Структурные особенности плодных оболочек при преждевременных родах

Низяева Н.В., Карапетян А.О., Гапаева М.Д., Синицына В.А., Баев О.Р.

1) ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва; 2) ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» (Сеченовский университет) Минздрава России, Москва, Россия
Цель. Изучить структурные изменения плодных оболочек при преждевременных родах в отсутствие их воспалительных изменений.
Материалы и методы. Проанализированы плодные оболочки 25 последов: 14 – от спонтанных преждевременных родов в 28–36 недель, 7 – от своевременных самопроизвольных родов при неосложненной беременности; 4 – от преждевременных оперативных родов по поводу гипоксии плода, преждевременной отслойки нормально расположенной плаценты, нарушения функционального состояния плода (на сроках гестации 27–32 недель). Выполнено гистологическое (окраска гематоксилином и эозином), иммуногистохимическое исследование на парафиновых срезах плодных оболочек с использованием первичных моноклональных антител к маркеру мезенхимных клеток виментину (Spring bioscience), к маркеру ангиогенеза CD34 (Spring bioscience), к маркеру макрофагов CD68 (Spring bioscience), а также к рецептору врожденного иммунитета NOD-1 (Invitrogen). Иммуногистохимическое исследование проводили с помощью иммуностейнера закрытого типа Ventana (Roche, UK).
Результаты. При окрашивании с антителами к СD34, CD68, виментину, NOD-1 выявлено окрашивание мезенхимных клеток и их отростков, а также макрофагов, расположенных в центре указанных структур. Установлено ослабление механической прочности плодных оболочек при ПР за счет усиления ангиогенеза в компактном слое и децидуальной пластинке, и появление в этих структурах множественных дефектов и микроразрывов.
Заключение. Таким образом, результаты исследования указывают, что преждевременные роды обусловлены сочетанием определенных факторов: снижением механической прочности плодных оболочек, повышением ангиогенеза компактного слоя, а также множественными микродефектами и разрывами, что снижает механическую прочность плодных оболочек.

Ключевые слова

плодные оболочки
преждевременные роды
ангиогенез
CD34
CD68

Плодные оболочки обладают избирательной проницаемостью для различных молекул, участвуют в обмене околоплодной жидкости и имеют сложное гистологическое строение. Амниотический эпителий контактирует с околоплодными водами. Компактный слой состоит из соединительнотканных элементов и является наиболее прочным. Глубже расположен слой цитотрофобласта (называемый гладким хорионом, в противовес хориону ворсин плаценты), далее лежит слой децидуальных клеток, контактирующих с полостью матки [1, 2].

Термин «преждевременные роды» (ПР) используют для обозначения родов, наступающих при сроке беременности от 22 до 37 недель и массе плода более 500 г [3]. ПР – это полиэтиологическая группа. Наиболее изученной причиной ПР является преждевременный разрыв плодных оболочек, связанный с их воспалительными изменениями (мембранитами), которые в большинстве случаев ассоциированы с микробными агентами [1–4, 5]. Считается, что каждый третий недоношенный ребенок рождается у матерей с внутриамниотической инфекцией, однако патогенез ПР в отсутствие острой восходящей амниотической инфекции не до конца изучен. Кроме того, не выявлена четкая зависимость между степенью воспалительной инфильтрации плодных оболочек и наступлением ПР [6–8].

Цель исследования – изучить структурные изменения плодных оболочек при ПР в отсутствии их воспалительных изменений.

Материалы и методы

Проанализированы плодные оболочки последов от 25 женщин. В основную группу вошли 14 женщин, родоразрешенных через естественные родовые пути в связи со спонтанным началом родовой деятельности на сроке беременности 28–36 недель. Группы сравнения: 7 женщин с неосложненным течением доношенной беременности (нормальная беременность – НБ), а также 4 пациентки, родоразрешенные путем экстренного кесарева сечения (КС) в сроки 27–32 недели (ранний контроль – РК) в связи с гипоксией плода, преждевременной отслойкой нормально расположенной плаценты, нарушениями функционального состояния плода.

Критериями исключения из исследования явились признаки воспалительных изменений плодных оболочек (по данным гистологического исследования – обнаружение нейтрофилов, плазмоцитов, наличие лимфо-макрофагальной инфильтрации плодных оболочек) [1, 9].

