Роль микробиоты влагалища при досрочном преждевременном разрыве плодных оболочек

Гусейнова Г.Э., Ходжаева З.С., Муравьева В.В.

ФГБУ «Научный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва
Проведен систематический анализ информации, имеющейся в современной литературе, о микробиоме влагалища и роли дисбиотических нарушений в генезе преждевременного разрыва плодных оболочек (ПРПО) при сроке беременности 22–36 недель и 6 дней. Включены данные зарубежных и отечественных литературных источников, найденных в Pubmed по данной проблеме, опубликованных за последние 10 лет. Представлены результаты отдельных исследований, посвященных изучению микробиома влагалища у беременных с ПРПО и выявлению предикторов развития данного осложнения. Результаты проводимых исследований подтверждают необходимость изучения состава микробиоты влагалища с ранних сроков гестации; своевременная диагностика нарушения вагинальной микробиоты позволит существенно снизить частоту акушерских и неонатальных осложнений. Необходимы дальнейшие исследования по поиску наиболее значимых микробиологических предикторов с целью выявления беременных высокого риска развития ПРПО.

Ключевые слова

микробиота влагалища
дисбиоз
преждевременный разрыв плодных оболочек
лактобациллы

Преждевременный разрыв плодных оболочек (ПРПО) определяется как разрыв плодных мембран с излитием околоплодных вод до начала регулярной родовой деятельности, который может возникать как при своевременных (≥37 недель), так и при преждевременных родах (ПР) (22–36 недель и 6 дней). Так называемый досрочный ПРПО (22–36 недель 6 дней беременности) повышает частоту ПР и неблагоприятных ближайших и отдаленных материнских и неонатальных исходов, тяжесть которых пропорциональна гестационному сроку. ПРПО наблюдается приблизительно в 30% всех спонтанных ПР [1–6]. Почти у 45% новорожденных, которые выживают до 25 недель после ПРПО, вследствие бронхолегочной дисплазии развиваются хронические респираторные и сердечно-сосудистые заболевания, отмечается высокий риск психоневрологических дефицитов [7, 8]. Недоношенные новорожденные получают лечение в отделении реанимации и интенсивной терапии новорожденных, многим требуются искусственная вентиляция легких (ИВЛ), респираторная поддержка, переливание крови, энтеральное и парентеральное питание, фармакотерапия и т.д., что требует больших финансовых затрат со стороны семьи и государства [9, 10].

В 80% случаев роды при недоношенном сроке беременности происходят в течение 9 дней с момента разрыва плодных оболочек. В течение этого времени полость матки, плацента и плод в результате восходящей инфекции подвержены высокому риску развития хориоамнионита, фунисита, внутриутробной инфекции у плода и новорожденного, с которыми связаны неблагоприятные материнские и неонатальные исходы [6–10].

Согласно многочисленным исследованиям, ПРПО и последующее развитие материнских и неонатальных заболеваний ассоциированы с вагинальной инфекцией [4, 5, 11, 12]. Изучение микробиоты влагалища у беременных и ее особенностей при ПРПО, сопоставление с клиническими данными для выявления факторов риска, их стратификации и коррекция выявленных отклонений явились целью данного обзора.

Микробиота влагалища у беременных

Микробиота влагалища претерпевает значительные изменения в течение всей жизни женщины: от рождения до полового созревания и менопаузы. Половые стероидные гормоны играют основную роль в формировании состава и стабильности микробиоты влагалища [13–15]. Известно, что менструация и сексуальная активность оказывают негативное влияние на стабильность микробиоты влагалища [16–18]. Секреторная фаза менструального цикла, характеризующаяся высокими концентрациями эстрогенов и прогестерона, обеспечивает большую стабильность состава микробиоты [19].

С момента открытия лактобацилл (Döderlein Bacillus) в 1892 г. Густавом Додерлейном принято считать, что их доминирование в составе вагинальной микробиоты ассоциируется с нормобиотой, сдерживающей колонизацию вагинального биотопа женщин репродуктивного возраста условно-патогенными микроорганизмами (УПМ). Лактобациллы (Lactobacillus spp.) обладают плейотропными иммунными эффектами: индуцируют экспрессию антимикробных факторов (дефензинов, лизоцима, гемоцидина), поддерживают активацию Toll-подобных рецепторов эпителиальных клеток, что приводит к повышению противовоспалительных и снижению провоспалительных цитокинов. Лактобациллы способствуют поддержанию низкого рН влагалища (<4,5) за счет выработки молочной кислоты.

