ISSN 0300-9092 (Print)
ISSN 2412-5679 (Online)

Роль хромосомных аномалий при врожденных пороках сердца плода

Пак В.С., Тетруашвили Н.К., Бокерия Е.Л., Шубина Е., Зарецкая Н.В., Большакова А.С., Люшнина Д.Г., Кузнецова М.В., Михайловская Г.В., Саделов И.О., Трофимов Д.Ю.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия

Цель: Изучить частоту встречаемости хромосомных аномалий при различных нозологических формах врожденных пороков сердца (ВПС) плода. Материалы и методы: В исследование включено 72 пациентки с ВПС плода. На сроке от 15 до 30 недель пациенткам была проведена инвазивная пренатальная диагностика. Исследование ДНК материала плодов проводилось в 2 этапа: 1-й – выявление аномалий хромосом 13, 18, 21, Х, Y с по­мощью STR маркеров методом ПЦР, 2-й – хромосомный микроматричный анализ (ХМА). Результаты: ВПС в сочетании с хромосомной патологией выявлен в 16/72 (22,2%) случаях, из них: трисомия хромосомы 21 – 4/72 (5,6%), трисомия хромосомы 18 – 2/72(2,8%), микроделеция хромосомы 22 – 8/72 (11,1%), микроделеция хромосомы 12 – 1/72(1,4%), микроделеция хромосомы 1 – 1/72 (1,4%). Анеуплоидии в 6/72 (8,3%) случаях были выявлены методом QF-ПЦР, все вариации числа копий были определены методом ХМА 10/72 (13,9%). Заключение: ВПС плода сопряжены с хромосомными аномалиями в 22% (16/72) случаев, большая часть из них относится к патогенным вариациям числа копий генов (62,5%, 10/16). Методом выбора при проведении инвазивной пренатальной диагностики является ХМА.

Вклад авторов: Пак В.С., Тетруашвили Н.К., Бокерия Е.Л., Трофимов Д.Ю. – концепция и дизайн исследования; Пак В.С., Зарецкая Н.В., Большакова А.С., Люшнина Д.Г., Кузнецова М.В., Михайловская Г.В., Саделов И.О. – сбор и обработка материала; Пак В.С., Большакова А.С. – статистическая обработка данных; Пак В.С., Тетруашвили Н.К. – написание текста; Тетруашвили Н.К., Бокерия Е.Л., Шубина Е., Большакова А.С., Саделова И.О., Трофимов Д.Ю. – редактирование.

Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии возможных конфликтов интересов.

Финансирование: Государственное задание по тема: «Разработка тест-системы для пренатальной диагностики кардиопатологии плода».

Одобрение Этического комитета: Исследование было одобрено Этическим комитетом ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России.

Согласие пациентов на публикацию: Все пациентки подписали добровольное информированное согласие на публикацию своих данных.

Обмен исследовательскими данными: Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.

Для цитирования: Пак В.С., Тетруашвили Н.К., Бокерия Е.Л., Шубина Е., Зарецкая Н.В., Большакова А.С., Люшнина Д.Г., Кузнецова М.В., Михайловская Г.В., Саделов И.О., Трофимов Д.Ю. Роль хромосомных аномалий при врожденных пороках сердца плода. Акушерство и гинекология. 2023; 10: 86-93 https://dx.doi.org/10.18565/aig.2023.220

Ключевые слова

врожденный порок сердца
хромосомная патология
синдром делеции хромосомы 22
хромосомный микроматричный анализ

Среди всех пороков развития плода врожденные пороки сердца (ВПС) занимают лидирующее место, составляя около 30% в структуре аномалий развития [1]. Частота встречаемости ВПС в популяции составляет от 6 до 8 на 1000 случаев живорождения (0,6–0,8) и 10% от случаев мертворождения [2]. Частота неонатальной смертности от ВПС выше в раннем неонатальном периоде [3]. В Российской Федерации ежегодно рождается около 20 000 детей с ВПС, из них около четверти новорожденных нуждаются в оперативном лечении в первые дни жизни [4].