При макроскопическом исследовании плодные оболочки захватывали корнцангом со стороны места разрыва (отступ 3 см) и скручивали в виде ролла, через который затем производился срез острым ножом или скальпелем, толщиной 0,3–0,4 см [2]. Вырезанные фрагменты ткани фиксировали в 10% нейтральном формалине. На серийных парафиновых срезах толщиной 4 мкм проводили гистологическое (окраска гематоксилином и эозином) и иммуногистохимическое исследования с использованием первичных моноклональных антител к маркеру мезенхимных клеток виментину (клон SP20, готовый к использованию; Spring bioscience), к маркеру ангиогенеза CD34 (клон QBenD, готовый к использованию; Spring bioscience), к маркеру макрофагов CD68 (клон SP251, готовый к использованию; Spring bioscience), а также к рецептору врожденного иммунитета NOD-1 (nucleotide-binding oligomerization domain-containing protein-1) (1:100, Invitrogen). Иммуногистохимическое исследование выполняли посредством иммуностейнера закрытого типа Ventana (Roche, UK) с закрытым набором для детекции. Протокол автоматизированного окрашивания образцов включал все этапы стандартной процедуры иммуногистохимии: депарафинацию срезов, их демаскировку, блокирование эндогенной пероксидазы, инкубацию с первичными и вторичными антителами. Система визуализации – Ultra View Universal DAB, Detection Kit. Продукты реакции выявляли в виде коричневого окрашивания мембраны и цитоплазмы клеток. Для проведения отрицательного контроля образцы исследуемых срезов подвергали стандартной иммуногистохимической процедуре без инкубации с первичными антителами. Положительный контроль для каждого антитела выбирали в соответствии со спецификациями фирмы-производителя.

Результаты

При гистологическом исследовании образцов плодных оболочек группы ПР и группы доношенной беременности отмечался отек, проявлявшийся в виде участков разрежения, преимущественно компактного слоя, а также визуализировались отдельные макрофаги (рис. 1, А–В). При ПР в плодных оболочках отмечались наиболее выраженные морфологические изменения: компактный слой был с участками сетчатого или ячеистого вида за счет множественных тесно расположенных капилляроподобных структур или «стромальных каналов» (по аналогии с ворсинчатым деревом плаценты), нередко с множественными микро- и макроразрывами от 1 мм до нескольких десятков миллиметров. Часто наблюдались десквамация амниотического эпителия и расслоение плодных оболочек. Кроме того, присутствовали дистрофические изменения, а также очаги некрозов компактного слоя и децидуальной пластинки. При исследовании образцов группы РК отек был незначителен, макрофаги единичными или отсутствовали.

В результате иммуногистохимического исследования в компактном слое плодных оболочек группы РК выявлены виментин + мезенхимные клетки, преимущественно веретеновидной формы, контактирующие друг с другом длинными отростками, тем самым образуя непрерывную цепочку; некоторые клетки были слабо CD34+. Капилляры децидуальной пластинки или компактного слоя единичны или отсутствовали. Наряду с этим, в группе НБ и ПР обнаружены капилляроподобные структуры, состовшие из звездчатых фибробластоподобных клеток с длинными тонкими отростками, как бы ограничивающие пространство формирующегося сосуда (рис. 2, А, Б) [2], в центре которого присутствовал CD68+ макрофаг (рис. 2, В, Г). По строению данные структуры сходны с так называемыми стромальными каналами, являющимися проявлением раннего ангиогенеза ворсинчатого дерева плаценты [2]. По аналогии с ворсинами плаценты, мезенхимные клетк, образующие «стромальные каналы» плодных оболочек, были интенсивно окрашены виментином и слабо CD34+. Эндотелий кровеносных сосудов и капилляров децидуальной пластинки был выраженно CD34+ (рис. 3, А–Е).

Наряду с этим, количество кровеносных сосудов в децидуальной пластинке было увеличено, что также ослабляло механическую прочность плодных оболочек. Максимальное количество сосудов присутствовало в децидуальной пластинке при ПР (более 5 в поле зрения (×200)). В некоторых наблюдениях группы ПР количество сосудов было значительно увеличено, по сравнению с группой РК и НБ, вплоть до развития кистозной трансформации децидуальной пластинки [2]. При доношенной беременности количество сосудов составляло 4–5 в поле зрения (×200), что было сопоставимо с группой ПР (р>0,05). В группе РК они были единичными и меньшего диаметра (р<0,05).

