Роль плацентарных макрофагов при физиологической беременности и преэклампсии

Вишнякова П.А., Ельчанинов А.В., Киселева В.В., Муминова К.Т., Ходжаева З.С., Еремина И.З., Фатхудинов Т.Х.

1) ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия; 2) ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов» Министерства науки и высшего образования Российской Федерации, Москва, Россия; 3) ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына», Москва, Россия
Преэклампсия (ПЭ) – это мультисистемное гестационное осложнение, которое является ведущей причиной материнской и перинатальной заболеваемости и смертности. Сегодня накоплен большой массив данных, свидетельствующих о том, что дисфункция иммунного ответа в организме матери при ПЭ выражается, в том числе, в изменении функциональной активности моноцитарно-макрофагальной системы, наиболее важной единицы врожденного иммунитета. Причиной дефектной плацентации, лежащей в основе ПЭ, особенно ранней, может быть нарушение функционирования плацентарных иммунных клеток, а именно, макрофагов. Макрофаги являются одним из основных клеточных компонентов децидуальной оболочки, материнской составляющей плаценты, а также играют важную роль в развитии плодной части плаценты, по сути, являясь одними из первых иммунных клеток ребенка. В зависимости от своего функционального состояния макрофаги могут, как стимулировать, так и подавлять воспаление, ангиогенез, пролиферацию соседних клеток. Согласно концепции бинарной поляризации, существуют два состояния макрофагов: классически активированные макрофаги (М1) продуцируют провоспалительные цитокины и активные формы кислорода/азота. Другой тип макрофагов (М2) продуцирует противовоспалительные цитокины и участвует в устранении воспаления.
Заключение: Обратившись к ключевым дифференциальным маркерам макрофагов, в данном обзоре мы попытались суммировать современные данные о функционировании моноцит-макрофагальной системы при физиологической беременности и при ПЭ.