ВПС классифицируются по степени тяжести, влиянию на легочный кровоток, характеру нарушения гемодинамики. Также выделяют физиологическую и анатомическую классификации [5]. Ряд авторов выделяют изолированные ВПС и ВПС, сочетанные с экстракардиальными аномалиями [6].

В ряде исследований используют классификацию ВПС по Botto L. et al., основанную на фенотипе и этиологии ВПС: 1 – конотрункальные пороки (перерыв дуги аорты, тетрада Фалло, транспозиция магистральных артерий, двойное отхождение сосудов от правого желудочка, общий артериальный ствол), 2 – дефект межпредсердной перегородки, 3 – аномальный дренаж легочных вен, 4 – обструкция выводного тракта левого желудочка (синдром гипоплазии левых отделов сердца (СГЛОС), коарктация/стеноз аорты), 5 – обструкция выводного тракта правого желудочка, 6 – септальные дефекты, 7 – гетеротаксия, 8 – единственный желудочек, 9 – комбинированные дефекты [7].

Этиология ВПС плода разнообразна и недостаточно изучена. По мнению различных авторов, около 20–30% случаев ВПС имеет генетическую причину развития заболевания [8]. Для оценки генетической составляющей, как причины формирования ВПС наиболее целесообразно исследовать группы пороков, имеющие неблагоприятный или сомнительный прогноз с точки зрения детской инвалидизации и смертности.

Доказано наличие ВПС при следующих анеуплоидиях: трисомии хромосомы 18 – 95% [9], хромосомы 13 – 60–80% [10], хромосомы 21 – 40–50% [11], хромосомы 9 – 65–80%, хромосомы 8 – 25%, моносомия X – 25–50% [12], синдром Кляйнфельтера – 50%. В литературе описаны сочетания таких патологических вариантов числа копий генов (CNV) с ВПС, как: 20р12 – 85–94%, 22q11.2 – 75–80% [13], 4р – 50–65%, 7q11.23 – 53–85%, 8р – 50–75%, 5р – 30–60%, 11q – 56%, 10р – 50% [5]. В свою очередь Wang H. et al. в метаанализе описали суммарную долю хромосомных аномалий при ВПС. Так, анеуплоидии, делеции 22q11 и другие CNV у плодов с ВПС составили 23% (95% ДИ 20–26%), 19% (95% ДИ 16–22%), 2% (95% ДИ 2–3%) и 4% (95% ДИ 3–5%) соответственно [14].

Часть ВПС ассоциирована с моногенной патологией. По данным проспективного когортного мета-анализа Mone F. et al. (2021), показано, что при ВПС плода дополнительная диагностическая ценность экзомного секвенирования по сравнению с кариотипированием и хромосомным микроматричным анализом (ХМА) составила около 12,7% [15].

Учитывая вышеизложенное, выявление генетической природы ВПС позволяет определить дальнейшую тактику ведения беременности, сформулировать четкие показания для прерывания беременности, спланировать маршрутизацию беременной.

Цель исследования: изучить частоту встречаемости хромосомных аномалий при различных нозологических формах ВПС плода.

Материалы и методы

На перинатальный консилиум ФГБУ «Нацио­нальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава Российской Федерации (ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» МЗ РФ) с 2019 г. по 2023 г. обратились 72 пациентки с изолированными ВПС плода, диагностированными по данным ультразвукового исследования (УЗИ) в региональных перинатальных центрах.

В дальнейшем диагноз ВПС плода был верифицирован на основании эхокардиографии сердца плода (ЭХО КГ) специалистами ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» МЗ РФ на сроке беременности от 15 до 30 недель. Все супружеские пары были консультированы акушером-гинекологом, кардиохирургом и генетиком в рамках работы перинатального консилиума, где супружеской паре была предоставлена полная информация о диагнозе, прогнозе заболевания. Дизайн исследования представлен на рисунке.

