Протеомный анализ цервиковагиналь­ной жидкости при применении активированной гли­цир­ризиновой кислоты у пациенток с ВПЧ-ассо­циированными поражениями шейки матки

Франкевич В.Е., Назарова Н.М., Довлетханова Э.Р., Гусаков К.И., Кононихин А.С., Бугрова А.Е., Бржозовский А.Г., Прилепская В.Н., Стародубцева Н.Л., Сухих Г.Т.

1) ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Россия; 2) Сколковский институт науки и технологий, Москва, Россия; 3) ФГБУН «Институт биохимической физики имени Н.М. Эмануэля» Российской академии наук, Москва, Россия
Цель: Определение особенностей протеома цервиковагинальной жидкости (ЦВЖ) при ВПЧ-ассоциированных поражениях шейки матки с применением активированной глицирризиновой кислоты (АГК).
Материалы и методы: В исследование были включены 80 ВПЧ-позитивных пациенток в возрасте от 18 до 49 лет с результатами цитологии: NILM, хронический цервицит (группа I, n=40) и LSIL (группа II, n=40). Все пациентки получали препарат с действующим веществом АГК («Эпиген Интим» спрей 0,1%) в течение 18 месяцев по протоколу. Протеомный состав ЦВЖ анализировался методом ВЭЖХ-МС/МС в четырех временных точках (до начала терапии, через 6, 12 и 18 месяцев).
Результаты: В протеомном исследовании нами было проведено сравнение двух групп образцов ЦВЖ от 10 пациенток после применения АГК: 1-я группа (n=5) – «положительная динамика» (элиминация ВПЧ); 2-я группа (n=5) – «без динамики» (персистенция ВПЧ). При сравнении протеомного состава образцов ЦВЖ в динамике было выявлено изменение 48 белков, уровень 27 белков повышался в группе с положительной динамикой, в то время как уровень 21 белка снижался относительно группы «без динамики». Аннотация белков, увеличивающих свой уровень, выявила их участие в процессах иммунной системы (MPO, AZU1, LYZ, RNASE7, PPL, TXN, CD59, UBA52, CRISP3, ELANE), в частности, во врожденном иммунном ответе (MPO, AZU1, LYZ, RNASE7, TXN, CD59, UBA52, CRISP3, ELANE), а также в процессе дегрануляции нейтрофилов (MPO, AZU1, LYZ, CD59, CRISP3, ELANE), антимикробной активности (AZU1, ELANE).
Заключение: Результаты данного исследования свидетельствуют о влиянии длительного местного применения АГК на уровень белков ЦВЖ при «малых» поражениях шейки матки, в частности, на снижение провоспалительных белков при элиминации ВПЧ.

Ключевые слова

неопластические поражения
рак шейки матки
цервиковагинальная жидкость
протеом
масс-спектрометрия
элиминация ВПЧ
активированная глицирризиновая кислота

Рак шейки матки (РШМ) является быстро­прогрессирующим заболеванием, которое поражает женщин в различные периоды жизни, включая репродуктивный возраст. Основными этиологическими факторами развития РШМ являются высоко­онкогенные типы вируса папилломы человека (ВПЧ) (16, 18, 31, 33, 35, 39, 45, 51, 56, 52, 59, 68) [1]. Персистенция ВПЧ высокого онкогенного риска (ВПЧ ВР) первоначально вызывает плоскоклеточные интраэпителиальные поражения низкой степени (LSIL), которые обусловлены репликацией вируса и обычно устраняются иммунной системой в течение 1 года. Персистенция вируса высокого канцерогенного риска более 24 месяцев может приводить к развитию цервикальной интраэпителиальной неоплазии (CIN). При дальнейшей персистенции ВПЧ-инфекции риск прогрессии заболевания до CIN III в течение 5 лет составляет: при нормальных результатах цитологического заключения (NILM) – 5–7,4%, при ASCUS – 8–10%, при LSIL – 15–17% [2].

