Показатели оксидативного стресса у здоровых беременных женщин и беременных женщин с урогенитальной инфекцией на ранних сроках гестации

Жамбалова Б.А., Носикова И.Н., Малушенко С.В., Максина А.Г., Ганковская Л.В., Доброхотова Ю.Э., Осипов А.Н., Теселкин Ю.О.

ФГБОУ ВО Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России, Москва
Цель исследования. Изучение показателей оксидативного стресса у женщин на ранних сроках физиологической беременности, а также беременности, осложненной урогенитальной инфекцией.
Материал и методы. Обследованы 90 женщин в возрасте 20–45 лет, которые были распределены на 3 группы: 1-я группа – здоровые небеременные женщины (n=30); 2-я группа – здоровые беременные женщины (n=30); 3-я группа – беременные женщины с урогенитальной инфекцией (n=30). Все беременные женщины находились в первом триместре гестации (8–10-я неделя). Определение функциональной активности фагоцитов цельной крови проводили методом люминол-зависимой хемилюминесценции. Хемилюминесцентный метод также использовали для измерения антиоксидантной активности плазмы крови. Содержание в ней одного из продуктов пероксидного окисления липидов, малонового диальдегида, определяли спектрофотометрически.
Результаты исследования. Обнаружено достоверное увеличение функциональной активности фагоцитов цельной крови у здоровых беременных женщин и беременных женщин с урогенитальной инфекцией по сравнению со здоровыми небеременными женщинами, а также повышение содержания в их плазме крови малонового диальдегида и уменьшение ее антиоксидантной активности.
Заключение. Сравнение показателей оксидативного стресса у здоровых беременных женщин и беременных женщин с урогенитальной инфекцией с соответствующими показателями у здоровых небеременных женщин позволяет сделать вывод о развитии оксидативного стресса уже в первом триместре беременности. Наличие урогенитальной инфекции у беременных женщин способствует еще большему дисбалансу между продукцией прооксидантов и активностью антиоксидантной системы.

Ключевые слова

физиологическая беременность
урогенитальная инфекция
фагоциты крови
активные формы кислорода
оксидативный стресс
антиоксидантная активность плазмы крови
хемилюминесценция

В настоящее время существует много доказательств, свидетельствующих о том, что развитие физиологической, а также осложненной беременности происходит на фоне неконтролируемого усиления свободно-радикальных реакций, получившего название «оксидативный стресс» [1–3].

Полагают, что одним из главных источников прооксидантов – свободных радикалов и активных форм кислорода (АФК) при беременности является плацента и, в частности, митохондрии, ксантиноксидаза и NADPH-оксидаза гладкомышечных и эндотелиальных клеток [4–7]. Поскольку протекание физиологической беременности неразрывно связано с развитием системного воспалительного ответа [8, 9], существенный вклад в продукцию АФК при физиологической беременности могут вносить активированные фагоциты крови. В работе C.W. Redman и соавт. [10] обнаружено повышение продукции АФК лейкоцитами периферической крови у здоровых беременных женщин в III триместре беременности по сравнению со здоровыми небеременными женщинами.

Считают, что усиление продукции АФК при физиологической беременности обеспечивает регуляцию процессов пролиферации и дифференцировки трофобласта, поддержание сосудистого тонуса, формирование механизмов антиоксидантной защиты [4]. Между тем чрезмерная продукция прооксидантов на фоне ослабления антиоксидантной системы может способствовать развитию различных осложнений беременности. Так, например, увеличение в плазме крови уровня одного из маркеров оксидативного стресса, малонового диальдегиада (МДА), обнаружено у здоровых беременных женщин во II и III триместрах гестации по сравнению со здоровыми небеременными женщинами [11]. В то же время у беременных женщин с преэклампсией повышение содержания МДА в плазме крови было достоверно выше, чем у здоровых беременных женщин [11]. У пациенток с привычным невынашиванием беременности в I триместре зарегистрировано понижение активности антиоксидантных ферментов в эритроцитах крови, уменьшение уровня восстановленного глутатиона в плазме крови и ее антиоксидантной активности, а также повышение содержания в ней МДА по сравнению со здоровыми беременными женщинами [12]. Высокие по сравнению с физиологической гестацией уровни МДА обнаружены в плазме крови беременных женщин (I–II триместр) с угрозой прерывания беременности, а также различной экстрагенитальной патологией [1]. Авторы этих исследований указывают на важную роль оксидативного стресса в развитии соответствующей патологии беременности. Однако механизмы возникновения оксидативного стресса, особенно на ранних сроках физиологической беременности и беременности, осложненной урогенитальной инфекцией (УГИ), остаются все еще мало изученными.