88-1.jpg (45 KB)

В группу исследования вошли пациентки с такими ВПС плода, как: тетрада Фалло – 25/72 (34,75%), атрезия легочной артерии (ЛА) – 8/72(11%), перерыв дуги аорты, гипоплазия аорты, атрезия аорты – 17/72 (23,6%) случаях, транспозиция магистральных артерий – 10/72 (13,9%), двойное отхождение сосудов (ДОС) от правого желудочка – 4/72 (5,6%), общий артериальный ствол – 4/72 (5,6%), открытый атриовентрикулярный канал – 1/72 (1,4%), СГЛОС – 1/72 (1,4%), единственный желудочек – 1/72 (1,4%), агенезия венозного протока – 1/72 (1,4%) случаев (табл. 1).

88-2.jpg (61 KB)

Учитывая выявленный ВПС плода, для определения вклада генетического фактора в формирование ВПС плода было предложено проведение инвазивной пренатальной диагностики (ИПД) в сроках от 15 до 30 недель. Обращает на себя внимание тот факт, что у всех беременных были нормальные показатели скрининга I триместра, в связи с чем, данным пациенткам ИПД ранее не проводилась.

Перед вмешательством всеми пациентками было подписано добровольное информированное согласие, которое включало подробную информацию о возможных рисках и осложнениях ИПД. Посредством трансабдоминального амниоцентеза было забрано 40 мл амниотической жидкости. Далее образец направлялся в институт репродуктивной генетики ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» МЗ РФ для выполнения хромосомного анализа.

Исследование полученных образцов ДНК плодов проводилось в 2 этапа.

На 1-м этапе проводили выявление аномалий хромосом 13, 18, 21, Х, Y с помощью STR маркеров методом полимеразной цепной реакции (QF-ПЦР) для фрагментного анализа (ТУ 21.20.23-113-46482062-2021) для ускоренного определения наиболее частых анеуплоидий, на долю которых приходится свыше 95% всей хромосомной патологии у новорожденных [16]. Метод QF-ПЦР выполняется в течение 3 суток, в то время как стандартное кариотипирование с выделением ДНК плода из околоплодных вод занимает порядка 3 недель. По данным отечественных авторов, целесообразность выполнения пренатального кариотипа должна обсуждаться индивидуально, так как при нормальном кариотипе не исключено наличие микрохромосомных перестроек, которые в случаях ВПР плода встречаются в 2–3 раза чаще [17]. При выявлении вышеуказанных анеуплоидий, дальнейший диагностический поиск прекращался, при отсутствии патологии хромосом 13, 18, 21, Х, Y материал направлялся на второй этап исследования.

На 2-м этапе исследование ДНК плода проводили с помощью SNP-олигонуклеотидного ХМА. Исследование выполняли с использованием системы GenoScan3000 на микроматрицах CytoScan Optima (Thermo Fisher Scientific, США) согласно протоколу производителя. Анализ полученных данных производился с помощью программного обеспечения ChАS («Сhromosome Аnalysis Suite»). Полученные вариации числа копий (copy number variation, CNV) интерпретировались по пяти категориям, опираясь на критерии ACMG [18]. При интерпретации в соответствии с рекомендациями оценивался размер, место расположения вариаций числа копий генов, генный состав, описание в базах данных (Clinvar, OMIM, ORPHANET, DECIPHER, DGV), а также в литературе. В отчет выносились патогенные и вероятно патогенные вариации числа копий генов, варианты неясной клинической значимости включались только при высоком соответствии с клинической картиной.

Статистический анализ

Статистическая обработка данных выполнялась с помощью таблиц Microsoft Exel (США). Качественные показатели выражены в абсолютных и относительных величинах (%), количественные показатели представлены в виде среднего арифметического (M) и стандартного отклонения (SD).