Персистенция вируса с длительной активной экспрессией вирусных онкобелков инициирует многостадийный процесс, в результате которого клетки эпителия шейки матки претерпевают изменения, способствующие опухолевой прогрессии [3, 4]. Важную роль в развитии РШМ играют онкобелки Е6 и Е7, которые необходимы для поддержания вирусного генома в клетке. Персистенция является следствием снижения клеточного имму­нитета, дефицита местного и общего интерферонов. По данным V. Colmenares et al. [5], ВПЧ спосо­бен ингибировать секрецию гамма-интерферона (IFN-γ) и экспрессию некоторых рецепторов иммунных врожденных клеток. Иммуноглобулиноподобный транскрипт 2 (immunoglobulin-like transcript 2, ILT2) является регуляторным рецептором, который, возможно, участвует в патогенезе вирусной инфекции. Индукция иммуносупрессивных цитокинов (IL-10 или TGF-b) является дополнительным механизмом, с помощью которого инфицированные ВПЧ клетки могут избежать иммуноопосредованной элиминации. Значимым фактором является то, что ВПЧ инактивирует опухолевый супрессор p53, играющий одну из ведущих ролей в предотвращении развития рака. Ранее, в исследованиях Гусакова К.И. и соавт., продемонстрированы статистически значимые различия экспрессии 9 белков цервиковагинальной жидкости (ЦВЖ), непосредственно участвующих в реализации иммунного ответа (APOB, FABP5, GRN, HP, MUC5AC, OLFM4, PKP1, QSOX1, S100A8) у вакцинированных от ВПЧ женщин [6–10]. Понимание роли персистенции ВПЧ является ключом к поиску и разработке эффективных иммунных средств, которые могли бы полностью устранять вирусную инфекцию.

Глицирризинат аммония (AMGZ, Glycyram, аммониевая соль глицирризина, аммониевая соль глицирризиновой кислоты) – это вещество, содержащееся в корне солодки. Его можно получить в форме глицирризина аммония и глицирризина моноаммония при экстракции из растения. Глицирризиновую кислоту получают из технического сухого экстракта солодки с содержанием глицирризиновой кислоты 26–28% путем экстрагирования ацетоном, содержащим 0,1% серную кислоту, при комнатной температуре с получением трикалиевой соли гликозида и переводом ее в однокалиевую соль путем перекристаллизации последней из водного этанола дважды при соотношении, соответственно равном (5:1, V/V), и далее переводом в глицирризиновую кислоту путем обработки однокалиевой соли 1% раствором серной кислоты при 98–100°C и хлороформом при комнатной температуре. Глицирризинат аммония обладает широким спектром фармакологической и биологической активности, он является ингибитором HMGB1 белка, а также обладает противовоспалительным, противоопухолевым и антидиабетическим действиями. В частности, введение глицирризината аммония и доксорубицина позволило уменьшить кардиотоксичность, вызванную введением доксорубицина, за счет усиления эндогенной антиоксидантной активности. Глицирризинат аммония обладает антиоксидативным свойством, он способен блокировать экспрессию генов, участвующих в апоптозе (GDF15, ATF3, TNFRSF10A, NALP1), в том числе индуцированном окислительным стрессом (HMOX1). Противовирусное действие АГК было продемонстрировано на примере вируса гепатита. Было показано, что терапия с использованием глицирризина усиливает пролиферацию лимфоцитов через 4 дня после начала лечения.

A. Farooqui et al. изучали влияние глицирризина на линию раковых клеток шейки матки HeLa [11]. Анализ жизнеспособности клеток показал, что воздействие глицирризина на клетки HeLa значительно снижало жизнеспособность раковых клеток шейки матки в зависимости от времени и дозы. Было продемонстрировано, что глицирризин оказывает цитотоксическое действие на раковые клетки шейки матки без значительного влияния на нормальные клетки. Результаты позволили установить, что глицирризин проявлял антипролиферативные и апоптотические свойства в отношении раковых клеток шейки матки, вызывая нарушение митохондриального мембранного потенциала, увеличение генерации активных форм кислорода, активацию каспаз как внешнего, так и внутреннего пути гибели клеток, а также индукцию остановки клеточного цикла в фазе G0/G1. В связи с этим чрезвычайно актуальной является задача изучения протеомного состава ЦВЖ в когорте ВПЧ-инфицированных пациенток с «малыми» поражениями шейки матки, применяющих длительно активированную глицирризиновую кислоту (АГК).