Целью настоящей работы было исследование показателей оксидативного стресса у женщин на ранних сроках физиологической беременности, а также беременности, осложненной УГИ, которая является одной из наиболее частых причин нарушения репродуктивного здоровья женщин.

Материал и методы исследования

В данное исследование включено 90 женщин в возрасте 20–45 лет (средний возраст 30,4±6,5 года), проходивших обследование на клинических базах кафедры акушерства и гинекологии лечебного факультета ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России (зав. кафедрой – д.м.н., профессор Ю.Э. Доброхотова).

Все женщины были распределены на 3 группы: 1-я группа – здоровые небеременные женщины (n=30); 2-я группа – здоровые беременные женщины (n=30); 3-я группа – беременные женщины с УГИ (n=30). Все беременные женщины находились в первом триместре гестации (8–10-я неделя). Возрастная характеристика обследованных групп и критерии исключения из групп представлены в табл. 1.

Обследование проводилось с помощью общеклинических, бактериологических, иммунологических методов. Инфекции, передающиеся половым путем, выявлялись методом полимеразной цепной реакции (ПЦР).

В 3-й группе беременных женщин с УГИ контрольная ПЦР показала наличие инфекций, передающихся половым путем. В структуре возбудителей УГИ у пациенток этой группы с наибольшей частотой выявлялась Ureaplasma urealyticum – 73,3%. Примерно с одинаковой частотой встречались Herpes simplex virus II и цитомегаловирус – 56,7 и 53,3% соответственно (табл. 2).

Забор крови осуществляли путем венопункции утром, натощак. Плазму крови отделяли от форменных элементов с помощью центрифугирования в течение 20 мин при 1500 g. В качестве антикоагулянта применяли гепарин (20—25 Ед/мл крови). Плазму крови хранили в замороженном состоянии при -30°С не более недели.

Определение функциональной активности фагоцитов цельной крови проводили с помощью метода люминол-зависимой хемилюминесценции (ЛХЛ) [13] на хемилюминометре Lum-5773 (ООО «ДиСофт», Москва). Для этого в течение 5 мин измеряли уровень спонтанного свечения. Затем в реакционную среду общим объемом 1 мл, содержащую 10 мкл крови, 100 мкМ люминола в растворе Кребса–Рингера (рН 7,4), добавляли соответствующий стимулирующий агент — зимозан (500 мкг/мл) или опсонизированный зимозан (500 мкг/мл). Функциональную активность фагоцитов цельной крови рассчитывали как разность между максимальной интенсивностью индуцированного и спонтанного свечения. Поскольку содержание фагоцитов в крови женщин может различаться, интенсивность ЛХЛ нормировали на количество этих клеток в исследуемом объеме крови, которое получали как общее количество лейкоцитов крови минус количество лимфоцитов [13]. Нормированная таким образом ЛХЛ фагоцитов крови – это интенсивность их свечения в расчете на одну клетку.

Содержание в плазме крови одного из продуктов пероксидного окисления липидов, МДА, определяли спектрофотометрическим методом по тесту с тиобарбитуровой кислотой [14].

Антиоксидантную активность плазмы крови (АОА) оценивали с помощью хемилюминесцентного метода [15], основанного на ингибировании антиоксидантами окисления люминола, индуцированного с помощью 2,2’-азобис (2-амидинопропан) дигидрохлорида, и представляли в виде концентрации стандартного антиоксиданта, в качестве которого использовали тролокс – водорастворимый структурный аналог витамина Е.

Индекс оксидативного стресса рассчитывали из отношения содержания МДА в плазме крови обследуемых женщин к величине ее АОА. Полученное значение отношения МДА/АОА умножали на 100.

Результаты исследования обработаны статистически и представлены как среднее арифметическое для анализируемой выборки ± стандартная ошибка средней (M±m). Оценку достоверности различий между выборками проводили с помощью t-критерия Стьюдента. Для установления линейной взаимосвязи между исследуемыми параметрами вычисляли коэффициент корреляции Пирсона.

