021.1985186
- Wu F., Mao D., Liu Y., Chen X., Xu H., Li T.C. et al. Localization of Mucin 1 in endometrial luminal epithelium and its expression in women with reproductive failure during implantation window. J. Mol. Histol. 2019; 50(6): 563-72. https://dx.doi.org/10.1007/s10735-019-09848-6
- Wu F., Chen X., Liu Y., Liang B., Xu H., Li T.C. et al. Decreased MUC1 in endometrium is an independent receptivity marker in recurrent implantation failure during implantation window. Reprod. Biol. Endocrinol. 2018; 16(1): 60. https://dx.doi.org/10.1186/s12958-018-0379-1
- Shekibi M., Heng S., Nie G. MicroRNAs in the regulation of endometrial receptivity for embryo implantation. Int. J. Mol. Sci. 2022; 23(11): 6210. https://dx.doi.org/10.3390/ijms23116210
- Altmäe S., Koel M., Võsa U., Adler P., Suhorutšenko M., Laisk-Podar T. et al. Meta-signature of human endometrial receptivity: a meta-analysis and validation study of transcriptomic biomarkers. Sci. Rep. 2017; 7(1): 10077. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-017-10098-3
- von Grothusen C., Frisendahl C., Modhukur V., Lalitkumar P.G., Peters M., Faridani O.R. et al. Uterine fluid microRNAs are dysregulated in women with recurrent implantation failure. Hum. Reprod. 2022; 37(4): 734-46. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deac019
- Glujovsky D., Lattes K., Miguens M., Pesce R., Ciapponi A. Personalized embryo transfer guided by endometrial receptivity analysis: a systematic review with meta-analysis. Hum. Reprod. 2023; 38(7): 1305-17. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dead098
- Hashimoto T., Koizumi M., Doshida M., Toya M., Sagara E., Oka N. et al. Efficacy of the endometrial receptivity array for repeated implantation failure in Japan: A retrospective, two‐centers study. Reprod. Med. Biol. 2017; 16(3): 290-6. https://dx.doi.org/10.1002/rmb2.12041
- Enciso M., Aizpurua J., Rodríguez-Estrada B., Jurado I., Ferrández-Rives M., Rodríguez E. et al. The precise determination of the window of implantation significantly improves ART outcomes. Sci. Rep. 2021; 11(1): 13420. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-021-92955-w
- Enciso M., Carrascosa J.P., Sarasa J., Martínez-Ortiz P.A., Munné S., Horcajadas J.A. et al. Development of a new comprehensive and reliable endometrial receptivity map (ER Map/ER Grade) based on RT-qPCR gene expression analysis. Hum. Reprod. 2018; 33(2): 220-8. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dex370
- Burmenskaya O.V., Bozhenko V.K., Smolnikova V.Y., Kalinina E.A., Korneeva I.E., Donnikov A.E. et al. Transcription profile analysis of the endometrium revealed molecular markers of the personalized ‘window of implantation’ during in vitro fertilization. Gynecol. Endocrinol. 2017; 33(supl. 1): 22-7. https://dx.doi.org/10.1080/09513590.2017.1404236
- Li J., Liu H., Lim J., Xing H., Chen Y., Yang S. et al. Molecular and biological markers for assessing endometrial receptivity in infertile women: A narrative review. 2025; 53(4): 03000605251328893. https://dx.doi.org/10.1177/03000605251328893
- Li N., Zhang Y., Li R., Chen Y., Huang L., Tan Z. et al. Personalized embryo transfer guided by rsERT improves pregnancy outcomes in patients with repeated implantation failure. Front. Med. 2024; 11: 1369317. https://dx.doi.org/10.3389/fmed.2024.1369317
- Meltsov A., Saare M., Teder H., Paluoja P., Arffman R.K., Piltonen T. et al. Targeted gene expression profiling for accurate endometrial receptivity testing. Sci. Rep. 2023; 13(1): 13959. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-023-40991-z
- Gurung S., Greening D.W., Catt S., Salamonsen L., Evans J. Exosomes and soluble secretome from hormone-treated endometrial epithelial cells direct embryo implantation. Mol. Hum. Reprod. 2020; 26(7): 510-20. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gaaa034
- Rai A., Poh L., Fatmous M., Fang H.A., Gurung Sh., Vollenhoven B. et al. Proteomic profiling of human uterine extracellular vesicles reveal dynamic regulation of key players of embryo implantation and fertility during menstrual cycle. Proteomics. 2021; 21(13-14). https://dx.doi.org/10.1002/pmic.202000211
- Poh Q.H., Rai A., Salamonsen L.A., Greening D.W. Omics insights into extracellular vesicles in embryo implantation and their therapeutic utility. Proteomics. 2023. 23(6): 1-28. https://dx.doi.org/10.1002/pmic.202200107
- Welsh J.A., Goberdhan D.C.I., O'Driscoll L., Buzas E.I., Blenkiron C., Bussolati B. et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles (MISEV2023): From basic to advanced approaches. J. Extracell. Vesicles. 2024; 13(2): e12404. https://dx.doi.org/10.1002/jev2.12451
- Salamonsen L.A., Evans J., Nguyen H.P.T., Edgell T.A. The microenvironment of human implantation: Determinant of reproductive success. Am. J. Reprod. Immunol. 2016; 75(3): 218-25. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12450
Поступила 25.02.2026
Принята в печать 26.06.2026
Об авторах / Для корреспонденции
Александрова Наталья Владимировна, д.м.н., с.н.с. НКО ВРТ с клиническим отделением им. Ф. Паулсена, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России,117997, Россия, Москва, ул. Акад. Опарина, д. 4, +7(495)531-44-44, alexnat1@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0001-7353-9515
Асатурова Александра Вячеславовна, д.м.н., заведующая 1-м патологоанатомическим отделением, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва, ул. Акад. Опарина, д. 4, +7(495)438-23-11, a_asaturova@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0001-8739-5209
Боженко Владимир Константинович, д.м.н., профессор, консультант директора, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России, 117997, Россия, Москва,
ул. Акад. Опарина, д. 4, +7(903)799-64-84, vbojenko@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-8351-8152