Целью данного исследования явилась оценка протеома ЦВЖ при применении АГК в проспективной когорте ВПЧ-позитивных женщин для снижения риска развития и прогресии CIN.

Материалы и методы

В исследование были включены 80 пациенток в возрасте от 18 до 49 лет (средний возраст 30 лет), обратившихся в научно-поликлиническое отделение ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России.

Критерии включения: возраст от 18 до 49 лет, ВПЧ ВР, интраэпителиальные поражения низкой степени тяжести (ВПЧ-ассоциированный хронический цервицит и LSIL), половая жизнь с презервативом в течение всего периода исследования, способность выполнять требования протокола, предоставление подписанного письменного информированного согласия на участие в исследовании.

Критерии исключения: желание пациента прекратить участие в исследовании, аллергические реакции или индивидуальная непереносимость препарата АГК, выявленная в ходе исследования, некомплаентность, нарушение больным протокола исследования.

Критерии невключения в исследование: выявление инфекций, передающихся половым путем, в период проведения исследования (гонореи, хламидиоза, трихомониаза, сифилиса, кандидоза, генитального герпеса); злокачественные новообразования органов репродуктивной системы; беременность и лактация; тяжелые соматические заболевания, онкологические заболевания, сахарный диабет, первичные и вторичные иммунодефицитные состояния; проведение системной или местной антибактериальной терапии в течение 1 месяца до начала исследования; использование оральных контрацептивов во время текущего лечения; непереносимость назначаемых в исследовании препаратов.

Участники были разделены на 2 группы в зависимости от цитологического заключения: группа I (n=40) – хронический цервицит с персистенцией ВПЧ и группа II (n=40) – LSIL с наличием ВПЧ. Все пациентки получали АГК интравагинально в форме спрея 0,1% («Эпиген Интим» спрей) 3 раза в день 14 дней ежемесячно на протяжении 3 месяцев, затем перерыв 3 месяца, затем снова АГК по той же схеме. Контрольные временные точки – до начала терапии и через 6, 12 и 18 месяцев в соответствии с клиническими рекомендациями Минздрава ведения пациенток.

Комплексное обследование женщин включало сбор клинико-анамнестических данных, определение гинекологического статуса, цитологическое исследование, ВПЧ-типирование, липидомный и протеомный анализ соскоба эпителия шейки матки. Для проведения цитологического исследования эпителия шейки матки взятие материала проводили с помощью щетки со съемной головкой типа Cervix-brush по стандартной методике. Цитологическая оценка мазков с шейки матки осуществлялась по системе Bethesda (2014).

Взятие биологического материала (соскоб эпителия шейки матки) для ВПЧ-типирования осуществляли в пробирки с физиологическим раствором. При выделении ДНК вируса использовали наборы «Проба ГС» («ДНК-Технология», Россия). Метод основан на использовании для лизиса клеток сильного хаотропного агента с последующей сорбцией нуклеиновых кислот на твердом носителе, последующих отмывках сорбента и элюции ДНК с сорбента. Объем образцов после выделения составил 100 мкл. Амплификацию типоспецифических фрагментов ДНК ВПЧ и человеческой ДНК (контроль адекватности взятия биоматериала) проводили с помощью комплекта реагентов для выявления, типирования и количественного определения 21 типа ВПЧ методом ПЦР HPV «Квант-21» («ДНК-Технология», Россия). Амплификацию осуществляли в режиме «реального времени» на приборе «ДТ-964» («ДНК-Технология», Россия). Измерение уровня флуоресценции проводили на каждом цикле амплификации по каналам FAM, HEX, ROX и Cy5. Обработка результатов осуществлялась автоматически с помощью программного обеспечения к приборам.

Для кольпоскопического исследования использовался кольпоскоп Leisegang (Германия), обеспечивающий 7–15–30-кратное увеличение. Слизистую шейки матки исследовали как без обработки, так и с последующим нанесением 3% раствора уксусной кислоты и затем 2% водного раствора Люголя (проба Шиллера). При выполнении кольпоскопии намечались участки для прицельного взятия последующей биопсии и гистологического исследования биопсийного материала. При оценке кольпоскопической картины использовали единую Международную кольпоскопическую классификацию, одобренную на 14-м Всемирном конгрессе IFCPC в Рио-де-Жанейро (2011 г., дополненная в 2017 г.). Документацию кольпоскопических картин осуществляли у всех пациенток графически в соответствии с условным циферблатом.

