Влияние длины теломер и активности теломеразы на исходы программ вспомогательных репродуктивных технологий

Петрова О.В., Кириллова А.О., Налобин Д.С., Ушакова И.В., Абубакиров А.Н.

1) ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения РФ, Москва, Россия; 2) Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
В данном обзоре описана значимость теломер и теломеразы для репродукции человека. Рассмотрено влияние сопутствующих заболеваний на длину теломер у женщин и мужчин. Описана активность теломеразы и длины теломер на разных этапах онтогенеза: от сперматогенеза и оогенеза до последующего развития эмбрионов. Представлена информация о разных исследованиях, проведенных в рамках программ вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ), показывающих связь между длиной теломер, теломеразной активностью и фертильностью. Многие работы показали, что длина теломер в половых клетках человека оказывает положительное влияние на формирование и дальнейшее развитие эмбрионов. Также была продемонстрирована взаимосвязь между длиной теломерных участков и фертильностью. Например, у мужчин с более короткими теломерами формировались эмбрионы более низкого качества, нежели у мужчин с более длинными теломерами сперматозоидов. Также у мужчин с повышенной фрагментацией ДНК сперматозоидов наблюдается пониженная длина теломер. У женщин короткая длина теломер ассоциирована с различными заболеваниями. Наличие удлиненных теломеров в ооцитах показало, что вероятность формирования эмбрионов хорошего качества возрастает.
Заключение. Роль длины теломер и активности теломеразы в половых клетках может позволить спрогнозировать эффективность программ ВРТ, а также в будущем внедрить новые анализы, ориентированные на поиск причин мужского и женского бесплодия.

Ключевые слова

теломеры
теломераза
длина теломер сперматозоидов
длина теломер ооцитов
ВРТ
ЭКО

Теломеры – это участки на концах хромосом, состоящие из определенной теломерной ДНК и белков. Человек и все позвоночные на концах всех хромосом имеют монотонный повтор TTAGGG размером в сотни и тысячи оснований [1]. В подавляющей части соматических клеток теломерная ДНК становится короче в процессе пролиферации клеток в результате неполного удвоения концевых участков (концевой недорепликации), когда полученная копия выходит короче оригинальной [1]. Когда пролиферация клеток заканчивается, и клетка теряет способность делиться, укороченные (но при этом включающие в себя несколько тысяч оснований ДНК) теломеры приводят к явлению репликативного старения [1].

Hayflick L. в начале 1960-х гг., наблюдая за фибробластами, развивающимися в культуре, обнаружил, что после 50 делений клетка переходит в неделящееся состояние, а позже наступает апоптоз [2]. Причиной служит постепенное укорочение теломерных участков при каждом последующем делении клетки [2].

Спустя 10 лет русский ученый, биолог А.М. Олов­ников выдвинул теорию маргинотомии. Ее суть заключалась в том, что из-за недорепликации последовательностей ДНК на концевых участках клетка способна делиться ограниченное количество раз, то есть при матричном синтезе нуклеотидов ДНК-полимераза не может полностью повторить линейную матрицу, и новая копия становится короче предыдущей, что сокращает пролиферативный потенциал клеток и приводит впоследствии к клеточному старению [3, 4]. По мнению автора, «нестарение» бактерий можно объяснить кольцевым строением ДНК, а концевые участки раковых и стволовых клеток удлиняются за счет особого фермента, который назван тандем-ДНК-полимеразой [3, 4].

В 1985 г. Кэрол Грейдер обнаружила, что существует специфический фермент, благодаря которому на теломерных участках хромосомы к 3’-концу добавляются повторяющиеся фрагменты нуклеотидов [5]. Специфический фермент получил название теломеразы, которая является обратной транскриптазой [5]. Так теория Оловникова была подтверждена. Далее было выявлено, что в процессе репликации теломерных участков принимает участие не только теломераза, а еще и ряд ферментов (теломеразный комплекс), стабилизируя укорочения и удлинения концов хромосом [6].

Поддержание активности теломеразы в течение более длительного времени необходимо, чтобы половые клетки задерживали разрушение теломер, таким образом, избегая дефектов сегрегации хромосом, которые могли бы способствовать анеуплоидным или несбалансированным гаметам [6].