Необходимо подчеркнуть, что при ПР и к концу доношенной беременности микроразрывы в компактном слое плодных оболочек образовывались не за счет отека или некрозов, как часто принято считать [1], а преимущественно вдоль капилляроподобных структур и «стромальных каналов» (рис. 2, А, Б, рис. 3, А, Б) [1, 2]. Важно отметить, что при гистологическом исследовании вышеописанные капилляроподобные структуры, или «стромальные каналы», при окрашивании гематоксилином и эозином маскируются как проявления отека или как артифициальные изменения, которые нередко связывают с нарушением технологии фиксации материала или техническими сложностями в работе микротома при изготовлении гистологических срезов (рис. 1). Кроме того, при окрашивании антителами к рецептору врожденного иммунитета NOD-1 определялось коричневое окрашивание как макрофагов, так и клеток стромы (рис. 2, Д, Е), что четко показывало, что макрофаги находились внутри просвета так называемых «стромальных каналов». В то же время при окрашивании с антителами к CD68 выявлялись только макрофаги, клетки стромы были преимущественно негативны [10]. Проведенный анализ микропрепаратов, окрашенных с антителами к NOD-1, позволил визуализировать мезенхимальные клетки и их отростки, образующие «стромальные каналы», а также макрофаги, находящиеся в их просвете. Указанные изменения, по нашему мнению, сходны с аналогичными изменениями ворсинчатого дерева плаценты и являются проявлениями раннего ангиогенеза [1, 11]

Обсуждение

Согласно данным литературы, одной из наиболее изученных причин развития ПР являются воспалительные изменения плодных оболочек [1]. Однако только в 50% наблюдений имеют место гистологические признаки амнионита и хориоамнионита [12]. В то же время на недоношенном сроке беременности при преждевременном разрыве плодных оболочек роды могут наступить и в отсутствие воспалительной реакции в плаценте и в плодных оболочках, например, у пациенток с недифференцированной дисплазией соединительной ткани, когда нарушается синтез коллагена, снижается «прочность» плодного пузыря, что и обусловливает его разрыв [6, 8, 13–16]. Полученные нами данные свидетельствуют о том, что на доношенном сроке беременности происходит повышение васкуляризации плодных оболочек, приводящее к разрыву плодного пузыря и к началу родов. Развитие этих изменений на более ранних сроках беременности может являться причиной ПР. Вероятно, по аналогии с тем, как бумага или почтовая марка легко отрывается при наличии мелких микроперфораций, так и плодные оболочки стремятся к разрыву за счет усиления ангиогенеза и появления «стромальных каналов», являющихся как бы направляющими «лесами» или канвой, по которым осуществляется разрыв.

Полученные результаты имеют важное значение в понимании патогенеза ПР. Так, в настоящее время одним из способов прогнозирования ПР является тест на определение плацентарного альфамикроглобулина. Концентрация этого белка в околоплодных водах высокая, однако во влагалищном содержимом он не определяется. Появление лабораторно определяемых уровней данного белка во влагалищном содержимом при отсутствии клинических проявлений разрыва плодных оболочек свидетельствует о поступлении микропорций околоплодных вод через микроперфорационные отверстия (микроразрывы) оболочек и о возможном преждевременном разрыве плодных оболочек и/или ПР в ближайшее время [17].

Заключение

Таким образом, результаты исследования указывают, что ПР обусловлены сочетанием определенных факторов, приводящих к снижению механической прочности плодных оболочек, в том числе повышением ангиогенеза компактного слоя и децидуальной пластинки, а также множественными микродефектами и разрывами.