Имеются сообщения о том, что состав влагалищной микрофлоры изменяется в зависимости от гестационного срока, а доминирующими в норме являются Lactobacillus четырех видов: L. crispatus, L. jensenii, L. gasseri и L. iners [20]. Особое внимание заслуживает L. iners, который в ряде случаев может встречаться в качестве доминирующего вида при нормоценозе, а также при бактериальном вагинозе (БВ) у женщин с антенатальными потерями плода в анамнезе. По данным ряда авторов, доминирование L. iners чаще всего наблюдается при мезоценозе (промежуточное состояние между нормальным состоянием микробиоты влагалища и дисбиотическим) и может предрасполагать к пролиферации УПМ, что, в свою очередь, связано с различными осложнениями во время беременности [20–24].

Показано, что дисбаланс микробиоты влагалища может привести к инфекциям, передаваемым половым путем, БВ, с которыми связывают негативные репродуктивные исходы [11, 12, 25]. Дисбиоз влагалища оказывает существенное влияние на здоровье и микрофлору новорожденного, а также на течение послеродового периода у родильниц. Вместе с тем имеются данные о взаимосвязи колонизирующих влагалище видов Lactobacillus с различными дисбиотическими нарушениями вагинальной микробиоты и росте УПМ по мере прогрессирования беременности. Так, отечественными авторами показано, что УПМ к концу беременности встречается у 51,4% беременных [26, 27], а частота нарушений микробиоценоза родовых путей у женщин группы риска акушерской патологии во время беременности может достигать 65% [28–32].

Роль микробиоты влагалища в генезе преждевременного разрыва плодных оболочек

В последнее время появились исследования, посвященные изучению стабильности вагинальной микробиоты на протяжении всей беременности и выявлению взаимосвязи между составом микробиоты и неблагоприятными исходами беременности.

По мнению ряда авторов, дефицит лактобацилл во время беременности характеризует развитие вагинальных инфекций бактериальной, грибковой или смешанной этиологии и связан с ранней потерей беременности и увеличением числа спонтанных ПР [21, 33–41].

Несмотря на то что изучению факторов риска спонтанных ПР посвящены многочисленные исследования, лишь немногие клинические биомаркеры оказались значимыми [21]. Установлено, что беременные с БВ имеют высокий риск развития спонтанных ПР, особенно если БВ диагностируется на ранних сроках беременности. Высокий уровень обсемененности вагинального биотопа бактериями, ассоциированными с БВ, коррелирует с повышенной экспрессией провоспалительных цитокинов и хемокинов в нижнем отделе генитального тракта, с которыми связывают раннее начало родовой деятельности.

Общепризнанным является инфекционно-воспалительный генез ПРПО при недоношенном сроке беременности [36]. Donders G.G. и соавт. [21] классифицировали БВ как «абсолютный» и «частичный»: «абсолютный БВ» связан с ранними потерями беременности, тогда как «частичный БВ» является риском возникновения позднего выкидыша и ПР.

В своем обзоре Lamont R.F. [42] проанализировал роль инфекционного фактора в развитии ПР и определил, что выявление дисбиотических нарушений вагинальной микробиоты на ранних сроках беременности является предиктором неблагоприятных репродуктивных исходов [42, 43]. Ghartey J.P. и соавт. [44] выявили у женщин на сроках 18–32 недели беременности преобладание Escherichia coli в отделяемом влагалища, что является фактором риска неблагоприятных исходов беременности.

В исследовании, проведенном Дятло­вой Л.И. [45], показано, что у женщин, беременность которых осложнилась ПРПО в 22–34 недели, на фоне снижения содержания лактобацилл в вагинальном отделяемом преобладали факультативные анаэробы Staphylococcus spp., Corynebacterium spp., представители семейства Enterobacteriaceae, а также облигатный анаэроб – Mobiluncus spp. Brown R. и соавт. [46] выявлен дефицит L. crispatus с ранних сроков беременности, который авторы связывают с риском осложнения беременности ПРПО. Существует гипотеза о том, что часть случаев ПРПО вызвана колонизацией влагалища УПМ, которые активируют местный врожденный иммунитет и провоцируют воспалительные процессы, что приводит в конечном итоге к ПРПО [47–49].