Для получения образца ЦВЖ проводилось орошение влагалища и шейки матки физиологическим раствором до каких-либо манипуляций с целью минимизации риска контаминации образца кровью. Затем проводились центрифугирование для удаления клеток эпителия и заморозка надосадочной жидкости с хранением при -80°С. После быстрого размораживания проводили восстановление белков 100 мМ дитиотреитолом с последующим алкилированием 50мМ йодацетамидом, осаждением белковой смеси ледяным ацетоном с 0,1% три­фторуксусной кислотой и трипсинолизом [9, 10]. Анализ смеси триптических пептидов проводился методом нано-поточной высокоэффективной хроматографии с тандемной масс-спектрометрией (ВЭЖХ-МС/МС) на Dionex Ultimate 3000 (Thermo Fisher Scientific, США), соединенном с TIMS TOF Pro (Bruker Daltonics, США), с использованием метода сбора данных с помощью параллельного накопления и последовательной фрагментации (PASEF) в режиме DDA (сбор данных в зависимости от данных).

Полученные данные были проанализированы с использованием программного обеспечения PEAKS Studio 8.5 с применением следующих парамет­ров: погрешность измерения массы родительского иона – 20 ppm; погрешность массы фрагмента – 0,03 Да. Окисление метионина было установлено как возможные вариабельные модификации. Поиск проводился с использованием базы данных Swissprot белков человека. Пороговые значения FDR для всех этапов были установлены на уровне 0,01 (1%) или ниже.

Исследование было одобрено Комиссией по этике ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России. Пациентки, включенные в исследование, подписали добровольное информированное согласие.

Результаты и обсуждение

Были сформированы 2 группы ВПЧ-позитивных женщин с результатами цитологии: NILM, хронический цервицит (группа I, n=40) и LSIL (группа II, n=40).

Нами была произведена сравнительная оценка встречаемости ВПЧ высокого и низкого риска в исследуемых группах. В исходной точке у пациенток группы I преобладал ВПЧ ВР 16 типа (38%). Через 18 месяцев после применения АГК ВПЧ ВР элиминировал у 87,5% женщин, а ВПЧ низкого риска (НР) – в 77% случаев.

В группе II исходно также наиболее встречаемым являлся ВПЧ ВР 16 типа (40%). После применения препарата АГК в форме спрея 0,1% для местного и наружного применения через 18 месяцев отмечалась элиминация ВПЧ ВР в 88% случаев, ВПЧ НР – в 80%.

При динамическом наблюдении пациенток с «малыми» поражениями шейки матки применение АГК способствовало улучшению цитологической картины в группе II в 62,5% случаев. В обеих группах не отмечено прогрессирования процесса до CIN II+.

Всем пациенткам, включенным в исследование, проводилась кольпоскопия. Область стыка многослойного плоского и цилиндрического эпителия полностью визуализировалась у 67 (58%) пациенток, полностью не визуализировалась – у 49 (42%). Нормальная кольпоскопическая картина наблюдалась у 22% пациенток. Ненормальная кольпоскопическая картина была обнаружена у большинства женщин – 61 (78%). Слабовыраженные изменения эпителия шейки матки при кольпоскопии отмечались в 64,4% случаев и включали наличие тонкого ацетобелого эпителия с нежной мозаикой и пунктацией (рис. 1). Слабовыраженные изменения чаще всего встречались у пациенток в группах I и II. Выраженные изменения встречались в 3,3% случаев (группа II). Следует отметить, что в указанных случаях была произведена биопсия шейки матки с гистологической верификацией диагноза LSIL (CIN I). За период наблюдения (18 месяцев) отрицательной динамики при кольпоскопии в исследуемых группах отмечено не было.