За последние несколько лет биология теломер стала важной темой в области репродукции человека, что побудило ряд исследований сосредоточиться на связи между длиной теломер и сперматогенезом, мужской фертильностью, развитием и качеством эмбрионов во время проведения вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ), а также такими женскими заболеваниями, как синдром поликистозных яичников, преждевременная недостаточность яичников и эндометриоз [5–7].

Поскольку активность теломеразы в большинстве клеток взрослого организма прекращается, теломеры подвержены постепенному укорочению, что приводит к явлению, известному как репликативное старение [8]. Количество клеточных делений фактически ограничено, и этот предел, известный как «предел Хейфлика», представляет собой явление, после которого происходит остановка клеточного цикла [9].

Длина теломер сперматозоидов и ее роль в репродукции

Напротив, в отличие от того, что происходит в соматических клетках, активность теломеразы в мужских половых клетках останавливается позже во время сперматогенеза. Это событие может частично объяснить, почему у сперматозоидов теломеры длиннее других типов клеток [8–12]. Высокая активность теломеразы в сперматогониях типа А медленно снижается вплоть до полной инактивации фермента в зрелых сперматозоидах [13].

Сперматогонии подвергаются большему количеству митотических делений по сравнению с оогониями, поскольку сперматогонии продолжают делиться и в постнатальном периоде жизни, теломеры сперматозоидов длиннее, чем у ооцитов [14].

Как известно, наличие удлиненных или стабилизированных теломер необходимо для иммортализации клетки, что может быть достигнуто специальными механизмами [15, 16]. Основное влияние на эти механизмы оказывает теломераза. Однако есть клетки, имеющие длинные и гетерогенные теломеры, но при этом теломеразная активность не наблюдается [15, 16]. Более того, укороченные теломеры в этих клетках активно удлиняются до больших размеров [16]. Это явление объясняется существованием альтернативных механизмов удлинения теломер [15–17].

Неожиданное удлинение теломер, наблюдаемое на разных стадиях созревания мужских половых клеток, несмотря на отсутствие активности теломеразы, привело к гипотезе о том, что механизм альтернативного удлинения теломер может удлинять теломеры во время сперматогенеза [18]. Вероятно, в половых клетках используются те же альтернативные механизмы удлинения теломер, что и в соматических клетках. Возможно, что удлинение теломерных концов в отсутствие теломеразы осуществляется за счет обмена теломерных последовательностей между длинными и короткими теломерами [19].

Исследования на животных показали, что теломеры сперматозоидов, как правило, длиннее, чем у ооцитов; и, кроме того, естественное размножение самок мышей Mus musculus и самцов Mus spretus приводит к появлению потомства с более короткими теломерами, чем у самок Mus musculus и самцов Mus musculus, поскольку длина теломер сперматозоидов Mus musculus длиннее, чем длина теломер у Mus spretus. [20]. Это различие может указывать на то, что длина теломер у потомства зависит от отцовской длины теломер [20]. Недавние исследования также показали, что у потомков отцов, которые были старше на момент зачатия, были не только более длинные теломеры лейкоцитов, но и более длинные теломеры сперматозоидов, чем у потомков, зачатых от молодых отцов [21–24].

Большой интерес представляет то, что длина теломер сперматозоидов коррелирует с нарушениями в параметрах спермограммы: у мужчин с олигозооcпермией (состояние спермы, при котором концентрация сперматозоидов в эякуляте ниже нормы) длина теломер сперматозоидов была ниже, чем у мужчин с нормозооспермией [24]. Кроме того, была продемонстрирована корреляция между длиной теломер сперматозоидов и качеством полученных эмбрионов: у пациентов с более короткими теломерами формировались эмбрионы более низкого качества, чем у мужчин, у которых длина теломер сперматозоидов была большой [25]. Также длина теломер сперматозоидов была существенно выше в образцах обработанного эякулята, центрифугированного в градиенте плотности [26] или методом всплытия swim up [27], чем в нативных образцах. Кроме того, была обнаружена положительная корреляция между длиной теломер сперматозоидов, их подвижностью и показателями жизнеспособности у мужчин с нормозооспермией [28] и между длиной теломер сперматозоидов и частотой оплодотворения в образцах с нормальными показателями спермограммы [29]. Было выявлено, что сперматозоиды с более короткими теломерами имеют более фрагментированную ДНК [28]. Это свидетельствует о том, что длина теломер сперматозоидов является дополнительным параметром спермы, который может добавить информацию о повреждении ДНК у мужчин с нормозооспермией [28]. Таким образом, длина теломер сперматозоидов является важным параметром фертильности мужчин, что открывает новые перспективы в оценке и диагностике мужского бесплодия.