Ключевые слова

преэклампсия
макрофаги
воспаление
фенотип
поляризация

Список литературы

  1. Conde-Agudelo A., Villar J., Lindheimer M. World Health Organization S-systematic review of screening tests for preeclampsia. Obstet. Gynecol. 2004; 104(6): 1367-91. https://dx.doi.org/10.1097/01.AOG.0000147599.47713.5d.
  2. Вишнякова П.А., Кан. Н.Е., Ходжаева З.С., Высоких М.Ю. Митохондрии плаценты в норме и при преэклампсии. Акушерство и гинекология. 2017; 5: 5-8.
  3. Зарипова Л.Р., Галина Т.В., Голикова Т.П., Гондаренко А.С. Прогнозирование и ранняя диагностика преэклампсии. Вестник РУДН. 2012; 6: 15-22.
  4. World Health Organization. WHO recommendations for prevention and treatment of pre-eclampsia and eclampsia. Geneva: World Health Organization; 2011. Available at: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK140561/ Accessed May 23, 2016.
  5. Duley L. The global impact of pre-eclampsia and eclampsia. Semin. Perinatol. 2009; 33(3): 130-7. https://dx.doi.org/10.1053/j.semperi.2009.02.010.
  6. Steegers E.A.P., von Dadelszen P., Duvekot J.J., Pijnenborg R. Pre-eclampsia. Lancet. 2010; 376(9741): 631-44. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(10)60279-6.
  7. Vishnyakova P., Elchaninov A., Fatkhudinov T., Sukhikh G. Role of the monocyte–macrophage system in normal pregnancy and preeclampsia. Int. J. Mol. Sci. 2019; 20(15): 3695. https://dx.doi.org/10.3390/ijms20153695.
  8. Mills C.D. Anatomy of a discovery: M1 and M2 macrophages. Front. Immunol. 2015; 6: 212. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2015.00212
  9. Yao Y., Xu X.H., Jin L. Macrophage polarization in physiological and pathological pregnancy. Front. Immunol. 2019; 10: 792. https://dx.doi.org/10.3389/FIMMU.2019.00792/BIBTEX.
  10. Novak M.L., Koh T.J. Macrophage phenotypes during tissue repair. J. Leukoc. Biol. 2013; 93(6): 875-81. https://dx.doi.org/10.1189/JLB.1012512.
  11. White M.J.V., Gomer R.H. Trypsin, tryptase, and thrombin polarize macrophages towards a pro-fibrotic M2a phenotype. PLoS One. 2015; 10(9): e0138748. https://dx.doi.org/10.1371/JOURNAL.PONE.0138/
  12. Wang L.X., Zhang S.X., Wu H.J., Rong X.L., Guo J. M2b macrophage polarization and its roles in diseases. J. Leukoc. Biol. 2019; 106(2): 345-8. https://dx.doi.org/10.1002/JLB.3RU1018-37
  13. Zulu M.Z., Martinez F.O., Gordon S., Gray C.M. The elusive role of placental macrophages: the Hofbauer cell. J. Innate Immun. 2019; 11(6): 447-56. https://dx.doi.org/10.1159/000497416.
  14. Heikkinen J., Möttönen M., Komi J., Alanen A., Lassila O. Phenotypic characterization of human decidual macrophages. Clin. Exp. Immunol. 2003; 131(3): 498-505. https://dx.doi.org/10.1046/J.1365-2249.2003.02092.X.
  15. Chazaud B. Macrophages: Supportive cells for tissue repair and regeneration. Immunobiology. 2014; 219(3): 172-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.imbio.2013.09.001.
  16. Perdiguero E.G., Geissmann F. The development and maintenance of resident macrophages. Nat. Immunol. 2016; 17(1): 2-8. https://dx.doi.org/10.1038/ni.3341.
  17. Hoeffel G., Ginhoux F. Fetal monocytes and the origins of tissue-resident macrophages. Cell. Immunol. 2018; 330: 5-15. https://dx.doi.org/10.1016/j.cellimm.2018.01.001.
  18. Kim J.S., Romero R., Kim M.R., Kim Y.M., Friel L., Espinoza J., Kim C.J. Involvement of hofbauer cells and maternal T cells in villitis of unknown aetiology. Histopathology. 2008; 52(4): 457-64. https://dx.doi.org/10.1111/J.1365-2559.2008.02964.X.
  19. Kim M.J., Romero R., Kim C.J., Tarca A.L., Chhauy S., LaJeunesse C. et al. Villitis of unknown etiology is associated with a distinct pattern of chemokine up-regulation in the feto-maternal and placental compartments: implications for conjoint maternal allograft rejection and maternal anti-fetal graft-versus-host disease. J. Immunol. 2009; 182(6): 3919-27. https://dx.doi.org/10.4049/jimmunol.0803834.
  20. Takahashi K., Naito M., Katabuchi H., Higashi K. Development, differentiation, and maturation of macrophages in the chorionic villi of mouse placenta with special reference to the origin of Hofbauer cells. J. Leukoc. Biol. 1991; 50(1): 57-68. https://dx.doi.org/10.1002/JLB.50.1.57.
  21. Seval Y., Korgun E.T., Demir R. Hofbauer cells in early human placenta: possible implications in vasculogenesis and angiogenesis. Placenta. 2007; 28(8-9): 841-5. https://dx.doi.org/10.1016/J.PLACENTA.2007.01.010.
  22. Hoeffel G., Chen J., Lavin Y., Low D., Almeida F.F., See P. et al. C-Myb(+) erythro-myeloid progenitor-derived fetal monocytes give rise to adult tissue-resident macrophages. Immunity. 2015; 42(4): 665-78. https://dx.doi.org/10.1016/j.immuni.2015.03.011.