Результаты и обсуждение

Были проанализированы клинико-анамнестические данные пациентов исследованной группы.

Средний возраст пациентов составил 32,4 лет. Старше 35 лет было 26/72 (36,1%) женщин. Средний срок беременности при выявлении ВПС плода составил 20 недель (SD 3,2, от 15 до 30 недель). В 42/72 (58,3%) случаях пациентки были первобеременными.

При сборе анамнеза не выявлено влияния бытовых и профессиональных вредностей, пациентки не курили и не имели вредных привычек. К бытовым факторам вредности относились: микроклиматические, радиационные, микробиологические и токсикохимические характеристики мест проживания пациенток. Ранняя диагностика ВПС плода до 22 недель имела место в 47/72 (65,2%) случаев, после 22 недель – в 25/72 (34,7%) случаев.

Клинико-анамнестические данные беременных с ВПС плода представлены в таблице 2.

89-1.jpg (61 KB)

Согласно полученным результатам, ВПС в сочетании с хромосомной патологией выявлен в 16/72 (22,2%) случаев, из них: трисомия хромосомы 21 – 4/72 (5,6%), трисомия хромосомы 18 – 2/72 (2,8%), микроделеция хромосомы 22 – 8/72 (11,1%), микроделеция хромосомы 12 – 1/72 (1,4%), микродупликация хромосомы 1 – 1/72 (1,4%). Анеуплоидии в 6/72 (8,3%) были выявлены методом QF-ПЦР, все вариации числа копий были определены методом ХМА – 10/72 (13,9%) (табл. 3).

90-1.jpg (68 KB)

В нашей когорте анеуплоидии наблюдались в 8,3% случаев, вариации числа копий генов – в 13,9%, что соотносится с данными американской ассоциации кардиологов (анеуплоидии в 8–10%, вариации числа копий в 3–25% случаев) [19].

Частота синдрома Дауна в нашем исследовании составила 4/72 (5,5%); 3/4 пациенток от дальнейшего пролонгирования беременности отказались, 1 семья приняла решение о пролонгировании беременности, рожденный ребенок погиб в раннем неонатальном периоде в связи с присоединившимся неонатальным сепсисом в сочетании с гипоплазией дуги и перешейка аорты. По данным литературы, около 50% больных синдромом Дауна имеют ВПС [20]. Гены DYRK1A, RCAN1, DSCAM, COLVI, NRIP1, находящиеся на 21-й хромосоме, напрямую участвуют в развитии эндокардиальных подушек [21]. При нарушении слияния эндокардиальных подушек в раннем эмбриональном периоде формируются характерные для синдрома Дауна ВПС: открытый атриовентрикулярный канал, дефект межпредсердной и межжелудочковой перегородки, в некоторых случаях – тетрада Фалло. Важно отметить, что в нашем исследовании вид ВПС плода при синдроме Дауна был аналогичным.

В исследовании в 8/72 (11,1%) случаев ВПС плода хромосомная патология представлена микроделецией 22-й хромосомы; 7/8 пациенток от дальнейшего пролонгирования беременности отказались, 1 пациентка решила пролонгировать беременность, в дальнейшем произошли роды в доношенном сроке. На данный момент ребенок с тетрадой Фалло в хирургическом лечении ВПС не нуждается, проводится дальнейшее обследование и наблюдение.

Критический участок микроделеции 22q11 включает в себя ген TBX1, который играет ключевую роль в формировании 3–4 фарингеальных дуг, из которых развиваются: твердое небо, тимус, верхние отделы сердца (конотрункальная область) и магистральные сосуды [22]. В эмбриогенезе сердца из конотрункальной области развиваются выводной тракт правого желудочка, аорта и легочная артерия. При нарушении развития данной области сердца под действием делеции 22-й хромосомы возникают характерные для синдрома Ди Джоржди ВПС, такие, как: перерыв дуги аорты, тетрада Фалло, транспозиция магистральных артерий, ДОС от правого желудочка, общий артериальный ствол [23]. Вид ВПС плода при микроделеции 22-й хромосомы в нашей когорте пациентов был сопоставим с данными мировой литературы [24, 25].