Paramel Jayaprakash T. и соавт. [50] изучили 70 вагинальных образцов у 36 женщин с ПРПО и выявили, что состав микробиома весьма разнообразен, но Megasphaera type 1 и Prevotella spp. были обнаружены во всех влагалищных образцах. В 13 образцах доминировали виды Lactobacillus spp. Наличие Mollicutes во влагалищном микробиоме было связано с ПР.

Genovese C. и соавт. [51] при исследовании микробиоты влагалища у 8 беременных с ПРПО выделили ассоциации следующих микроорганизмов: Escherichia coli + Enterococcus spp. в 2 случаях, Escherichia coli + Peptococcus spp. в 1 случае, Escherichia coli + Enterobacter spp. в 1 случае, Gardnerella vaginalis + Peptococcus spp. в одном случае, в то время как Lactobacillus spp. в составе вагинальной микробиоты отсутствовали.

Brown R.G. и соавт. [52, 53] также обнаружили у беременных до разрыва плодных оболочек увеличение относительной численности УПМ, включая Prevotella, Peptoniphilus, Streptococcus и Dialister и снижение Lactobacillus spp. Применение антибактериальной терапии для профилактики неонатальных инфекций, вызванных УПМ вагинального происхождения, не всегда было эффективным. Авторы пришли к заключению, что дисбиотические нарушения вагинальной микробиоты до разрыва плодных оболочек являются дополнительным доказательством роли вагинальной инфекции в патофизиологии ПРПО при недоношенном сроке беременности.

Ходжаева З.С. и соавт. (2019) провели исследование по изучению состава и стабильности микробиоты влагалища у 26 первобеременных женщин в динамике, на протяжении беременности в I–III триместрах, у 6 из которых произошел ПРПО на сроках 27–35 недель. Для микрофлоры влагалища у этих женщин были характерны дисбиотические нарушения с доминированием УПМ. При посеве влагалищного отделяемого после излития околоплодных вод УПМ выделены у 5 женщин. В 4 случаях обнаружены ассоциации: 2 УПМ (Escherichia coli + Enterococcus faecalis и S. hominis + Candida albicans); 4 (Escherichia coli + S. lugdunensis + S. anginosus + Gardnerella vaginalis; S. epidermidis + S. agalactiae + Enterococcus faecalis + S. lugdunensis) и в одном случае выделен Enterococcus faecalis в монокультуре. У 1 пациентки УПМ не были обнаружены [54].

В обзоре Li-nan Zeng и соавт. [55], посвященном анализу высеваемости УПМ у женщин с ПРПО за 32-летний период в клиниках Китая, показан видовой спектр выделенных 1706 изолятов УПМ: Staphylococcus spp., Enterococcus spp., Streptococcus spp., Escherichia coli, Enterobacter spp., Gardnerella vaginalis, строгие анаэробы, грибы рода Candida. Наиболее часто высевали Staphylococcus spp. и Escherichia coli.

Несмотря на возрастание числа работ по изучению микробиоты влагалища и ее влияния на неблагоприятные исходы для матери и ребенка, проблема сохраняется, и расширяются направления исследований, поскольку влагалищный микробиом ассоциирован с заболеваемостью не только дыхательной системы, но и с неврологическими дефицитами центральной нервной системы у недоношенных новорожденных [56].

Современные данные убедительно подчеркивают связь дисбиотических нарушений с развитием внутрибольничной инфекции, некротизирующего энтероколита, которые представляют собой не только огромное бремя заболеваемости для недоношенных детей, но и влекут за собой пожизненные последствия и высокую летальность.

При анализе материнских и неонатальных исходов при досрочном ПРПО в 14–23 недель и 6 дней беременности только 23% недоношенных родились живыми,в 69% случаях был диагностирован хориоамнионит, а в 12% – развилось послеродовое кровотечение [57–59].

Легочная гипоплазия является основной причиной смертности новорожденных вследствие развития досрочного ПРПО. Известно, что развитие легких характеризуется появлением респираторных и терминальных бронхиол, а также канальцев (прообразов альвеолярных мешочков) и подрастанием к ним капилляров, которое происходит в течение 16–25 недель беременности. Следовательно, олигогидрамнион в этот критический период может привести к легочной гипоплазии [60].

В ретроспективном исследовании Gezer и соавт. [59] выявили, что наиболее частыми заболеваниями у недоношенных, рожденных вследствие ПРПО, явились: респираторный дистресс-синдром, сепсис и внутрижелудочковые кровоизлияния. Способ родоразрешения не оказывал влияния на развитие перинатальной асфиксии, внутрижелудочковые кровоизлияния и длительность пребывания в отделении реанимации и интенсивной терапии новорожденных. Авторами отмечена повышенная частота неонатальной заболеваемости и смертности, связанная с пролонгированием латентного периода родов от начала ПРПО.