Длина теломер и женское бесплодие

Известно, что более короткая длина теломер связана с рядом хронических заболеваний, таких как сердечно-сосудистые заболевания, инсульт, рак, артрит, остеопороз, сахарный диабет 2 типа, гипертония, психические заболевания, хроническая обструктивная болезнь легких и деменция [30–34]. Интересно, что в ряде исследований сообщается о взаимосвязи между репродуктивным старением и длиной теломер лейкоцитов, что свидетельствует о взаимосвязи между зародышевой линией и длиной соматических теломер. У женщин старшего репродуктивного возраста, родивших детей с синдромом Дауна, средняя длина теломер лейкоцитов значительно короче, чем у сопоставимых по возрасту матерей, которые родили детей с нормальным кариотипом [35]. Тем не менее данная корреляция не относилась к более молодым матерям детей с синдромом Дауна [35, 36]. Кроме того, женщины с необъяснимыми неоднократными потерями беременностей также имели более короткую длину теломер лейкоцитов по сравнению с контрольной группой того же возраста [37]. Помимо естественного старения, на укорочение теломер могут влиять физическая активность, индекс массы тела, заместительная гормональная терапия, курение, хроническое воспаление, окислительный стресс, пищевые антиоксиданты и витамины. Многие исследования показали, что женщины, ведущие здоровый образ жизни, имеют более длинные теломеры лейкоцитов [7].

Длина теломер в клетках гранулезы также ассоциирована с репродуктивным здоровьем женщин. Butts S. et al. выявили, что у женщин со сниженным овариальным резервом теломеры в клетках гранулезы короче и имеют меньшую активность теломеразы [38]. Преждевременная недостаточность яичников также была связана как с более короткой длиной теломер лейкоцитов, так и с длиной теломер клеток гранулезы [39]. Другим фактором, обычно приводящим к бесплодию, является синдром поликистозных яичников (СПКЯ). Несколько исследований были сосредоточены на связи между длиной теломер и СПКЯ [40, 41–46]. Тем не менее исследования различаются по типу ассоциации и корреляции. Из 7 рассмотренных исследований 3 исследования показали отрицательную связь между длиной теломер лейкоцитов у пациентов контрольной группы и у пациентов с СПКЯ [40–42]. Wei D. et al. продемонстрировали значительно большую длину теломер клеток гранулезы между контрольной группой и пациентами с CПКЯ, но отрицательную связь между длиной теломер лейкоцитов между контрольной группой и пациентами с СПКЯ [43]. В другом исследовании была выявлена значительно большая длина теломер лейкоцитов у пациентов с СПКЯ [44]. В отличие от этого, Li Y. et al. продемонстрировали, что длина теломер лейкоцитов была короче у женщин с СПКЯ, и что короткая длина теломер лейкоцитов увеличивала риск заболевания [45]. Другая группа продемонстрировала более короткую длину теломер клеток гранулезы и более раннее начало симптомов бесплодия у женщин с более низким уровнем активности теломеразы и CПКЯ [46]. Высокая активность теломеразы в клетках эндометрия наблюдалась в секреторной фазе бесплодных женщин с эндометриозом по сравнению со здоровыми женщинами или фертильными женщинами с эндометриозом [47].

Основополагающим фактором для наступления беременности является успешная имплантация эмбриона. Имплантационное окно находится в середине секреторной фазы менструального цикла, которая включает доминирующее действие прогестерона с максимальной дифференцировкой клеток. Этот период также связан с наименьшей активностью теломеразы эндометрия и наименьшей средней длиной теломер в клетках эндометрия, что указывает на необходимость низкой активности теломеразы эндометрия для наступления беременности [48, 49]. Такое подавление активности теломеразы в эндометрии фертильных женщин было предложено в качестве процесса, позволяющего клеткам эндометрия подвергаться дифференцировке с клеточным апоптозом, необходимым для освобождения места для имплантации эмбриона [40, 48, 49].