Делеция 22q11.2 является наиболее частой причиной синдрома Ди Джорджи и ряда других состояний, таких, как велокардиофациальный синдром, синдром конотрункальной аномалии лица, кардио­фациальный синдром Кейлера [26]. Синдром Ди Джорджи включает в себя: конотрункальный порок сердца, врожденный иммунодефицит вследствие аплазии или гипоплазии тимуса [27], гипопаратиреоз (причина неонатальных судорог ввиду гипокальциемии), патологию носоглоточного аппарата, нарушение речевого и психического развития.

Иммунодефицит у детей с микроделецией хромосомы 22 связан с гипоплазией или аплазией тимуса, ответственного за выработку Т-клеток, что приводит к частым рецидивирующими вирусными и грибковыми инфекциями. В зависимости от гипоплазии или аплазии тимуса синдром Ди Джорджа классифицируют, как частичный или полный [28].

Также, по данным исследования Brenner M. et al., дети с ВПС в сочетании с делецией 22q11 имеют худшие послеоперационные исходы, обусловленные дефектом гена, кодирующего гликопротеин Ibβ [29]. Известно, что послеоперационные кровотечения возникают в 2 раза чаще, что приводит к повторным хирургическим вмешательствам в первые 24 ч. Данные осложнения связаны с недостатком гликопротеина Ibβ, который необходим для экспрессии комплекса GPIb-V-IX на поверхности тромбоцитов, где он функционирует как рецептор фактора фон Виллебранда. Описанный факт осложняет ведение данной группы пациентов, требующих кардиохирургической помощи, что следует учитывать при прогнозировании выживаемости на этапе пренатального консультирования семьи.

Согласно литературным данным, в 10% случаев делеция 22-й хромосомы наследуется от одного из родителей (наследование происходит аутосомно- доминантным путем); исходя из этого при дальнейшем генетическим консультировании супружеской пары следует предложить прохождение ХМА в формате трио (мать-отец-плод) для выявления наследственных форм патологии сердца для корректного генетического консультирования [30].

В исследовании Mustafa H. et al. (2019) показано, что при ВПС плода хромосомная патология наблюдается в 36,9% случаев, из них в 29,5% – анеуплоидии, в 7,4% – вариации числа копий [31].

В Российской Федерации при проведении ИПД у пациентов с ВПС плода тестом первой линии является стандартное цитогенетическое кариотипирование. Однако авторы Mustafa H. et al. (2019) отмечают, что при использовании ХМА при ВПС диагностическая ценность повышается в 7,4% случаев [31]. Согласно нашему исследованию, в 13,9% случаев ВПС может ассоциироваться с различными микроделеционными синдромами, выявление которых напрямую зависит от метода диагностики. ХМА, как показывает наше исследование, следует считать методом выбора в диагностике генетической патологии у плода с ВПС.

Согласно полученным данным, в 56/72 (77,7%) наблюдений отсутствовала хромосомная аномалия, в 53/72 (73,6%) случаев беременность была пролонгирована, в 1/56(1,9%) случае произошла антенатальная гибель плода на сроке беременности 39 недель, в 1/56 (1,9%) случае беременность прекратила развиваться в 20 недель, в 2/56 (3,6%) случаях произошла гибель новорожденных в раннем послеоперационном периоде.

Проведенное исследование позволило не только определить прогноз для жизни и здоровья плода/новорожденного, но и расширить возможности генетического консультирования данной семьи при последующих беременностях.