  23. Sun F., Wang S., Du M. Functional regulation of decidual macrophages during pregnancy. J. Reprod. Immunol. 2021; 143: 103264. https://dx.doi.org/10.1016/J.JRI.2020.103264.
  24. Murray P.J. Macrophage polarization. Annu. Rev. Physiol. 2017; 79: 541-66. https://dx.doi.org/10.1146/annurev-physiol-022516-034339.
  25. Murray P.J., Wynn T.A. Obstacles and opportunities for understanding macrophage polarization. J. Leukoc. Biol. 2011; 89(4): 557-63. https://dx.doi.org/10.1189/jlb.0710409.
  26. Martinez F.O., Gordon S. The M1 and M2 paradigm of macrophage activation: time for reassessment. F1000Prime Reports. 2014; 6: 13. https://dx.doi.org/10.12703/P6-13.
  27. Pepe G., Locati M., Della Torre S., Mornata F., Cignarella A., Maggi A., Vegeto E. The estrogen–macrophage interplay in the homeostasis of the female reproductive tract. Hum. Reprod. Update. 2018; 24(6): 652-72. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmy026.
  28. Tagliani E., Shi C., Nancy P., Tay C.S., Pamer E.G., Erlebacher A. Coordinate regulation of tissue macrophage and dendritic cell population dynamics by CSF-1. J. Exp. Med. 2011; 208(9): 1901-16. https://dx.doi.org/10.1084/JEM.20110866.
  29. Hashimoto D., Chow A., Noizat C., Teo P., Beasley M.B., Leboeuf M. et al. Tissue-resident macrophages self-maintain locally throughout adult life with minimal contribution from circulating monocytes. Immunity. 2013; 38(4): 792-804. https://dx.doi.org/10.1016/j.immuni.2013.04.004.
  30. Jenkins S.J., Ruckerl D., Thomas G.D., Hewitson J.P., Duncan S., Brombacher F. et al. IL-4 directly signals tissue-resident macrophages to proliferate beyond homeostatic levels controlled by CSF-1. J. Exp. Med. 2013; 210(11): 2477-91. https://dx.doi.org/10.1084/JEM.20121999.
  31. Jackson-Jones L.H., Rückerl D., Svedberg F., Duncan S., Maizels R.M., Sutherland T.E. et al. IL-33 delivery induces serous cavity macrophage proliferation independent of interleukin-4 receptor alpha. Eur. J. Immunol. 2016; 46(10): 2311-21. https://dx.doi.org/10.1002/EJI.201646442.
  32. Pepe G., Braga D., Renzi T.A., Villa A., Bolego C., D'Avila F. et al. Self-renewal and phenotypic conversion are the main physiological responses of macrophages to the endogenous estrogen surge. Sci. Rep. 2017; 7: 44270. https://dx.doi.org/ 10.1038/srep44270.
  33. Senokuchi T., Matsumura T., Sakai M., Matsuo T., Yano M., Kiritoshi S. et al. Extracellular signal-regulated kinase and p38 mitogen-activated protein kinase mediate macrophage proliferation induced by oxidized low-density lipoprotein. Atherosclerosis. 2004; 176(2): 233-45. https://dx.doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2004.05.019.
  34. Ishii N., Matsumura T., Kinoshita H., Motoshima H., Kojima K., Tsutsumi A. et al. Activation of AMP-activated protein kinase suppresses oxidized low-density lipoprotein-induced macrophage proliferation. J. Biol. Chem. 2009; 284(50): 34561-9. https://dx.doi.org/10.1074/jbc.M109.028043.
  35. Biwa T., Hakamata H., Sakai M., Miyazaki A., Suzuki H., Kodama T. et al. Induction of murine macrophage growth by oxidized low density lipoprotein is mediated by granulocyte macrophage colony-stimulating factor. J. Biol. Chem. 1998; 273(43): 28305-13. https://dx.doi.org/10.1074/jbc.273.43.28305.
  36. Villa A., Rizzi N., Vegeto E., Ciana P., Maggi A. Estrogen accelerates the resolution of inflammation in macrophagic cells. Sci. Rep. 2015; 5(1): 15224. https://dx.doi.org/10.1038/srep15224.
  37. Cousins F.L., Kirkwood P.M., Saunders P.T.K., Gibson D.A. Evidence for a dynamic role for mononuclear phagocytes during endometrial repair and remodelling. Sci. Rep. 2016; 6(1): 36748. https://dx.doi.org/10.1038/srep36748.
  38. Hunt J.S., Robertson S.A. Uterine macrophages and environmental programming for pregnancy success. J. Reprod. Immunol. 1996; 32(1): 1-25. https://dx.doi.org/10.1016/s0165-0378(96)88352-5.
  39. Wira C.R., Fahey J.V., Rodriguez-Garcia M., Shen Z., Patel M.V. Regulation of mucosal immunity in the female reproductive tract: the role of sex hormones in immune protection against sexually transmitted pathogens. Am. J. Reprod. Immunol. 2014; 72(2): 236-58. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12252.
  40. Thiruchelvam U., Dransfield I., Saunders P.T.K., Critchley H.O.D. The importance of the macrophage within the human endometrium. J. Leukoc. Biol. 2013; 93(2): 217-25. https://dx.doi.org/10.1189/jlb.0712327.
  41. Lash G.E., Pitman H., Morgan H.L., Innes B.A., Agwu C.N., Bulmer J.N. Decidual macrophages: key regulators of vascular remodeling in human pregnancy. J. Leukoc. Biol. 2016; 100(2): 315-25. https://dx.doi.org/10.1189/jlb.1A0815-351R.