Согласно исследованию, проведенному Kalmbach K.H. et al., репродуктивное старение вклю­чает в себя снижение как числа ооцитов, так и способности к развитию и может объясняться укорочением теломер [50]. Короткая длина теломер в ооцитах и эмбрионах ассоциирована с неудачами в программах экстракорпорального оплодотворения (ЭКО). Исследования показали, что женщины, которые не забеременели после ЭКО, имеют более короткие теломеры в ооцитах по сравнению с теми, кто забеременел [51]. Также из ооцитов с более короткими теломерами формировались эмбрионы с фрагментацией [52]. Недавнее исследование продемонстрировало прямую связь между короткой длиной теломер в полярных телах и анеуплоидными эмбрионами [53]. Парадоксальным является то, что, несмотря на сокращение длины теломер, связанное со старением клеток, происходит удлинение теломер во время ранних клеточных циклов развития, благодаря механизму, включающему рекомбинацию, сестринский хроматидный обмен и активацию работы теломеразы после стадии бластоцисты [10].

Активность теломеразы в эмбриональном развитии

Наличие длинных теломер является очевидным эволюционным преимуществом. Короткие теломеры могут поставить под угрозу беременность, влияя на формирование, развитие, имплантацию и постимплантационное развитие эмбриона [6]. Интересным является то, что при ЭКО по длине теломер в яйцеклетке можно спрогнозировать наступление беременности. Если средняя длина теломер уменьшится до менее 6,32 т.п.н., то вероятность наступления беременности снизится [51]. Объяснением повышенного риска репродуктивной недостаточности могут быть высокие ошибки сегрегации во время митоза, определяющие нарушение раннего развития эмбриона [6].

Теломеразная активность присутствует в клетках сперматогенеза, оогенеза человека, а также в эмбриональных тканях зародыша [1]. В женских половых клетках наблюдается пик активности теломеразы в оогониях, тогда как зрелые ооциты не имеют или имеют низкую активность [54]. Интересно, что недавние исследования показали, что активность теломеразы является низкой как в ооците после оплодотворения, так и в зиготе и очень высокой в эмбрионах на стадии бластоцисты, достигая максимальной активности [55–57]. Начиная со стадии бластоцисты, теломераза активируется в высокой степени и обнаруживается во всех тканях плода человека во время первых 13 недель беременности [1]. Активность теломеразы наблюдается в некоторых тканях эмбриона (кишечник, печень, кожа, легкие, мышцы, надпочечники и почки) и пропадает позже 16 недели беременности в костях и мозге, несмотря на активное деление клеток, соответственно, и развитие тканей [1].

Заключение

Изучение теломер представляет большой интерес для современной репродуктологии и эмбриологии. Много­численные исследования показали наличие положительной корреляции между длиной теломер в половых клетках и мужской и женской фертильностью, а вследствие этого, – исходами программ ВРТ.

Анализ научных данных показывает, что длина теломер является важнейшим биологическим маркером компетенции и качества половых клеток. Ряд научных работ продемонстрировали, что при использовании гамет с более длинными теломерами успешность программ ВРТ существенно возрастает. Это может объясняться тем, что биологическая функция теломер чрезвычайно важна: теломеры защищают концы хромосом от деградации и слияния с другими хромосомами; также благодаря теломерам можно избежать дефектов сегрегации хромосом, которые могли бы способствовать анеуплоидным или несбалансированным гаметам. Большой научный интерес представляет изучение влияния длины теломер в половых клетках на исходы программ ВРТ, а также активности теломеразы на разных этапах развития клеток и эмбрионов. Полученные научные данные о длине теломер в половых клетках человека позволят глубже понять механизмы удлинения и функционирования теломер.

Исследование длины теломер и активности теломеразы открывает перспективы внедрения новых клинических анализов, направленных на выявление и диагностику причин мужского и женского бесплодия.