Заключение

Проведенное исследование показало, что существует категория пациентов (22%), у которых ВПС сопряжены с хромосомными аномалиями; большая часть из них относится к патогенным вариациям числа копий генов (62,5%). Методом выбора при проведении ИПД является ХМА, в виду того, что ряд микроделеционных/микродупликационных синдромов не выявляется методом стандартного цитогенетического исследования. В нашем исследовании диагностическая ценность ХМА была в 2 раза выше, по сравнению с QF-ПЦР.

Полная информация при проведении пренатальной диагностики необходима для выявления генетических причин ВПС плода.

Своевременное получение информации на пренатальном этапе о сопутствующей хромосомной патологии плода позволяет принять аргументированное решение о пролонгировании или прерывании данной беременности. Дальнейшие исследования позволят расширить возможности генетического консультирования семьи при последующих беременностях и прогнозировать перспективу выживаемости новорожденного.

Список литературы

  1. Саперова Е.В., Вахлова И.В. Врожденные пороки сердца у детей: распространенность, факторы риска, смертность. Вопросы современной педиатрии. 2017; 16(2): 126-33.
  2. Taylor K., Elhakeem A., Nader J.L.T., Yang T., Isaevska E., Richiardi L. et al. The effect of maternal pre-/early-pregnancy BMI and pregnancy smoking and alcohol on congenital heart diseases: a parental negative control study. medRxiv. 2020; 2020.09.29.20203786. https://dx.doi.org/10.1101/2020.09.29.20203786.
  3. Cloete E., Bloomfield F.H., Sadler L., de Laat M.W.M., Finucane A.K., Gentles T.L. Antenatal detection of treatable critical congenital heart disease is associated with lower morbidity and mortality. J. Pediatr. 2019; 204: 66-70. https://dx.doi.org/10.1016/j.jpeds.2018.08.056.
  4. Бокерия Е.Л. Перинатальная кардиология: настоящее и будущее. Часть I: врожденные пороки сердца. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2019; 64(3): 5-10.
  5. Министерство здравоохранения Российской Федерации, Союз педиатров России, Ассоциация детских кардиологов России. Федеральные клинические рекомендации по оказанию медицинской помощи детям с врожденными пороками сердца. М.; 2015.
  6. Qiao F., Wang Y., Zhang C., Zhou R., Wu Y., Wang C. et al. Comprehensive evaluation of genetic variants using chromosomal microarray analysis and exome sequencing in fetuses with congenital heart defect. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2021; 58(3): 377-87. https://dx.doi.org/10.1002/uog.23532.
  7. Botto L.D., Lin A.E., Riehle-Colarusso T., Malik S., Correa A.; National Birth Defects Prevention Study. Seeking causes: Classifying and evaluating congenital heart defects in etiologic studies. Birth Defects Res. A Clin. Mol. Teratol. 2007; 79(10): 714-27. https://dx.doi.org/10.1002/bdra.20403.
  8. Cowan J.R., Ware S.M. Genetics and genetic testing in congenital heart disease. Clin. Perinatol. 2015; 42(2): 373-93, ix. https://dx.doi.org/10.1016/j.clp.2015.02.009.
  9. Lin A.E., Santoro S., High F.A., Goldenberg P., Gutmark-Little I. Congenital heart defects associated with aneuploidy syndromes: New insights into familiar associations. Am. J. Med. Genet. C. Semin. Med. Genet. 2020; 184(1): 53-63. https://dx.doi.org/10.1002/ajmg.c.31760.
  10. Yates A.R., Hoffman T.M., Shepherd E., Boettner B., McBride K.L. Pediatric sub-specialist controversies in the treatment of congenital heart disease in trisomy 13 or 18. J. Genet. Couns. 2011; 20(5): 495-509. https://dx.doi.org/10.1007/s10897-011-9373-x.
  11. Dimopoulos K., Constantine A., Clift P., Condliffe R., Moledina S., Jansen K. et al. Cardiovascular complications of down syndrome: scoping review and expert consensus. Circulation. 2023; 147(5): 425-41. https://dx.doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.122.059706.
  12. Huang A.C., Olson S.B., Maslen C.L. A review of recent developments in turner syndrome research. J. Cardiovasc. Dev. Dis. 2021; 8(11): 138. https://dx.doi.org/10.3390/jcdd8110138.
  13. Lee M.Y., Won H.S., Baek J.W., Cho J.H., Shim J.Y., Lee P.R. et al. Variety of prenatally diagnosed congenital heart disease in 22q11.2 deletion syndrome. Obstet. Gynecol. Sci. 2014; 57(1): 11-6. https://dx.doi.org/10.5468/ogs.2014.57.1.11.