Тяжелая легочная гипоплазия является одной из основных проблем, связанных с ПРПО и ангидрамнионом во II триместре беременности [60].

Korzeniewski и соавт. [61] обнаружили высокую частоту развития вентрикуломегалии у недоношенных новорожденных с экстремально низкой массой тела при рождении. В недавно опубликованном отчете 53 отделений интенсивной терапии новорожденных в Испании выявили значительное повышение частоты респираторного дистресс-синдрома (69%), а также ранний сепсис у недоношенных (10,2%), некротизирующий энтероколит (11,2%), тяжелое внутрижелудочковое кровоизлияние (14,5%), перивентрикулярную лейкомаляцию (8,4%), ретинопатию недоношенных (5,3%) [62].

Имеются данные о том, что у недоношенных с ПРПО, рожденных до 24 недель беременности, в 97% случаев развивается респираторный дистресс- синдром, в 21% – имеет место персистирующая легочная гипертензия, в 24% – внутрижелудочковое кровоизлияние, а общая смертность составила 24% [63].

У недоношенных новорожденных от матерей с дисбиотическими нарушениями микробиоты частота поражений кожи и слизистых оболочек (омфалит, конъюнктивит, везикулез) достигает 70%; у них чаще встречаются внутриутробная пневмония, энтероколит, менингит, энцефалит, а также ранний неонатальный сепсис [64].

Заключение

В связи с вышеизложенным, необходимы дальнейшие исследования, связанные с поиском микробиологических предикторов ПРПО, а также эффективных мер профилактики и терапии угрожающих ПР, ассоциированных с ПРПО, с целью выявления беременных группы высокого риска развития ПРПО на ранних сроках беременности, улучшения качества прегравидарной подготовки, возможности прогнозирования и предотвращения развития инфекционных осложнений, устранения неблагоприятных материнских и неонатальных исходов.