Список литературы

  1. Егоров Е.Е. Теломеры, теломераза, канцерогенез и мера здоровья. Клиническая онкогематология. Фундаментальные исследования и клиническая практика. 2010; 3(2): 184-97.
  2. Hayflick L., Moorhead P.S. The serial cultivation of human diploid cell strains. Exp. Cell Res. 1961; 25: 585-621. https://dx.doi.org/10.1016/0014-4827(61)90192-6.
  3. Оловников А.М. Принцип маргинотомии в матричном синтезе полинуклеотидов. Доклады Академии наук СССР. 1971; 201(6): 1496-9.
  4. Оловников А.М. Иммунный ответ и процесс маргинотомии в лимфоидных клетках. Вестник АМН СССР. 1972; 12: 85-7.
  5. Oeseburg H., de Boer R.A., van Gilst W.H., van der Harst P. Telomere biology in healthy aging and disease. Pflugers Arch. 2010; 459(2): 259-68. https://dx.doi.org/10.1007/s00424-009-0728-1.
  6. Rocca M.S., Foresta C., Ferlin A. Telomere length: lights and shadows on their role in human reproduction. Biol. Reprod. 2019; 100(2): 305-17. https://dx.doi.org/10.1093/biolre/ioy208.
  7. Parks C.G., DeRoo L.A., Miller D.B., McCanlies E.C., Cawthon R.M., Sandler D.P. Employment and work schedule are related to telomere length in women. Occup. Environ. Med. 2011; 68(8): 582-9. https://dx.doi.org/10.1136/oem.2010.063214.
  8. Kim N.W., Piatyszek M.A., Prowse K.R., Harley C.B., West M.D., Ho P.L. et al. Specific association of human telomerase activity with immortal cells and cancer. Science. 1994; 266(5193): 2011-5. https://dx.doi.org/10.1136/oem.2010.06321410.1126/science.7605428.
  9. Riethman H. Human telomere structure and biology. Annu. Rev. Genomics Hum. Genet. 2008; 9: 1-19. https://dx.doi.org/10.1146/annurev.genom.8.021506.172017.
  10. Keefe D.L., Liu L. Telomeres and reproductive aging. Reprod. Fertil. Dev. 2009; 21(1): 10-4. https://dx.doi.org/10.1071/RD08229.
  11. Reig-Viader R., Brieno-Enrıquez M.A., Khoriauli L., Toran N., Cabero L., Giulotto E. et al. Telomeric repeat-containing RNA and telomerase in human fetal oocytes. Hum. Reprod. 2013; 28(2): 414-22. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/des363.
  12. Reig-Viader R., Vila-Cejudo M., Vitelli V., Busca R., Sabate M., Giulotto E. et al. Telomeric repeat-containing RNA (TERRA) and telomerase are components of telomeres during mammalian gametogenesis. Biol. Reprod. 2014; 90(5): 103. https://dx.doi.org/10.1095/biolreprod.113.116954.
  13. Achi M.V., Ravindranath N., Dym M. Telomere length in male germ cells is inversely correlated with telomerase activity. Biol. Reprod. 2000; 63(2): 591-8. https://dx.doi.org/10.1095/biolreprod63.2.591.
  14. Turner S., Hartshorne G.M. Telomere lengths in human pronuclei, oocytes and spermatozoa. Mol. Hum. Reprod. 2013; 19(8): 510-8. https://doi.org/10.1093/molehr/gat021.
  15. Bryan T.M., Englezou A., Gupta J., Bacchetti S., Reddel R.R. Telomere elongation in immortal human cells without detectable telomerase activity. EMBO J. 1995; 14(17): 4240-8.
  16. Reddel R.R., Bryan T.M., Colgin L.M., Perrem K.T., Yeager T.R. Alternative lengthening of telomeres in human cells. Radiat. Res. 2001; 155(1): 194-200. https://dx.doi.org/10.1667/0033-7587(2001)155
  17. Henson J.D., Neumann A.A., Yeager T.R., Reddel R.R. Alternative lengthening of telomeres in mammalian cells. Oncogene. 2002; 21(4): 598-610. https://dx.doi.org/10.1038/sj.onc.1205058.
  18. Lafuente R., Bosch-Rue E., Ribas-Maynou J., Alvarez J., Brassesco C., Amengual M.J. et al. Sperm telomere length in motile sperm selection techniques: a qFISH approach. Andrologia. 2018; 50(2): e12840. https://dx.doi.org/10.1111/and.12840.
  19. Martens U.M., Chavez E.A., Poon S.S., Schmoor C., Lansdorp P.M. Accumulation or short telomeres in human fibroblasts prior to replicative senescence. Exp. Cell Res. 2000; 256(1): 291-9. https://dx.doi.org/10.1006/excr.2000.4823.
  20. de Frutos C., Lopez-Cardona A.P., Fonseca Balvıs N., Laguna-Barraza R., Rizos D., Gutierrez-Adan A. et al. Spermatozoa telomeres determine telomere length in early embryos and offspring. Reproduction. 2016; 151(1): 1-7. https://dx.doi.org/10.1530/REP-15-0375.
  21. Prescott J., Du M., Wong J.Y.Y., Han J., De Vivo I. Paternal age at birth is associated with offspring leukocyte telomere length in the nurses’ health study. Hum. Reprod. 2012; 27(12): 3622-31. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/des314.
  22. Aviv A., Susser E. Leukocyte telomere length and the Father’s age enigma: implications for population health and for life course. Int. J. Epidemiol. 2013; 42(2): 457-62. https://dx.doi.org/10.1093/ije/dys236.
  23. Eisenberg D.T., Hayes M.G., Kuzawa C.W. Delayed paternal age of reproduction in humans is associated with longer telomeres across two generations of descendants. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2012; 109(26): 10251-6. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.1202092109.