  14. Wang H., Lin X., Lyu G., He S., Dong B., Yang Y. Chromosomal abnormalities in fetuses with congenital heart disease: a meta-analysis. Arch. Gynecol. Obstet. 2023; 308(3): 797-811. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-023-06910-3.
  15. Mone F., Eberhardt R.Y., Morris R.K., Hurles M.E., McMullan D.J., Maher E.R. et al. Congenital heart disease and the Diagnostic yield with Exome sequencing (CODE) study: prospective cohort study and systematic review. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2021; 57(1) :43-51. https://dx.doi.org/10.1002/uog.22072.
  16. Баранов В.С., Кузнецова Т.В. Новые возможности генетической пренатальной диагностики. Журнал акушерства и женских болезней. 2015; 64(2): 4-12.
  17. Нагорнева С.В., Прохорова В.С., Шелаева Е.В., Худовекова А.М. Анализ частоты выявления врожденных пороков развития у плодов за последние 5 лет (2013-2017). Журнал акушерства и женских болезней. 2018; 67(3): 44-8.
  18. https://acmgen.org/wp-content/uploads/2019/11/Tech.
  19. Pierpont M.E., Brueckner M., Chung W.K., Garg V., Lacro R.V., McGuire A.L. et al. Genetic basis for congenital heart disease: Revisited: a scientific statement from the American Heart Association. Circulation. 2018; 138(21): e653-711. https://dx.doi.org/10.1161/CIR.0000000000000606.
  20. Asim A., Agarwal S. Congenital heart defects among Down’s syndrome cases: an updated review from basic research to an emerging diagnostics technology and genetic counselling. J. Genet. 2021; 100: 45.
  21. Mollo N., Scognamiglio R., Conti A., Paladino S., Nitsch L., Izzo A. Genetics and molecular basis of congenital heart defects in Down syndrome: role of extracellular matrix regulation. Int. J. Mol. Sci. 2023; 24(3): 2918. https://dx.doi.org/10.3390/ijms24032918.
  22. Kloesel B., DiNardo J.A., Body S.C. Cardiac embryology and molecular mechanisms of congenital heart disease: a primer for anesthesiologists. Anesth. Analg. 2016; 123(3): 551-69. https:/dx./doi.org/10.1213/ANE.0000000000001451.
  23. Ярыгина Т.А., Гасанова Р.М., Большакова А.С., Марзоева О.В., Сыпченко Е.В., Гус А.И. Кардиальная патология в случаях монозиготных двоен с синдромом делеции хромоcомы 22 (22q11DS). Акушерство и гинекология. 2022; 6: 140-51.
  24. Goldmuntz E. 22q11.2 deletion syndrome and congenital heart disease. Am. J. Med. Genet. C. Semin. Med. Genet. 2020; 184(1):64-72. https://doi.org/10.1002/ajmg.c.31774.
  25. Винокурова Е.А., Скрябин Е.Г., Белов В.П. Возможности современной пренатальной диагностики микроделеционного синдрома 22q11.2 (синдрома Ди Джорджи). Российский вестник акушера-гинеколога. 2022; 22(4):39-46.
  26. Óskarsdóttir S., Boot E., Crowley T.B., Loo J.C.Y., Arganbright J.M., Armando M. et al. Updated clinical practice recommendations for managing children with 22q11.2 deletion syndrome. Genet. Med. 2023; 25(3):100338. https://doi.org/10.1016/j.gim.2022.11.006.
  27. Biggs S.E., Gilchrist B., May K.R. Chromosome 22q11.2 deletion (DiGeorge Syndrome): immunologic features, diagnosis, and management. Curr. Allergy Asthma Rep. 2023; 23(4):213-22. https://doi.org/10.1007/s11882-023-01071-4.
  28. Boyarchuk O., Volyanska L., Dmytrash L. Clinical variability of chromosome 22q11.2 deletion syndrome. Cent. Eur. J. Immunol. 2017; 42(4):412-7. https://doi.org/10.5114/ceji.2017.72818.
  29. Brenner M.K., Clarke S., Mahnke D.K., Simpson P., Bercovitz R.S., Tomita-Mitchell A. et al. Effect of 22q11.2 deletion on bleeding and transfusion utilization in children with congenital heart disease undergoing cardiac surgery. Pediatr. Res. 2016; 79(2):318-24. https://doi.org/10.1038/pr.2015.216.
  30. Maggadottir S.M., Sullivan K.E. The diverse clinical features of chromosome 22q11.2 deletion syndrome (DiGeorge syndrome). J. Allergy Clin. Immunol. Pract. 2013; 1(6):589-94. https://doi.org/10.1016/j.jaip.2013.08.003.
  31. Mustafa H.J., Jacobs K.M., Tessier K.M., Narasimhan S.L., Tofte A.N., McCarter A.R. et al. Chromosomal microarray analysis in the investigation of prenatally diagnosed congenital heart disease. Am. J. Obstet. Gynecol. MFM. 2020; 2(1):100078. https://doi.org/10.1016/j.ajogmf.2019.100078.