Список литературы

  1. Benirschke K., Burton G.J., Baergen R.N. Pathology of the human placenta. Sixth ed., Springer. 2012.
  2. Милованов А.П. Патология системы мать-плацента-плод: руководство для врачей. М.: Медицина; 1999. 448 с.
  3. Сухих Г.Т., Серов В.Н., Адамян Л.В. Преждевременные роды. Клинические рекомендации (протокол). М. 2014. 35с.
  4. Fahey J.O. Clinical management of intra-amniotic infection and chorioamnionitis: a review of the literature. J Midwifery Womens Health. 2008; 53(3): 227-235.
  5. Tita A.T., Andrews W.W. Diagnosis and management of clinical chorioamnionitis. Clin Perinatol. 2010; 37(2): 339-354.
  6. Steel J.H., Malatos S., Kennea N., Edwards A.D., Miles L., Duggan P., Reynolds P.R., Feldman R.G., Sullivan M.H. Bacteria and inflammatory cells in fetal membranes do not always cause preterm labor. Pediatr Res. 2005; 57(3): 404-411.
  7. Farraj A.A. Randomized placental and cord blood sampling culture in women with preterm and term labour to detect infection. East Mediterr Health J. 2000; 6: 272-275.
  8. Queiros da Mota V., Prodhom G., Yan P., Hohlfheld P., Greub G., Rouleau C. Correlation between placental bacterial culture results and histological chorioamnionitis: a prospective study on 376 placentas. J Clin Pathol. 2013; 66: 243-248.
  9. Низяева Н.В. Гистологические критерии воспалительных изменений плодных оболочек плаценты и пуповины. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2018; 2: 202-207.
  10. Nizyaeva N., Karapetian A., Sinitsyna V., Pavlovich S., Kan N., Baev O. NOD-1 expression in placental villi in pregnancy-related complications. Virchows Archiv. 2018; 473: S1.
  11. Burton G.J., Sebire N.J., Myatt L., Tannetta D., Wang Y.L., Sadovsky Y. et al. Optimising sample collection for placental research. Placenta. 2014; 35: 9-22.
  12. Баев О.Р., Васильченко О.Н., Кан Н.Е., Клименченко Н.И., Митрохин С.Д., Тетруашвили Н.К., Ходжаева З.С., Шмаков Р.Г., Дегтярев Д.Н., Тютюнник В.Л., Адамян Л.В. Преждевременный разрыв плодных оболочек. Преждевременное излитие вод. Акушерство и гинекология. 2013; 9: 123-134.
  13. Кан Н.Е., Санникова М.В., Донников А.Е., Климанцев И.В., Амирасланов Э.Ю., Ломова Н.А., Кесова М.И., Костин П.А., Тютюнник В.Л., Сухих Г.Т. Клинические и молекулярно-генетические факторы риска преждевременного разрыва плодных оболочек. Акушерство и гинекология. 2013; 4: 14-18.
  14. Кан Н.Е., Санникова М.В., Амирасланов Э.Ю., Тютюнник В.Л. Клинические предикторы прогнозирования преждевременного разрыва плодных оболочек. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2013; 12(3):12-18.
  15. Kan N.E., Tuytyunnik V.L., Donnikov A.E., Sannikova M.V., Sukhikh G.T. Association of ESR1 gene polymorphism with preterm rupture of fetal membranes. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2013; 156: 12: 811-814.
  16. Nizyaeva N.V., Sukhacheva T.V., Kulikova G.V., Nagovitsyna M.N., Poltavtseva R.A., Kan N.E., Tyutyunnik V.L., Pavlovich S.V., Serov R.A., Shchyogolev A.I. Ultrastructural Characteristics of Placental Telocytes. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2017; 31.
  17. Lee S.M., Romero R., Park J.W., Kim S.M., Park C.W., Korzeniewski S.J., Chaiworapongsa T., Yoon B.H. The clinical significance of a positive Amnisure test in women with preterm labor and intact membranes. J Matern Fetal Neonatal Med. 2012; 25(9): 1690-98.

Поступила 21.01.2019

Принята в печать 22.02.2019

Об авторах / Для корреспонденции

Низяева Наталья Викторовна, к.м.н., с.н.с. патологоанатомического отделения ФГБУ «НМИЦАГП имени академика В.И. Кулакова» Минздрава РФ. ORCID: orcid.org/0000-0001-5592-5690, SPIN 9893-2630 Тел.: +7 (926) 248-28-93. E-mail: niziaeva@gmail.com.
Адрес: 117997, Россия, Москва ул. Академика Опарина, д. 4.
Карапетян Анна Овиковна, к.м.н., врач 1-го родильного отделения, ассистент кафедры акушерства и гинекологии Департамента профессионального образования ФГБУ «НМИЦАГП имени академика В.И. Кулакова» Минздрава РФ. ORCID: orcid.org/0000-0001-8555-144X. Тел.: +7 (495) 438-11-88. E-mail: a_karapetyan@oparina4.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва ул. Академика Опарина, д. 4.
Гапаева Масара Денилбековна, ординатор второго года 1-го родильного отделения ФГБУ «НМИЦАГП имени академика В.И. Кулакова» Минздрава РФ. Тел.: +7 (495) 438-11-88. E-mail: m_gapaeva@oparina4.ru
Адрес: 117997, Россия, Москва ул. Академика Опарина, д. 4.
Синицына Вероника Алексеевна, фельдшер-лаборант патологоанатомического отделения ФГБУ «НМИЦАГП имени академика В.И. Кулакова» Минздрава РФ.
Тел.: +7 (926) 248-28-93. E-mail: v_sinitsyna@oparina4.ru. Адрес: 117997, Россия, Москва ул. Академика Опарина, д. 4.
Баев Олег Радомирович, д.м.н., профессор, руководитель 1-го родильного отделения ФГБУ «НМИЦАГП имени академика В.И. Кулакова» Минздрава РФ. ФГАОУ ВО "Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет). Кафедра акушерства, гинекологии, перинатологии и репродукции. ORCID: orcid.org/0000-0001-8572-1971, SPIN 5058-7295. Тел.: +7 (495) 438-11-88. E-mail: o_baev@oparina4.ru
Адрес: 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Для цитирования: Низяева Н.В., Карапетян А.О., Гапаева М.Д., Синицына В.А., Баев О.Р. Структурные особенности плодных оболочек при преждевременных родах.
Акушерство и гинекология. 2019; 8:63-9.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.8.63-69

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.