Список литературы

  1. Howson C.P., Kinney M.V., Lawn J.E., eds. March of Dimes, PMNCH, Save the Children, WHO. Born Too Soon: The Global Action Report on Preterm Birth. World Health Organization. Geneva, 2012. Available from: http://www.who.int/pmnch/media/news/2012/201204_born-toosoon-report.pdf
  2. Simhan H.N., Canavan T.P. Preterm premature rupture of membranes: diagnosis, evaluation and management strategies. BJOG. 2005; 112(Suppl 1): 32–7. doi: 10.1111/j.1471-0528.2005.00582.x
  3. Waters T.P., Mercer B.M. The management of preterm premature rupture of the membranes near the limit of fetal viability. Am J Obstet Gynecol. 2009; 201(3): 230–40. doi: 10.1016/j.ajog.2009.06.049.
  4. Crane J.M.G., Magee L.A., Lee T., Synnes A., von Dadelszen P., Dahlgren L., et al. Maternal and perinatal outcomes of pregnan-cies delivered at 23weeks’ gestation. J Obstet Gynaecol Can. 2015; 37: 214–24. http://dx.doi.org/10.1016/S1701-2163(15)30307-8
  5. Goldenberg R.L., Culhane J.F., Iams J.D., Romero R. Epidemiology and causes of preterm birth. Lancet. 2008; 371(9606): 75–84. doi: 10.1016/S0140-6736(08)60074-4.
  6. Mercer B.M. Preterm premature rupture of the membranes. Obstet Gynecol. 2003; 101: 178–93. doi: 10.1016/s0029-7844(02)02366-9
  7. Manuck T.A., Varner M.W. Neonatal and early childhood out-comes following early vs. later preterm premature rupture of membranes. Am J Obstet Gynecol. 2014; 211: 308.e1-6. doi: 10.1016/j.ajog.2014.05.030
  8. Soylu H., Jefferies A., Diambomba Y., Windrim R., Shah P.S. Rupture of membranes before the age of viability and birth after the age of viability: comparison of outcomes in a matched cohort study. J Perinatol. 2010; 30: 645–9. doi:10.1038/jp.2010.11
  9. Brumbaugh J.E., Colaizy T.T., Nuangchamnong N., et al. Neonatal Survival after Prolonged Preterm Premature Rupture of Membranes before 24 Weeks of Gestation. Obstet Gynecol. 2014; 124(5): 992–8. doi:10.1097/aog.0000000000000511
  10. Roberts D., Vause S., Martin W., Green P., Walkinshaw S., Bricker L., Beardsmore C., Shaw B.N., McKay A., Skotny G., Williamson P., Alfirevic Z. Amnioinfusion in preterm premature rupture of membranes (AMIPROM): a randomised controlled trial of amnioinfusion versus expectant management in very early preterm premature rupture of membranes – a pilot study. Health Technol Assess. 2014; 18(21): 1–135. doi: 10.3310/hta18210.
  11. Ryckman K.K., Simhan H.N., Krohn M.A., Williams S.M. Predicting risk of bacterial vaginosis: the role of race, smoking and corticotropin-releasing hormone-related genes. Mol Hum Reprod. 2009; 15(2): 131–7. doi: 10.1093/molehr/gan081
  12. Brotman R.M. Vaginal microbiome and sexually transmitted infections: an epidemiologic perspective. J Clin Invest. 2011; 121(12): 4610–7. doi: 10.1172/JCI57172.
  13. Ma B., Forney L.J., Ravel J. Vaginal microbiome: rethinking health and disease. Annu Rev Microbiol. 2012; 66: 371–89. doi: 10.1146/annurev-micro-092611-150157.
  14. Hickey R.J., Zhou X., Pierson J.D., Ravel J., Forney L.J. Understanding vaginal microbiome complexity from an ecological perspective. Transl Res. 2012; 160: 267–82. doi: 10.1016/j.trsl.2012.02.008.
  15. Romero R., Hassan S.S., Gajer P., Tarca A.L, Fadrosh D.W., Nikita L., Galuppi M., Lamont R.F., Chaemsaithong P., Miranda J., Chaiworapongsa T., Ravel J. The composition and stability of the vaginal microbiota of normal pregnant women is different from that of non-pregnant women. Microbiome. 2014; 2(1): 4. doi: 10.1186/2049-2618-2-4.
  16. Shiraishi T., Fukuda K., Morotomi N., Imamura Y., Mishima J., Imai S, et al. Influence of menstruation on the microbiota of healthy women’s labia minora as analyzed using a 16S rRNA gene-based clone library method. Jpn J Infect Dis. 2011; 64: 76–80. PMID: 21266747
  17. Kyongo J.K., Jespers V., Goovaerts O., Michiels J., Menten J., Fichorova R.N., et al. Searching for lower female genital tract soluble and cellular biomarkers: defining levels and predictors in a cohort of healthy Caucasian women. PloS One. 2012; 7: e43951. doi: 10.1371/journal.pone.0043951.
  18. Mitchell C.M., Fredricks D.N., Winer R.L., Koutsky L. Effect of sexual debut on vaginal microbiota in a cohort of young women. Obstet Gynecol. 2012; 120: 1306–13. http://dx.doi.org/10.1097/aog.0b013e31827075ac
  19. Gajer P., Brotman R.M., Bai G., Sakamoto J., Schutte U.M., Zhong X., et al. Temporal dynamics of the human vaginal microbiota. SciTransl Med. 2012; 4(132):132ra152. doi: 10.1126/scitranslmed.3003605.
  20. Romero R, Hassan S., Gajer P., Tarca A.L., Fadrosh D.W., Bieda J., Chaemsaithong P., Miranda J., Chaiworapongsa T., Rave J. The vaginal microbiota of pregnant women who subsequently have spontaneous preterm labor and delivery and those with a normal deliveryat term. Microbiome. 2014; 2 (18): 1–15. http://dx.doi.org/10.1186/2049-2618-2-18
  21. Donders G.G., Van Calsteren K., Bellen G., et al. Predictive value for preterm birth of abnormal vaginal flora, bacterial vaginosis and aerobic vaginitis during the first trimester of pregnancy. BJOG. 2009; 116(10): 1315–24. doi: 10.1111/j.1471-0528.2009.02237.x.
  22. Macklaim J.M., Gloor G.B., Anukam K.C., et al. At the crossroads of vaginal health and disease, the ge- nome sequence of Lactobacillus iners AB-1. Proc Natl Acad Sci USA. 2011;108(1):4688-95. doi: 10.1073/ pnas.1000086107.
  23. Ravel J., Gajer P., Abdo Z., et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci USA. 2011;108: 4680-7. doi: 10.1073/pnas.1002611107.
  24. Petricevic L Domig K Nierscher F.J, et al. Charac- terisation of the vaginal Lactobacillus microbiota as- sociated with preterm delivery. Sci Rep. 2014; 4: 51362. doi: 10.1038/srep05136.
  25. Sobel J.D. Bacterial Vaginosis. Annu Rev Med. 2000; 51: 349–56. doi: 10.1146/annurev.med.51.1.349
  26. Анкирская А.С., Муравьева В.В. Интегральная оценка состояния микробиоты влагалища, диагностика оппортунистических вагинитов. Медицинская технология. М.: ФГБУ «НЦ АГиП им. В. И. Кулакова» Минздравсоцразвития России, 2011.