Поступила 14.09.2023

Принята в печать 20.10.2023

Об авторах / Для корреспонденции

Пак Виктория Сергеевна, аспирант, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(913)897-28-49,
v_pak@oparina4.ru, https://orcid.org/0009-0002-1444-9071, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Тетруашвили Нана Картлосовна, д.м.н., руководитель 2-го отделения акушерского патологии беременности, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова
Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(495)438-14-77, n_tetruashvili@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-9201-2281,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Бокерия Екатерина Леонидовна, д.м.н., научный сотрудник 2-го отделения патологии новорожденных и недоношенных детей, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(495)438-27-05, e_bokeriya@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-8898-9612,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Шубина Екатерина, к.б.н., заведующая лабораторией биоинформатического анализа геномных данных Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(495)531-44-44, e_shubina@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0003-4383-7428,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Зарецкая Надежда Васильевна, к.м.н., заведующая, врач-генетик отделения клинической генетики Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика
В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(495)438-24-11, n_zaretskaya@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0001-6754-3833,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Большакова Анна Сергеевна, врач-генетик отделения клинической генетики Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова
Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(495)438-24-11, a_bolshakova@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-7508-0899,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Люшнина Дарья Геннадьевна, аспирант, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(906)308-60-78,
d_lyushnina@oparina4.ru, https://orcid.org/0009-0004-3160-8737, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Кузнецова Мария Владимировна, к.б.н., с.н.с. лаборатории молекулярно-генетически методов Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика
В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(495)438-13-41, mkarja@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-3790-0427,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Михайловская Галина Валентиновна, биолог лаборатории молекулярно-генетически методов Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика
В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(495)438-13-41, g_mikhailovskaia@oparina4.ru,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Саделов Игорь Олегович, врач-генетик лаборатории биоинформатического анализа геномных данных Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(495)438-24-10, i_sadelov@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-5144-6307,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Трофимов Дмитрий Юрьевич, д.б.н., профессор РАН, чл.-корр. РАН, директор Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Министерства здравоохранения Российской Федерации, +7(495)438-49-51, d_trofimov @oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-1569-8486,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Также по теме