  42. Smith S.D., Dunk C.E., Aplin J.D., Harris L.K., Jones R.L. Evidence for immune cell involvement in decidual spiral arteriole remodeling in early human pregnancy. Am. J. Pathol. 2009; 174(5): 1959-71. https://dx.doi.org/10.2353/ajpath.2009.080995.
  43. Hazan A.D., Smith S.D., Jones R.L., Whittle W., Lye S.J., Dunk C.E. Vascular-leukocyte interactions. Am. J. Pathol. 2010; 177(2): 1017-30. https://dx.doi.org/10.2353/ajpath.2010.091105.
  44. Chen Q., Guo F., Jin H.Y., Lau S., Stone P., Chamley L. Phagocytosis of apoptotic trophoblastic debris protects endothelial cells against activation. Placenta. 2012; 33(7): 548-53. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2012.03.007.
  45. Katabuchi H., Yih S., Ohba T., Matsui K., Takahashi K., Takeya M., Okamura H. Characterization of macrophages in the decidual atherotic spiral artery with special reference to the cytology of foam cells. Med. Electron Microsc. 2003; 36(4): 253-62. https://dx.doi.org/10.1007/S00795-003-0223-2.
  46. Reister F., Frank H.G., Heyl W., Kosanke G., Huppertz B., Schröder W. et al. The distribution of macrophages in spiral arteries of the placental bed in pre-eclampsia differs from that in healthy patients. Placenta. 1999; 20(2-3): 229-33. https://dx.doi.org/10.1053/PLAC.1998.0373.
  47. Berkane N., Liere P., Oudinet J.P., Hertig A., Lefèvre G., Pluchino N. et al. From pregnancy to preeclampsia: a key role for estrogens. Endocr. Rev. 2017; 38(2): 123-44. https://dx.doi.org/10.1210/er.2016-1065.
  48. Napso T., Yong H.E.J., Lopez-Tello J., Sferruzzi-Perri A.N. The role of placental hormones in mediating maternal adaptations to support pregnancy and lactation. Front. Physiol. 2018; 9: 1091. https://dx.doi.org/10.3389/fphys.2018.01091.
  49. Schmidt M., Kreutz M., Löffler G., Schölmerich J., Straub R.H. Conversion of dehydroepiandrosterone to downstream steroid hormones in macrophages. J. Endocrinol. 2000; 164(2): 161-9.
  50. Tang Z., Tadesse S., Norwitz E., Mor G., Abrahams V.M., Guller S. Isolation of hofbauer cells from human term placentas with high yield and purity. Am. J. Reprod. Immunol. 2011; 66(4): 336-48. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0897.2011.01006.x.
  51. Salas S.P., Marshall G., Gutiérrez B.L., Rosso P. Time course of maternal plasma volume and hormonal changes in women with preeclampsia or fetal growth restriction. Hypertension. 2006; 47(2): 203-8. https://dx.doi.org/10.1161/01.HYP.0000200042.64517.19.
  52. Hertig A., Liere P., Chabbert-Buffet N., Fort J., Pianos A., Eychenne B. et al. Steroid profiling in preeclamptic women: Evidence for aromatase deficiency. Am. J. Obstet. Gynecol. 2010; 203(5): 477.e1-477.e9. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2010.06.011.
  53. Bussen S., Bussen D. Influence of the vascular endothelial growth factor on the development of severe pre-eclampsia or HELLP syndrome. Arch. Gynecol. Obstet. 2011; 284(3): 551-7. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-010-1704-x.
  54. Jobe S.O., Tyler C.T., Magness R.R. Aberrant synthesis, metabolism, and plasma accumulation of circulating estrogens and estrogen metabolites in preeclampsia implications for vascular dysfunction. Hypertension. 2013; 61(2): 480-7. https://dx.doi.org/10.1161/HYPERTENSIONAHA.111.201624.
  55. Yin G., Zhu X., Guo C., Yang Y., Han T., Chen L. et al. Differential expression of estradiol and estrogen receptor α in severe preeclamptic pregnancies compared with normal pregnancies. Mol. Med. Rep. 2013; 7(3): 981-5. https://dx.doi.org/10.3892/mmr.2013.1262.
  56. Vishnyakova P., Poltavets A., Nikitina M., Midiber K., Mikhaleva L., Muminova K. et al. Expression of estrogen receptor α by decidual macrophages in preeclampsia. Biomedicines. 2021; 9(2): 1-13. https://dx.doi.org/10.3390/biomedicines9020191.
  57. Zhang Y., Wang T., Shen Y., Wang X., Baker P.N., Zhao A. 2-Methoxyestradiol deficiency is strongly related to hypertension in early onset severe pre-eclampsia. Pregnancy Hypertens. 2014; 4(3): 215-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.preghy.2014.04.004.
  58. Açıkgöz Ş., Bayar U.O., Can M., Güven B., Mungan G., Doğan S., Sümbüloğlu V. Levels of oxidized LDL, estrogens, and progesterone in placenta tissues and serum paraoxonase activity in preeclampsia. Mediators Inflamm. 2013; 2013: 862982. https://dx.doi.org/10.1155/2013/862982.
  59. Bussen S., Rieger L., Sütterlin M., Dietl J. Plasma VEGF levels are increased in women with severe preeclampsia or HELLP syndrome. Z. Geburtshilfe Neonatol. 2003; 207(3): 101-6. https://dx.doi.org/10.1055/s-2003-40977.