  24. Ferlin A., Rampazzo E., Rocca M.S., Keppel S., Frigo A.C., De Rossi A. et al. In young men sperm telomere length is related to sperm number and parental age. Hum. Reprod. 2013; 28(12): 3370-6. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/det392.
  25. Yang Q., Zhao F., Dai S., Zhang N., Zhao W., Bai R. et al. Sperm telomere length is positively associated with the quality of early embryonic development. Hum. Reprod. 2015; 30(8): 1876-81. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dev144.
  26. Yang Q., Zhang N., Zhao F., Zhao W., Dai S., Liu J. et al. Processing of semen by density gradient centrifugation selects spermatozoa with longer telomeres for assisted reproduction techniques. Reprod. Biomed. Online. 2015; 31(1): 44-50. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2015.02.016.
  27. Santiso R., Tamayo M., Gosalvez J., Meseguer M., Garrido N., Fernandez J.L.Swim-up procedure selects spermatozoa with longer telomere length. Mutat. Res. 2010; 688(1-2): 88-90. https://dx.doi.org/10.1016/j.mrfmmm.2010.03.003.
  28. Rocca M.S., Speltra E., Menegazzo M., Garolla A., Foresta C., Ferlin A. Sperm telomere length as a parameter of sperm quality in normozoospermic men. Hum. Reprod. 2016; 31(6): 1158-63. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dew061.
  29. Berneau S.C., Shackleton J., Nevin C., Altakroni B., Papadopoulos G., Horne G. et al. Associations of sperm telomere length with semen parameters, clinical outcomes and lifestyle factors in human normozoospermic samples. Andrology. 2020; 8(3): 583-93. https://dx.doi.org/10.1111/andr.12734.
  30. Ma H., Zhou Z., Wei S., Liu Z., Pooley K.A., Dunning A.M. et al. Shortened telomere length is associated with increased risk of cancer: a meta-analysis. PLoS One. 2011; 6(6): e20466. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0020466.
  31. Haycock P.C., Heydon E.E., Kaptoge S., Butterworth A.S., Thompson A., Willeit P. Leucocyte telomere length and risk of cardiovascular disease: systematic review and meta-analysis. BMJ. 2014; 349: g4227. https://dx.doi.org/10.1136/bmj.g4227.
  32. Willeit P., Raschenberger J., Heydon E.E., Tsimikas S., Haun M., Mayr A. et al. Leucocyte telomere length and risk of type 2 diabetes mellitus: New prospective cohort study and literature‑based meta-analysis. PLoS One. 2014; 9(11): e112483. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0112483.
  33. Aviv A., Kark J.D., Susser E. Telomeres, atherosclerosis, and human longevity: a causal hypothesis. Epidemiology. 2015; 26(3): 295-9. https://dx.doi.org/10.1097/EDE.0000000000000280.
  34. Zhang J., Rane G., Dai X., Shanmugam M.K., Arfuso F., Samy R.P. et al. Ageing and the telomere connection: an intimate relationship with inflammation. Ageing Res. Rev. 2016; 25: 55-69. https://dx.doi.org/10.1016/j.arr.2015.11.006.
  35. Ghosh S., Feingold E., Chakraborty S., Dey S.K. Telomere length is associated with types of chromosome 21 nondisjunction: a new insight into the maternal age effect on Down syndrome birth. Hum. Genet. 2010; 127(4): 403-9. https://dx.doi.org/10.1007/s00439-009-0785-8.
  36. Dorland M., van Montfrans J.M., van Kooij R.J., Lambalk C.B., te Velde E.R. Normal telomere lengths in young mothers of children with Down’s syndrome. Lancet. 1998; 352(9132): 961-2. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(05)61516-4.
  37. Hanna C.W., Bretherick K.L., Gair J.L., Fluker M.R., Stephenson M.D., Robinson W.P. Telomere length and reproductive aging. Hum. Reprod. 2009; 24(5): 1206-11. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dep007.
  38. Butts S., Riethman H., Ratcliffe S., Shaunik A., Coutifaris C., Barnhart K. Correlation of telomere length and telomerase activity with occult ovarian insufficiency. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2009; 94(12): 4835-43. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2008-2269.
  39. Xu X., Chen X., Zhang X., Liu Y., Wang Z., Wang P. et al. Impaired telomere length and telomerase activity in peripheral blood leukocytes and granulosa cells in patients with biochemical primary ovarian insufficiency. Hum. Reprod. 2017; 32(1): 201-7. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dew283.
  40. Hapangama D.K., Turner M.A., Drury J., Heathcote L., Afshar Y., Mavrogianis P.A. et al. Aberrant expression of regulators of cell-fate found in eutopic endometrium is found in matched ectopic endometrium among women and in a baboon model of endometriosis. Hum. Reprod. 2010; 25(11): 2840-50. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deq248.