Результаты исследования и обсуждение

Способность фагоцитов периферической крови продуцировать АФК или их функциональную активность в настоящем исследовании оценивали с помощью регистрации ЛХЛ, стимулированной зимозаном или опсонизированным зимозаном. Известно, что зимозан является лигандом TLR-2, который относится к Toll-подобным рецепторам (Toll-like receptors) – распознающим рецепторам врожденного иммунитета [16–18]. Что касается опсонизированного зимозана, то фагоциты, например нейтрофилы, взаимодействуют с ним посредством Fc-рецепторов к иммуноглобулинам, опсонизирующих частицы зимозана [19]. Таким образом, регистрируемая ЛХЛ фагоцитов крови будет зависеть от экспрессии указанных рецепторов на цитоплазматической мембране клеток, а также функционирования соответствующих сигнальных путей, приводящих к активации этих клеток и последующей продукции различных АФК.

Обнаружено, что у беременных женщин 2-й и 3-й групп интенсивность ЛХЛ цельной крови была выше, чем у женщин 1-й группы (рис. 1а). Так, при стимуляции зимозаном средние значения этого показателя во 2-й и 3-й группах увеличивались соответственно в 2,8 и 8 раз, а при стимуляции опсонизированным зимозаном – в 2,4 и 4,6 раза по сравнению с 1-й группой (p<0,05). При сравнении интенсивности ЛХЛ цельной крови женщин 2-й и 3-й групп также были обнаружены достоверные различия. В частности, при стимуляции фагоцитов цельной крови пациенток 3-й группы зимозаном интенсивность регистрируемого свечения превышала интенсивность свечения цельной крови женщин 2-й группы в 2,9 раза (p<0,05), а при стимуляции опсонизированным зимозаном — в 1,9 раза (p<0,05).

Наблюдаемые изменения интенсивности ЛХЛ цельной крови у женщин 2-й и 3-й групп по сравнению с 1-й группой могут быть обусловлены как свойствами самих фагоцитирующих клеток, так и большим количеством их в крови. Чтобы исключить последнее, нами было выполнено сравнение интенсивностей ЛХЛ, нормированной на содержание фагоцитов в исследуемом объеме крови. Однако и в этом случае различия между интенсивностью нормированной ЛХЛ цельной крови у женщин указанных групп оставались достоверными (рис. 1б). Важно отметить, что при стимуляции зимозаном или опсонизированным зимозаном интенсивность нормированной ЛХЛ фагоцитов цельной крови пациенток 3-й группы была соответственно в 3,5 и 2 раза выше, чем у женщин 1-й группы (p<0,05) и в 1,8 и 1,2 раза выше, чем у женщин 2-й группы (p<0,05).

Полученные результаты показывают, что уже в первом триместре физиологической беременности наблюдается достоверное повышение функциональной активности фагоцитов крови. Наличие УГИ у беременных женщин сопровождается еще большим повышением АФК-продуцирующей способности фагоцитов. Обращает на себя внимание тот факт, что интенсивность нормированной ЛХЛ фагоцитов цельной крови, стимулированной зимозаном, у женщин 3-й группы по сравнению с женщинами 1-й и 2-й групп увеличивалась более значительно, чем при стимуляции опсонизированным зимозаном. Это свидетельствует о том, что существенный вклад в продукцию АФК фагоцитами крови в первом триместре беременности, осложненной УГИ, может вносить активация TLR-зависимых сигнальных путей. В результате активации этих сигнальных путей фагоциты крови, например нейтрофилы, продуцируют не только АФК, но также различные биологически активные вещества и, в частности цитокины – медиаторы, участвующие в регуляции экспрессии генов, роста и дифференцировки клеток, адгезии, апоптоза, воспалительного ответа и др. [16–18, 20].

Для оценки уровня оксидативного стресса у женщин обследованных групп определяли содержание МДА в плазме крови, а также ее АОА (рис. 2). Обнаружено, что содержание МДА в плазме крови у женщин 2-й и 3-й групп было соответственно в 1,3 и 1,5 раза выше по сравнению с его содержанием у женщин 1-й группы (p<0,05). Что касается АОА плазмы крови, то она была соответственно в 1,4 и 1,5 раза ниже (p<0,05). Повышение содержания МДА в плазме крови женщин 2-й и 3-й групп свидетельствует об активации в их организме процесса свободно-радикального перекисного окисления липидов, тогда как уменьшение АОА плазмы крови — о снижении уровня его антиоксидантной защиты.