  60. Lang T.J. Estrogen as an immunomodulatory. Clin. Immunol. 2004; 113(3): 224-30. https://dx.doi.org/10.1016/J.CLIM.2004.05.011.
  61. Kloc M., ed. Macrophages origin, functions and biointervention. Cham: Springer Nature; 2017. https://dx.doi.org/10.1007/978-3-319-54090-0_3.
  62. Thomas J.R., Appios A., Zhao X., Dutkiewicz R., Donde M., Lee C.Y.C. et al. Phenotypic and functional characterization of first-trimester human placental macrophages, Hofbauer cells. J. Exp. Med. 2020; 218(1): e20200891. https://dx.doi.org/10.1084/jem.20200891.
  63. Kim S.Y., Romero R., Tarca A.L., Bhatti G., Kim C.J., Lee J. et al. Methylome of fetal and maternal monocytes and macrophages at the feto-maternal interface. Am. J. Reprod. Immunol. 2012; 68(1): 8-27. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0897.2012.01108.x.
  64. Yang S.W., Cho E.H., Choi S.Y., Lee Y.K., Park J.H., Kim M.K. et al. DC-SIGN expression in Hofbauer cells may play an important role in immune tolerance in fetal chorionic villi during the development of preeclampsia. J. Reprod. Immunol. 2017; 124: 30-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2017.09.012.
  65. Tang Z., Buhimschi I.A., Buhimschi C.S., Tadesse S., Norwitz E., Niven-Fairchild T. et al. Decreased levels of folate receptor-β and reduced numbers of fetal macrophages (Hofbauer cells) in placentas from pregnancies with severe pre-eclampsia. Am. J. Reprod. Immunol. 2013; 70(2): 104-15. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12112.
  66. Ma Y., Ye Y., Zhang J., Ruan C.C., Gao P.J. Immune imbalance is associated with the development of preeclampsia. Medicine (Baltimore). 2019; 98(14): e15080. https://dx.doi.org/10.1097/MD.0000000000015080.
  67. Than N.G., Erez O., Wildman D.E., Tarca A.L., Edwin S.S., Abbas A. et al. Severe preeclampsia is characterized by increased placental expression of galectin-1. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2008; 21(7): 429-42. https://dx.doi.org/10.1080/14767050802041961.
  68. Perucci L.O., Corrêa M.D., Dusse L.M., Gomes K.B., Sousa L.P. Resolution of inflammation pathways in preeclampsia-a narrative review. Immunol. Res. 2017; 65(4): 774-89. https://dx.doi.org/10.1007/S12026-017-8921-3.
  69. Przybyl L., Haase N., Golic M., Rugor J., Solano M.E., Arck P.C. et al. CD74-downregulation of placental macrophage-trophoblastic interactions in preeclampsia. Circ. Res. 2016; 119(1): 55-68. https://dx.doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.116.308304.
  70. Evsen M.S., Kalkanli S., Deveci E., Sak M.E., Ozler A., Baran O. et al. Human placental macrophages (Hofbauer cells) in severe preeclampsia complicated by HELLP syndrome: immunohistochemistry of chorionic villi. Anal. Quant. Cytopathol. Histopathol. 2013; 35(5): 283-8.
  71. Aggarwal R., Jain A.K., Mittal P., Kohli M., Jawanjal P., Rath G. Association of pro- and anti-inflammatory cytokines in preeclampsia. J. Clin. Lab. Anal. 2019; 33(4): e22834. https://dx.doi.org/10.1002/jcla.22834.
  72. Williams P.J., Bulmer J.N., Searle R.F., Innes B.A., Robson S.C. Altered decidual leucocyte populations in the placental bed in pre-eclampsia and foetal growth restriction: a comparison with late normal pregnancy. Reproduction. 2009; 138(1): 177-84. https://dx.doi.org/10.1530/rep-09-0007.
  73. Bürk M.R., Troeger C., Brinkhaus R., Holzgreve W., Hahn S. Severely reduced presence of tissue macrophages in the basal plate of pre-eclamptic placentae. Placenta. 2001; 22(4): 309-16. https://dx.doi.org/10.1053/plac.2001.0624.
  74. Milosevic-Stevanovic J., Krstic M., Radovic-Janosevic D., Popovic J., Tasic M., Stojnev S. Number of decidual natural killer cells & macrophages in pre-eclampsia. Indian J. Med. Res. 2016; 144(6): 823-30. https://dx.doi.org/10.4103/ijmr.IJMR_776_15.
  75. Al-Khafaji L.A., Al-Yawer M.A. Localization and counting of CD68-labelled macrophages in placentas of normal and preeclamptic women. AIP Conference Proceedings. 2017; 1888: 20011. https://dx.doi.org/10.1063/1.5004289.
  76. Schonkeren D., van der Hoorn M.L., Khedoe P., Swings G., van Beelen E., Claas F. et al. Differential distribution and phenotype of decidual macrophages in preeclamptic versus control pregnancies. Am. J. Pathol. 2011; 178(2): 709-17. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajpath.2010.10.011.
  77. Vishnyakova P., Poltavets A., Nikitina M., Muminova K., Potapova A., Vtorushina V. et al. Preeclampsia: inflammatory signature of decidual cells in early manifestation of disease. Placenta. 2021; 104: 277-83. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2021.01.011.