113-1.jpg (163 KB)

Биопсия шейки матки через 18 месяцев наблюдения была произведена при персистенции ВПЧ и изменениях эпителия шейки матки, подозрительных в отношении CIN, в 33 (42,3%) случаях. Гистологический диагноз LSIL (CIN I) выявлен у 26 пациенток, доброкачественные заболевания шейки матки – у 6 (хронический цервицит – у 4 (5,1%), лейкоплакия шейки матки – у 2 (2,6%)).

Для определения особенностей протеомного состава ЦВЖ при использовании АГК в процессе динамического наблюдения были исследованы образцы от 10 пациенток 2 группы (LSIL) репродук­тивного возраста (средний возраст 26 лет). Было проведено сравнение при «положительной» динамике (n=5) – элиминация ВПЧ и улучшение цитологической картины и «без динамики» (n=5) – дальнейшая персистенция ВПЧ. Выявлено изменение 48 белков (FDR=0,01). Уровень 27 белков повышался в группе с «положительной» динамикой, в то время как уровень 21 белка снижался относительно группы «без динамики» (рис. 2).

114-1.jpg (285 KB)

Аннотация белков, увеличивающих свой уровень (рис. 3), по базе Gene Ontology выявила их участие в процессах иммунной системы (MPO, AZU1, LYZ, RNASE7, PPL, TXN, CD59, UBA52, CRISP3, ELANE), в частности, во врожденном иммунном ответе (MPO, AZU1, LYZ, RNASE7, TXN, CD59, UBA52, CRISP3, ELANE), а также в процессе дегрануляции нейтрофилов (MPO, AZU1, LYZ, CD59, CRISP3, ELANE). Белки AZU1, ELANE имеют антимикробную активность [12]. Так, AZU1 является частью врожденной защиты – нейтрофилов человека. В ранее опубликованных работах сообщалось, что он играет роль в увеличении проницаемости сосудов, индуцированном нейтрофилами [13]. Кроме того, следует отметить увеличение уровня белков, участвующих в формировании ороговевающего эпителия (CSTA, SPRR1B, PPL, FLG, SPRR2F), а также кератинов (K1C10, K1C13, K22E, K2C1, K2C4, K2C5, K2C6A). Повышение уровня кератина 13 в ЦВЖ при аденокарциноме было подтверждено методом iTRAQ в 2020 г. группой Zhifang Ma [14]. Изменение уровня синтеза кератинов 10 и 13 в клетках эпителия было также показано при цервикальных неоплазиях шейки матки и вульвы [15, 16].

115-1.jpg (186 KB)

Аннотация белков, уменьшающих свой уровень (рис. 4), по базе Gene Ontology также выявила их участие в процессах иммунной системы (C3, IGJ, IL1RN, ORM1, S100A11, CSTB, LRG1, PKM, HBB, PIGR, SERPINA1), однако их снижение, по-видимому, обусловлено элиминацией вируса и снижением провоспалительной активности иммунных клеток в эпителии шейки матки.

В ранее проведенных коллективом авторов исследованиях, анализировавших динамику белкового состава ЦВЖ пациенток с ВПЧ-ассоциированными «малыми» поражениями шейки матки, также было выявлено значительное изменение уровней белков, участвующих в реализации иммунного ответа – более чем в 2 раза изменялся уровень 13 белков: A1BG, ACTR3, C4A, CAMP, CAP1, CSTB, GSTP1, HSPA8, LTA4H, LTF, MMP9, PPIA и S100A11 [9, 10]. Следует особенно отметить, что при оценке протеомного состава ЦВЖ женщин, вакцинированных от ВПЧ, изменялся уровень белков, в основном принимающих участие в реализации процессов врожденного иммунитета (APOB, FABP5, GRN, HP, MUC5AC, OLFM4, PKP1, QSOX1, S100A8). Уменьшение уровня белков из группы S100 (S100A8 и S100A11) в данном исследовании может быть ассоциировано со снижением провоспалительной активности иммунных клеток эпителия ввиду элиминации ВПЧ. Дальнейшие исследования должны подтвердить данную точку зрения.