  27. Ворошилина Е.В., Тумбинская Л.В., Донников А.Е., Плотко Е.Э., Хаютин Л.В. Биоценоз влагалища с точки зрения количественной ПЦР: изменения и коррекция во время беременности. Инфекции в гинекологии. 2010; 68(3): 108–111.

  28. Липова Е.В., Болдырева М.Н., Трофимов Д.Ю., Витвицкая Ю.Г. Фемофлор. Урогенитальные инфекции, обусловленные условно-патогенной биотой у женщин репродуктивного возраста (Клинико-лабораторная диагностика). Пособие для врачей. М.: ДНК-Технология. 2009. 30 с.

  29. Aagaard K., Riehle K., Ma J., Segata N., Mistretta T.A., Coarfa C., et al. A metagenomic approach to characterization of the vaginal microbiome signature in pregnancy. PloS One. 2012; 7(6): e36466. doi: 10.1371/journal.pone.0036466.
  30. MacIntyre D.A., Chandiramani M., Lee Y.S.., Kindinger L. Smith A., Angelopoulos N., et al. The vaginal microbiome during pregnancy and the postpartum period in a European population. SciRep. 2015; 5: 8988. doi: 10.1038/srep08988.
  31. Romero R., Hassan S.S., Gajer P., Tarca A.L., Fadrosh D.W., Nikita L., et al. The composition and stability of the vaginal microbiota of normal pregnant women is different from that of non-pregnant women. Microbiome. 2014; 2: 10. doi: 10.1186/2049-2618-2-10.
  32. Reid G., Younes J.A., Van der Mei H.C., Gloor G.B., Knight R., Busscher H.J. Microbiota restoration: natural and supplemented recovery of human microbial communities. Nat Rev Microbiol. 2011; 9(1): 27–38. doi: 10.1038/nrmicro2473.
  33. Vitali B., Cruciani F., Picone G., Parolin C., Donders G., Laghi L. Vaginal microbiome and metabolome highlight specific signatures of bacterial vaginosis. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2015; 34(12): 2367e2376. http://dx.doi.org/10.1007/s10096-015-2490-y.
  34. DiGiulio D.B., Callhan B.J., McMurdie P.J., Costello E.K., Lyell D.J., Robaczewska A., Sun C.L., Goltsman D.S.A., Wong R.J., Shaw G., Stevenson D.K., Holmes S.P., Relman D.A. Temporal and spacial variation of the humanmicrobiota during pregnancy. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015; 112(35): 11060–5. doi: 10.1073/pnas.1502875112.
  35. Hyman R.W., Fukushima M., Jiang H., et al. Diversity of the vaginal microbiomecorrelates with preterm birth. Reprod Sci. 2013; 21(1): 32e40. http://dx.doi.org/10.1177/1933719113488838
  36. Lamont R.F., Sobel J.D., Akins R.A., Hassan S.S., Chaiworapongsa T., Kusanovic J.P., Romero R. The vaginal microbiome: new information about genital tract flora using molecular based techniques. BJOG. 2011; 118(5): 533–49. doi: 10.1111/j.1471-0528.2010.02840.x
  37. Tibaldi C., Cappello N., Latino M.A., Polarolo G., Masuelli G., Cavallo F., Benedetto C. Maternal risk factors for abnormal vaginal microbiota during pregnancy. Int J GynaecolObstet 2016; 133: 89–93. http://doi.wiley.com/10.1016/j.ijgo.2015.07.035
  38. Vinturache A.E., Gyamfi-Bannerman C., Hwang J., Mysorekar I.U., Jacobsson B.; Preterm Birth International Collaborative (PREBIC). Maternal microbiome – A pathway to preterm birth. Semin Fetal Neonatal Med. 2016; 21: 94–9. http://dx.doi.org/10.1016/j.siny.2016.02.004
  39. Denney J.M., Culhane J.F. Bacterial vaginosis: a problematic infection from both a perinatal and neonatal perspective. Semin Fetal Neonatal Med. 2009; 14: 200–3. doi: 10.1016/j.siny.2009.01.008.
  40. Karat C., Madhivanan P., Krupp K., Poornima S., Jayanthi N.V., Suguna J.S., Mathai E. The clinical and microbiological correlates of premature rupture of membranes. Indian J Med Microbiol. 2006; 24: 283–5. doi: 10.4103/0255-0857.29388
  41. Tempera G., Furneri P.M. Management of aerobic vaginitis. Gynecol Obstet Invest. 2010; 70: 244–9. oi: 10.1159/000314013.
  42. Lamont R.F. Advances in the prevention of infection-related preterm birth. Front Immunol. 2015; 6: 566. doi: 10.3389/fimmu.2015.00566
  43. Romero R., Espinoza J., Kusanovic J.P., et al. The preterm parturition syndrome. BJOG. 2006; 113(Suppl3): 17–42. doi: 10.1111/j.1471-0528.2006.01120.x
  44. Ghartey J.P., Smith B.C., Chen Z., Buckley N., Lo Y., Ratner A.J., Herold B.C., Burk R.D. Lactobacillus crispatus Dominant Vaginal Microbiome Is Associated with Inhibitory Activity of Female Genital Tract Secretions against Escherichia coli. PLoS One. 2014; 9(5): e96659. doi: 10.1371/journal.pone.0096659.
  45. Дятлова Л.И. Особенности микробиоценоза влагалища при преждевременном разрыве околоплодных мембран при сроках гестации 22–34 недели. Международный журнал экспериментального образования. 2015; 3–46: 502–6.