  41. Kalyan S., Patel M.S., Kingwell E., Côté H.C.F., Liu D., Prior J.C. Competing factors link to bone health in polycystic ovary syndrome: chronic low-grade inflammation takes a toll. Sci. Rep. 2017; 7(1): 3432. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-017-03685-x.
  42. Miranda-Furtado C.L., Ramos F.K., Kogure G.S., Santana-Lemos B.A., Ferriani R.A., Calado R.T. et al. A nonrandomized trial of progressive resistance training intervention in women with polycystic ovary syndrome and its implications in telomere content. Reprod. Sci. 2016; 23(5): 644-54. https://dx.doi.org/10.1177/1933719115611753.
  43. Wei D., Xie J., Yin B., Hao H., Song X., Liu Q. et al. Significantly lengthened telomere in granulosa cells from women with polycystic ovarian syndrome (PCOS). J. Assist. Reprod. Genet. 2017; 34(7): 861-6. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-017-0945-z.
  44. Wang C., Shen F., Zhu Y., Fang Y., Lu S. Telomeric repeat-containing RNA (TERRA) related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Clin. Endocrinol. (Oxf). 2017; 86(4): 552-9. https://dx.doi.org/10.1111/cen.13283.
  45. Li Q., Du J., Feng R., Xu Y., Wang H., Sang Q. et al. A possible new mechanism in the pathophysiology of polycystic ovary syndrome (PCOS): the discovery that leukocyte telomere length is strongly associated with PCOS. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2014; 99(2): E234-40. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2013-3685.
  46. Li Y., Deng B., Ouyang N., Yuan P., Zheng L., Wang W. Telomere length is short in PCOS and oral contraceptive does not affect the telomerase activity in granulosa cells of patients with PCOS. J. Assist. Reprod. Genet. 2017; 34(7): 849-59. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-017-0929-z.
  47. Sofiyeva N., Ekizoglu S., Gezer A., Yilmaz H., Kolomuc Gayretli T., Buyru N. et al. Does telomerase activity have an effect on infertility in patients with endometriosis? Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2017; 213: 116-22. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2017.04.027.
  48. Valentijn A.J., Saretzki G., Tempest N., Critchley H.O., Hapangama D.K. Human endometrial epithelial telomerase is important for epithelial proliferation and glandular formation with potential implications in endometriosis. Hum. Reprod. 2015; 30(12): 2816-28. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dev267.
  49. Williams C.D., Boggess J.F., LaMarque L.R., Meyer W.R., Murray M.J.,Fritz M.A. et al. A prospective, randomized study of endometrial telomerase during the menstrual cycle. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2001; 86(8): 3912-7. https://dx.doi.org/10.1210/jcem.86.8.7729.
  50. Kalmbach K.H., Antunes D.M., Kohlrausch F., Keefe D.L. Telomeres and female reproductive aging. Semin. Reprod. Med. 2015; 33(6): 389-95. https://dx.doi.org/10.1055/s-0035-1567823.
  51. Keefe D.L., Liu L., Marquard K. Telomeres and aging-related meiotic dysfunction in women. Cell. Mol. Life Sci. 2007; 64(2): 139-43. https://dx.doi.org/10.1007/s00018-006-6466-z.
  52. Keefe D.L., Franco S., Liu L., Trimarchi J., Cao B., Weitzen S. et al. Telomere length predicts embryo fragmentation after in vitro fertilization in women – toward a telomere theory of reproductive aging in women. Am. J. Obstet. Gynecol. 2005; 192(4): 1256-61; discussion 1260-1. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2005.01.036.
  53. Treff N.R., Su J., Taylor D., Scott R.T. Jr. Telomere DNA deficiency is associated with development of human embryonic aneuploidy. PLoS Genet. 2011; 7(6): e1002161. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pgen.1002161.
  54. Wright W.E., Piatyszek M.A., Rainey W.E., Byrd W., Shay J.W. Telomerase activity in human germ line and embryonic tissues and cells. Dev. Genet. 1996; 18(2): 173-9. https://dx.doi.org/10.1002/(SICI)1520-6408(1996)18:2<173::AID-DVG10>3.0.CO;2-3.
  55. Liu L., Bailey S.M., Okuka M., Munoz P., Li C., Zhou L. et al. Telomere lengthening early in development. Nat. Cell Biol. 2007; 9(12): 1436-41. https://dx.doi.org/10.1038/ncb1664.
  56. Iqbal K., Kues W.A., Baulain U., Garrels W., Herrmann D., Niemann H. Species-specific telomere length differences between blastocyst cell compartments and ectopic telomere extension in early bovine embryos by human telomerase reverse transcriptase. Biol. Reprod. 2011; 84(4): 723-33. https://dx.doi.org/10.1095/biolreprod.110.087205.
  57. Schaetzlein S., Lucas-Hahn A., Lemme E., Kues W.A., Dorsch M., Manns M.P. et al. Telomere length is reset during early mammalian embryogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004; 101(21): 8034-8. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.0402400101.