Всего в семействе кальций-связывающих белков (S100) известно более 21 представителя [17]. Данное семейство белков выполняет множество внутри- и внеклеточных функций, таких как регуляция фосфорилирования белков, гомеостаза Ca2+, активности ферментов, дифференцировки клеток и воспалительный ответ [18]. Некоторые из белков S100 в клинической практике в настоящее время используются в качестве маркеров опухолей, например меланомы, шванномы и нейрофибромы [17], и являются маркерами воспалительных заболеваний [18].

В динамике наблюдения статистически достоверно изменялся уровень белков HSPB1, IGHG2 и PIGR. На фоне применения АГК уровни белков IGHG2 и PIGR снижались, в то время как уровень HSPB1 повышался. Белок IGHG2 является частью тяжелой цепи иммуноглобулинов и, соответственно, участвует в фазе распознавания при гуморальном иммунном ответе. Секретируемые иммуноглобулины опосредуют эффекторную фазу гуморального иммунитета, что приводит к устранению связанных антигенов. PIGR также является иммуноглобулиновым рецептором и опосредует селективный трансцитоз полимерных IgA и IgM через эпителиальные клетки слизистой оболочки. Снижение уровня данных белков после применения препарата АГК, возможно, ассоциировано с уменьшением воспалительного процесса при элиминации вируса ВПЧ.

Данное исследование подтверждает влияние длительного местного применения препарата АГК на протеом ЦВЖ при «малых» поражениях шейки матки, в частности, отмечается снижение провос­палительных белков при элиминации ВПЧ.

В связи с широким распространением папилломавирусной инфекции перед исследователями стоят несколько задач: первая – выявление «тяжелых» форм поражения шейки матки; вторая – определение в когорте ВПЧ-позитивных женщин с «малыми» формами поражения пациенток, подверженных риску прогрессии патологического процесса до CIN III; третья – определение групп белков ЦВЖ методом масс-спектрометрии и выявление их роли в иммунопатогенезе ВПЧ-инфекции и оценке эффективности применения локальной иммунотерапии для профилактики прогрессирования ВПЧ-инфекции. На решение данных задач и была направлена настоящая работа. Полученные предварительные данные указывают на то, что местное длительное применение АГК в форме спрея 0,1% связано со значительным снижением экспрессии провоспалительных белков ЦВЖ, которые могут участвовать в защитном действии, предупреждать развитие и прогрессию CIN и определялись у пациенток с элиминацией ВПЧ.

Заключение

Таким образом, исследования эффективности лекарств путем оценки протеомного состава ЦВЖ как на фундаментальном, так и на прикладном уровнях являются важными для внесения вклада в будущие инновации для широкого внедрения иммунотерапии ВПЧ-ассоциированных заболеваний путем длительного локального применения препарата АГК.