  46. Brown R., Kindinger L., Lee Y., Marchesi J.R., Bennett P., MacIntyre D. Role of the vaginal microbiome in preterm prelabour rupture of the membranes: an observational study. Lancet. 2016; 387(special issue): S22. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(16)00409-8
  47. Fortner K.B., Grotegut C.A., Ransom C.E., Bentley R.C., Feng L., Lan L., et al. Bacteria localization and chorion thinning among preterm premature rupture of membranes. PloS One. 2014; 9: e83338. http://dx.plos.org/10.1371/journal.pone.0083338
  48. Goldenberg R.L., Culhane J.F., Iams J.D., Romero R. Epidemiology and causes of preterm birth. Lancet. 2008; 371: 75–84. doi: 10.1016/S0140-6736(08)60074-4.
  49. Saigal S., Doyle L.W. An overview of mortality and sequelae of preterm birth from infancy to adulthood. Lancet. 2008; 371: 261–9. doi: 10.1016/S0140-6736(08)60136-1.
  50. Paramel Jayaprakash T., Wagner E.C., van Schalkwyk J., Albert A.Y.K., Hill J.E., Money D.M., et al. High Diversity and Variability in the Vaginal Microbiome in Women following Preterm Premature Rupture of Membranes (PPROM): A Prospective Cohort Study. PLoS One. 2016; 11(11): e0166794. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0166794
  51. Genovese C., Corsello S., Nicolosi D., Aidala V., Falcidia E., Tempera G. Alterations of the vaginal microbiota in the third trimester of pregnancy and pPROM. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2016; 20(16): 3336–43. PMID: 27608890
  52. Brown R.G., Marchesi J.R., Lee Y.S., Smith A., Lehne B., Kindinger L.M., Terzidou V., Holmes E., Nicholson J.K., Bennett P.R., MacIntyre D.A. Vaginal dysbiosis increases risk of preterm fetal membrane rupture, neonatal sepsis and is exacerbated by erythromycin. BMC Med. 2018; 16(1): 9. doi: 10.1186/s12916-017-0999-x.
  53. Brown R.G., Al-Memar M., Marchesi J.R., Lee Y.S, Smith A., Chan D., Lews H., Kindinger L., Terzidou V., Bourne T., Bennett P.R., MacIntyre D. A. Establishment of vaginal microbiota composition in early pregnancy and its association with subsequent preterm prelabor rupture of the fetal membranes. Transl Res. 2019; 207: 30-43. http://dx.doi.org/10.1016/j.trsl.2018.12.005
  54. Ходжаева З.С., Припутневич Т.В., Муравьева В.В., Гусейнова Г.Э., Горина К.А., Мишина Н.Д. Оценка состава и стабильности микробиоты влагалища у беременных в процессе динамического наблюдения. Акушерство и гинекология. 2019; 7: 30–8.