На основании полученных результатов для женщин каждой группы был рассчитан индекс оксидативного стресса, который представляет собой отношение МДА/АОА. В этом отношении числитель отражает интенсивность свободно-радикальных реакций, а знаменатель характеризует состояние антиоксидантной системы. Результаты представлены в табл. 3.

Из табл. 3 видно, что индекс оксидативного стресса у здоровых беременных женщин и беременных женщин с УГИ превышает его значение у здоровых небеременных женщин соответственно в 1,8 и 2,2 раза (р<0,05). Это позволяет предположить, что у женщин 2-й и 3-й групп существует выраженный дисбаланс между продукцией прооксидантов и состоянием антиоксидантной защиты в сторону усиления продукции прооксидантов. При этом имеется тенденция в усилении свободно-радикальных реакций у женщин 3-й группы по сравнению со 2-й группой. Одними из инициаторов оксидативного стресса на ранних сроках физиологической беременности, а также беременности, осложненной УГИ, по-видимому, являются АФК, которые продуцируют активированные фагоциты крови. Нельзя исключить, что заметный вклад в общую продукцию АФК фагоцитами крови может вносить TLR-опосредованная продукция АФК. В пользу данного предположения свидетельствует тот факт, что коэффициент корреляции между нормированной ЛХЛ фагоцитов цельной крови, стимулированных зимозаном, и содержанием МДА в плазме крови у женщин 3-й группы был равен +0,71 (p<0,05), тогда как у женщин 1-й и 2-й групп он был существенно ниже и составил соответственно +0,15 и +0,23 (p<0,05).

Заключение

Полученные результаты показывают, что в первом триместре гестации у здоровых беременных женщин наблюдается развитие оксидативного стресса. Наличие УГИ у беременных женщин способствует еще большему дисбалансу между интенсивностью свободно-радикальных реакций и активностью антиоксидантной системы.

Список литературы

1. Ляличкина Н.А., Пешев Л.П., Балченкова Ю.П,, Щукина Л.П. Значение эндогенной интоксикации в патогенезе плацентарной недостаточности при угрожающем аборте и экстрагенитальных заболеваниях у беременных. Фундаментальные исследования. 2012; 12: 96-9.

2. Burton G.J., Jauniaux E. Oxidative stress. Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2011; 25(3): 287-99.

3. Raicevic S., Cubrilo D., Arsenijevic S., Vukcevic G., Zivkovic V., Vuletic M. et al. Oxidative stress in fetal distress: potential prospects for diagnosis. Oxid. Med. Cell Longev. 2010; 3(3): 214-8.

4. Доброхотова Ю.Э., Иванова Т.А., Гуляева.Н.В., Онуфриев М.В., Джобава Э.М., Гехт А.Б. Окислительный стресс в плаценте при физиологической и патологически протекающей беременности. Российский вестник акушера-гинеколога. 2008; 6: 33-6.

5. Ashok A., Kurutas E., Gul M., Kilinc M., Aral M., Guven A. The effects of oxidative stress on female reproduction. Mediators Inflamm. 2012; 2005(5): 309-11.

6. Jauniaux E., Burton G. The role of oxidative stress in placental-related diseases of pregnancy. J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 2016; 45(8): 775-85.

7. Wu F., Tian F., Lin Y. Oxidative stress in placenta: health and diseases. Biomed. Res. Int. 2015; 2015: 293271. doi: 10.1155/2015/293271.

8. Bernardi F., Felisberto F., Vuolo F., Petronilho F., Souza D., Luciano T. et al. Oxidative damage, inflammation, and Toll-like receptor 4 pathway are increased in preeclamptic patients: a case-control study. Oxid. Med. Cell Longev. 2012; 7: 1-6.

9. Matsubara K., Higaki T., Matsubara Y., Nawa A. Nitric oxide and reactive oxygen species in the pathogenesis of preeclampsia. Int. J. Mol. Sci. 2015; 16(3):4600-14.

10. Redman C.W., Sargent I.L. Pre-eclampsia, the placenta and the maternal systemic inflammatory response. Placenta. 2003; 24(Suppl. A): S21-7.

11. Genc H., Uzun H., Benian A., Simsek G., Gelisgen R., Madazli R., Guralp O. Evaluation of oxidative stress markers in first trimester for assessment of preeclampsia risk. Arch. Gynecol. Obstet. 2011; 284(6): 1367-73.