Список литературы

  1. Garg M., Singhal T., Sharma H. Cardioprotective effect of ammonium glycyrrhizinate against doxorubicin-induced cardiomyopathy in experimental animals. Indian J. Pharmacol. 2014; 46(5): 527-30. https://dx.doi.org/10.4103/0253-7613.140585.
  2. Gage J.C., Hunt W.C., Schiffman M., Katki H.A., Cheung L.C., Cuzick J. et al.; New Mexico HPV Pap Registry Steering Committee. Risk stratification using human papillomavirus testing among women with equivocally abnormal cytology: results from a state-wide surveillance program. Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 2016; 25(1): 36-42. https://dx.doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-15-0669.
  3. Бебнева Т.Н., Прилепская В.Н. Папилломавирусная инфекция и патология шейки матки. Гинекология. 2013; 3(3): 77-81.
  4. Kaufman R., Adam E., Vonka N. HPV-infection and cervical carcinoma. Clin. Obstet. Gynecol. 2013; 43(2): 363-80. https://dx.doi.org/10.1097/00003081-200006000-00016.
  5. Colmenares V., Noyola D.E., Monsiváis-Urenda A., Salgado-Bustamante M., Estrada-Capetillo L., González-Amaro R., Baranda L. Human papillomavirus immunization is associated with increased expression of different innate immune regulatory receptors. Clin. Vaccine Immunol. 2012; 19(7): 1005-11. https://dx.doi.org/10.1128/CVI.00043-12.
  6. Gusakov K., Nazarova N. , Frankevich V., Starodubtseva N., Prilepskaya V., Burmenskaya O., Kononikhin A., Bugrova A., Brzhozovskiy A., Dovletkhanova E., Abakarova P. Mass-spectrometry proteome analysis in QHPV vaccinated women. IPVC 2021 34th International Papillomavirus Conference Research and Education for HPV Elimination. Abstract E-book. 2021; 110.
  7. Гусаков К.И., Франкевич В.Е., Назарова Н.М., Прилепская В.Н., Стародубцева Н.В., Чаговец В.В., Кононихин А.С., Бржозовский А.Г. Определение ранних маркеров ВПЧ-ассоциированных заболеваний шейки матки в ЦВЖ вакцинированных женщин методом масс-спектрометрии Материалы XXVII Всероссийского конгресса с международным участием «Амбулаторно-поликлиническая помощь в эпицентре женского здоровья». Москва; 2021: 38-9.
  8. Гусаков К.И., Назарова Н.М., Франкевич В.Е., Стародубцева Н.Л., Бурменская О.В., Прилепская В.Н., Сухих Г.Т. Результаты генотипирования вируса папилломы человека у женщин репродуктивного возраста, вакцинированных от вируса папилломы человека. Акушерство и гинекология. 2020; 9: 114-9.
  9. Starodubtseva N.L., Brzhozovskiy A.G., Bugrova A.E., Kononikhin A.S., Indeykina M.I., Gusakov K.I., Chagovets V.V., Nazarova N.M., Frankevich V.E., Sukhikh G.T., Nikolaev E.N. Label-free cervicovaginal fluid proteome profiling reflects the cervix neoplastic transformation. J. Mass Spectrom. 2019; 54(8): 693-703. https://dx.doi.org/10.1002/jms.4374.
  10. Стародубцева Н.Л., Бржозовский А.Г., Бугрова А.Е., Кононихин А.С., Гусаков К.И., Назарова Н.М. Характеристика динамических изменений протеомного состава цервиковагинальной жидкости при заболеваниях шейки матки, ассоциированных с ВПЧ-инфекцией. Акушерство и гинекология. 2020; 7: 111-6.
  11. Farooqui A., Khan F., Khan I., Ansari I.A. Glycyrrhizin induces reactive oxygen species-dependent apoptosis and cell cycle arrest at G0/G1 in HPV18+ human cervical cancer HeLa cell line. Biomed. Pharmacother. 2018; 97: 752-64. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2017.10.147.
  12. Eggers C.T., Murray I.A., Delmar V.A., Day A.G., Craik C.S. The periplasmic serine protease inhibitor ecotin protects bacteria against neutrophil elastase. Biochem. J. 2004; 379(Pt 1): 107-18. https://dx.doi.org/10.1042/BJ20031790.
  13. McCabe D., Cukierman T., Gabay J.E. Basic residues in azurocidin/HBP contribute to both heparin binding and antimicrobial activity. J. Biol. Chem. 2002; 277(30): 27477-88. https://dx.doi.org/10.1074/jbc.M201586200.
  14. Ma Z., Chen J., Luan T., Chu C., Wu W., Zhu Y., Gu Y. Proteomic analysis of human cervical adenocarcinoma mucus to identify potential protein biomarkers. PeerJ. 2020; 8: e9527. https://dx.doi.org/10.7717/peerj.9527.
  15. Carrilho C., Alberto M., Buane L., David L. Keratins 8, 10, 13, and 17 are useful markers in the diagnosis of human cervix carcinomas. Hum. Pathol. 2004; 35(5): 546-51. https://dx.doi.org/10.1016/j.humpath.2004.01.021.
  16. Dasgupta S., Ewing-Graham P.C., van Kemenade F.J., van Doorn H.C., Hegt V.N., Koljenović S. Differentiated vulvar intraepithelial neoplasia (dVIN): the most helpful histological features and the utility of cytokeratins 13 and 17. Virchows Arch. 2018; 473(6): 739-47. https://dx.doi.org/10.1007/s00428-018-2436-8.
  17. Marenholz I., Heizmann C.W., Fritz G. S100 proteins in mouse and man: from evolution to function and pathology (including an update of the nomenclature). Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004; 322(4): 1111-22. https://dx.doi.org/10.1016/j.bbrc.2004.07.096.
  18. Donato R. Intracellular and extracellular roles of S100 proteins. Microsc. Res.Tech. 2003; 60(6): 540-51. https://dx.doi.org/10.1002/jemt.10296.