  55. Li-Nan Zeng, Ling-li Zhang ,Jing Shi , Li-ling Gu, W.endie Grogan, Mary M. Gargano, Chen Chen The primary microbial pathogens associated with premature rupture of the membranes in China: A systematic review. Taiwan J Obstet Gynecol. 2014; 53(4): 443–51. http://dx.doi.org/10.1016/j.tjog.2014.02.003
  56. Liu L., Oza S., Hogan D., Perin J., Rudan I., Lawn J.E., et al. Global, regional, and national causes of child mortality in 2000-13, with projections to inform post-2015 priorities: an updated systematic analysis. Lancet. 2015; 385(9966): 430–40. doi: 10.1016/S0140-6736(14)61698-6.
  57. Linehan L.A., Walsh J., Morris A., Kenny L., O’Donoghue K., Dempsey E., et al. Neonatal and maternal outcomes following midtrimester preterm premature rupture of the membranes: a retrospective cohort study. BMC Pregnancy Childbirth. 2016; 16: 25. doi: 10.1186/s12884-016-0813-3.
  58. Gomez R., Romero R., Nien J.K., Medina .L, Carstens M., Kim Y.M., et al. Antibiotic administration to patients with preterm premature rupture of membranes does not eradicate intra-amniotic infection. J Matern Fetal Neonatal Med. 2007; 20: 167–73. doi: 10.1080/14767050601135485
  59. Gezer A., Parafit-Yalciner E., Guralp O., Yedigoz V., Altinok T., Madazli R. Neonatal morbidity mortality outcomes in preterm premature rupture of membranes. J Obstet Gynaecol. 2013; 33: 38–42. doi: 10.3109/01443615.2012.729620.
  60. Mukhtar F., Hameed A.B., Greenfield Sh., Billimek J. Perinatal Outcomes of Pre-viable Preterm Premature Rupture of Membranes. J Gyn Obs Bul. 2018; 2(1): 1–11. doi: https://doi.org/10.24218/jgob.2018.08.
  61. Korzeniewski S.J., Romero R., Cortez J., Pappas A., Schwartz A.G., Kim C.J., et al. A “multi-hit” model of neonatal white matter injury: cumulative contributions of chronic placental inflammation, acute fetal inflammation and postnatal inflammatory events. J Perinat Med. 2014; 42: 731–43. doi: 10.1515/jpm-2014-0250
  62. Garcia-Munoz R.F, Galan Henriquez G., Figueras Aloy J., Garcia-Alix P.A. Outcomes of very-low-birth-weight infants exposed to maternal clinical chorioamnionitis: a multicentre study. Neonatology. 2014; 106: 229–34. doi: 10.1159/000363127
  63. Soylu, H., Jefferies, A., Diambomba, Y., et al. Rupture of membranes before the age of viability and birth after the age of viability: comparison of outcomes in a matched cohort study. J Perinatol. 2010; 30: 645–9. doi:10.1038/jp.2010.11
  64. Staude B., Oehmke F., Lauer T., Behnke J., Göpel W., Schloter M., Schulz H., Krauss-Etschmann S., Ehrhardt H. The Microbiome and Preterm Birth: A Change in Paradigm with Profound Implications for Pathophysiologic Concepts and Novel Therapeutic Strategies. Biomed Res Int. 2018; 2018: 7218187. doi: 10.1155/2018/7218187

Поступила 19.06.2019

Принята в печать 21.06.2019

Об авторах / Для корреспонденции

Гусейнова Гюльнара Эльхановна, аспирант 1 отделения акушерского патологии беременности ФГБУ «НМИЦ АГиП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7 (967)153-18-81. Е-mail: marysca666@rambler.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Ходжаева Зульфия Сагдуллаевна, д.м.н., профессор, заведующий 1 отделением акушерским патологии беременности ФГБУ «НМИЦ АГиП им. академика
В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7 (916)407-75-67. Е-mail: zkhodjaeva@mail.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Муравьева Вера Васильевна, к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории микробиологии отдела микробиологии и клинической фармакологии ФГБУ
«НМИЦАГиП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7 (495)438-25-33. Е-mail: v_muravieva@oparina4.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Для цитирования: Гусейнова Г.Э., Ходжаева З.С., Муравьева В.В. Роль микробиоты влагалища при досрочном преждевременном разрыве плодных оболочек. Акушерство и гинекология. 2020; 1: 20-5.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.1.20-25

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.