Поступила 12.01.2022

Принята в печать 21.02.2022

Об авторах / Для корреспонденции

Вишнякова Полина Александровна, к.б.н., с.н.с. лаборатории регенеративной медицины, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства,
гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации; ассистент кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии Медицинского института Российского университета дружбы народов (РУДН), p_vishnyakova@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0001-8650-8240,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Ельчанинов Андрей Владимирович, д.м.н., заведующий лабораторией регенеративной медицины, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, elchandrey@yandex.ru,
https://orcid.org/0000-0002-2392-4439, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Киселева Виктория Викторовна, м.н.с. лаборатории регенеративной медицины, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, victoria.kurnosova.1991@gmail.com,
https://orcid.org/0000-0002-3001-4820, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Муминова Камилла Тимуровна, к.м.н., н.с. 1 акушерского отделения патологии беременности, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии, перинатологии им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(916)373-77-07, k_muminova@oparina4.ru,
https://orcid.org/0000-0003-2708-4366, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Ходжаева Зульфия Сагдуллаевна, д.м.н., профессор, заместитель директора по научной работе Института акушерства, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии, перинатологии им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, zkhodjaeva@mail.ru,
https://orcid.org/0000-0001-8159-3714, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Еремина Ирина Здиславовна, к.б.н., заведующая учебной частью кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии Медицинского института РУДН,
eremina_iz@rudn.university, 117997, Россия, Москва, ул. Миклухо-Маклая, д. 8.
Фатхудинов Тимур Хайсамудинович, д.м.н., заместитель директора, Научно-исследовательский институт морфологии человека им. академика А.П. Авцына;
заведующий кафедрой гистологии, цитологии и эмбриологии, заместитель директора по научной работе Медицинского института РУДН, tfat@yandex.ru,
https://orcid.org/0000-0002-6498-5764, 117997, Россия, Москва, ул. Миклухо-Маклая, д. 8.

Вклад авторов: Вишнякова П.А., Ельчанинов А.В., Киселева В.В., Муминова К.Т., Ходжаева З.С., Еремина И.З., Фатхудинов Т.Х. – анализ литературы, суммирование данных, написание статьи.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование: Работа выполнена в рамках госзадания №121032500100-3. Работа также поддержана грантом президента РФ для государственной поддержки молодых российских ученых – кандидатов наук МК-1573.2022.3.
Для цитирования: Вишнякова П.А., Ельчанинов А.В., Киселева В.В., Муминова К.Т., Ходжаева З.С., Еремина И.З., Фатхудинов Т.Х. Роль плацентарных макрофагов при физиологической беременности и преэклампсии.
Акушерство и гинекология. 2022; 4: 5-12
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.4.5-12

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.