Поступила 20.05.2022

Принята в печать 24.05.2022

Об авторах / Для корреспонденции

Франкевич Владимир Евгеньевич, д.ф-м.н., руководитель отдела системной биологии в репродукции, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(495)438-07-88 (доб. 2198), v_frankevich@oparina4.ru,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Назарова Нисо Мирзоевна, д.м.н., в.н.с., Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(495)438-14-03, grab2@yandex.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Довлетханова Эльмира Робертовна, к.м.н., с.н.с. научно-поликлинического отделения, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, e_dovletkhanova@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-8243-5272,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Гусаков Кирилл Ильич, к.м.н, н.с. научно-поликлинического отделения, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, e-mail: kigusakov@gmail.com, https://orcid.org/0000-0003-3895-8225,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Кононихин Алексей Сергеевич, к.ф.-м.н., н.с. лаборатории протеомики репродукции человека, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России; н.с. лаборатории масс-спектрометрии, Сколковский институт науки и технологий, +7(495)438-07-88 (доб. 2198), konoleha@yandex.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Бугрова Анна Евгеньевна, к.б.н., с.н.с. лаборатории протеомики репродукции человека, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России; с.н.с. лаборатории нейрохимии, Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН,
+7(926)562-65-90, a_bugrova@oparina4.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Бржозовский Александр Геннадьевич, н.с. лаборатории протеомики репродукции человека, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России; м.н.с. лаборатории масс-спектрометрии, Сколковский институт науки и технологий, +7(495)438-07-88 (доб. 2198), agb.imbp@gmail.com, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Прилепская Вера Николаевна, д.м.н., профессор, заведующая поликлиническим отделением, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(495)438-69-34, v_prilepskaya@oparina4.ru,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Чаговец Виталий Викторович, к.ф-м.н., с.н.с. лаборатории протеомики и метаболомики репродукции человека, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(916)919-14-66, e-mail: vvchagovets@gmail.com,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Стародубцева Наталия Леонидовна, к.б.н., заведующая лабораторией протеомики репродукции человека, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(916)463-98-67, n_starodubtseva@oparina4.ru,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Сухих Геннадий Тихонович, академик РАН, д.м.н., профессор, директор, Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, g_sukhikh@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-7712-1260, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Вклад авторов: Сухих Г.Т., Гусаков К.И., Назарова Н.М., Довлетханова Э.Р., Франкевич В.Е., Стародубцева Н.Л., Прилепская В.Н. – концепция и дизайн исследования; Гусаков К.И., Назарова Н.М., Довлетханова Э.Р., Бугрова А.Е., Бржозовский А.Г., Кононихин А.С. – cбор и обработка материала; Бржозовский А.Г., Стародубцева Н.Л., Кононихин А.С. – cтатистическая обработка данных; Стародубцева Н.Л., Назарова Н.М., Гусаков К.И., Кононихин А.С., Бугрова А.Е., Бржозовский А.Г. – написание текста; Франкевич В.Е., Бугрова А.Е., Прилепская В.Н., Сухих Г.Т. – редактирование.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование: Работа выполнена без спонсорской поддержки.
Одобрение Этического комитета: Исследование было одобрено Комиссией по этике ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России.
Согласие пациентов на публикацию: Пациенты подписали информированное согласие на публикацию своих данных и изображений.
Обмен исследовательскими данными: Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.
Для цитирования: Франкевич В.Е., Назарова Н.М., Довлетханова Э.Р.,
Гусаков К.И., Кононихин А.С., Бугрова А.Е., Бржозовский А.Г., Прилепская В.Н., Стародубцева Н.Л., Сухих Г.Т. Протеомный анализ цервиковагинальной жидкости
при применении активированной глицирризиновой кислоты у пациенток
с ВПЧ-ассоциированными поражениями шейки матки.
Акушерство и гинекология. 2022; 5: 109-117
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.5.109-117

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.