Поступила 24.08.2020

Принята в печать 29.10.2020

Об авторах / Для корреспонденции

Петрова Ольга Владимировна, м.н.с. 1-го гинекологического отделения, ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(917)533-32-08. E-mail: olga.zaharkina.90@mail.ru. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Кириллова Анастасия Олеговна, к.б.н., с.н.с. 1-го гинекологического отделения, ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
E-mail: stasia.kozyreva@gmail.com. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Налобин Денис Сергеевич, к.б.н., с.н.с. лаборатории прототипирования и испытаний биологических разработок биологического факультета; доцент биотехнологического факультета, МГУ им. М.В. Ломоносова. Тел.: +7(495)939-33-35. E-mail: denis.nalobin@gmail.com. 119991, Россия, Москва, Ленинские горы, д. 1.
Ушакова Ирина Вячеславовна, к.б.н., эмбриолог 1-го гинекологического отделения, ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Тел.: +7(495)438-26-22. E-mail: irisun77@mail.ru. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Абубакиров Айдар Назимович, к.м.н., руководитель 1-го гинекологического отделения, ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Тел.: +7(495)438-26-22. Е-mail: nondoc555@yahoo.com. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Для цитирования: Петрова О.В., Кириллова А.О., Налобин Д.С., Ушакова И.В., Абубакиров А.Н. Влияние длины теломер и активности теломеразы на исходы программ вспомогательных репродуктивных технологий.
Акушерство и гинекология. 2020; 11: 49-54
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.11.49-54

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.