12. Yiyenoglu O.B., Ugur M.G., Ozcan H.C., Can G., Ozturk E., Balat O., Erel O. Assessment of oxidative stress markers in recurrent pregnancy loss: a prospective study. Arch. Gynecol. Obstet. 2014; 289(6): 1337-40.

13. Allen R.C., Dale D.C., Taylor F.B. Jr. Blood phagocyte luminescence: gauging systemic immune activation. Methods Enzymol. 2000; 305: 591-629.

14. Куликова А.И., Тугушева Ф.А., Зубина И.М., Шепилова И.Н. Методические аспекты оценки потенциальной способности липидов к перокислению по уровню ТБК-активных продуктов сыворотки крови при стимуляции ионами железа. Клиническая лабораторная диагностика. 2008; 5: 8-10.

15. Чехани Н.Р., Теселкин Ю.О., Павлова Л.А., Козин С.В., Любицкий О.Б. Антиоксидантная активность растений, используемых в этномедицине Тувы. Вестник Российского государственного медицинского университета. 2012; 6: 66-9.

16. Juarez E., Nunez C., Sada E., Ellner J., Schwander K., Torres M. Differential expression of Toll-like receptors on human alveolar macrophages and autologous peripheral monocytes. Respir. Res. 2010; 11: 2. doi: 10.1186/1465-9921-11-2.

17. Kohchi C., Inagawa H., Nishizawa T., Soma G. ROS and innate immunity. Anticancer Res. 2009; 29(3): 817-21.

18. Prince L.R., Whyte M.K., Sabroe I., Parker L.C. The role of TLRs in neutrophil activation. Curr. Opin. Pharmacol. 2011; 11(4): 397-403.

19. Makni-Maalej K., Chiandotto M., Hurtado-Nedelec M., Bedouhene S., Gougerot-Pocidalo M.A., Dang P.M., El-Benna J. Zymosan induces NADPH oxidase activation in human neutrophils by inducing the phosphorylation of p47phox and the activation of Rac2: involvement of protein tyrosine kinases, PI3Kinase, PKC, ERK1/2 and p38MAPkinase. Biochem. Pharmacol. 2013; 85(1): 92-100.

20. Озолиня Л.А., Праведников Н.Н., Овсепян Н.Р. Современный взгляд на этиологию, патогенез, клинику и лечение воспалительных заболеваний органов малого таза у женщин (обзор литературы). Вестник Российского государственного медицинского университта. 2013; 2: 47-52.

Поступила 23.11.2016

Принята в печать 23.12.2016

Об авторах / Для корреспонденции

Жамбалова Баярма Арсалановна, к.б.н., старший научный сотрудник отдела медицинской биофизики, доцент кафедры физики и математики педиатрического факультета ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. Телефон: 8 (985) 413-34-27. Е-mail: ZhambalovaBA@inbox.ru
Носикова Инна Николаевна, студент ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. Телефон: 8 (905) 580-66-72. Е-mail: nosikovainna@mail.ru
Малушенко Светлана Васильевна, аспирант кафедры акушерства и гинекологии лечебного факультета ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. Телефон: 8 (495) 494-12-53. Е-mail: malusvetlana@yandex.ru
Максина Александра Генриховна, д.б.н., профессор, зав. кафедрой физики и математики педиатрического факультета ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова
Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. Телефон: 8 (495) 434-86-19. Е-mail: maxinaalexandra@yandex.ru
Ганковская Людмила Викторовна, д.м.н., профессор, зав. кафедрой иммунологии медико-биологического факультета ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. Телефон: 8 (495) 434-90-00. Е-mail: lvgan@yandex.ru
Доброхотова Юлия Эдуардовна, заслуженный врач РФ, д.м.н., профессор, зав. кафедрой акушерства и гинекологии лечебного факультета ФГБОУ ВО РНИМУ
им. Н.И. Пирогова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. Телефон: 8 (495) 237-40-33. E-mail: pr.dobrohotova@mail.ru
Осипов Анатолий Николаевич, д.б.н., профессор, зав. кафедрой общей и медицинской биофизики медико-биологического факультета, зав. отделом медицинской биофизики ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. Телефон: 8 (495) 434-22-66, доб. 1410. Е-mail: anosipov@yahoo.com
Тесёлкин Юрий Олегович, д.б.н., главный научный сотрудник отдела медицинской биофизики, профессор кафедры общей и медицинской биофизики медико-биологического факультета ФГБОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. Телефон: 8 (495) 434-22-66, доб. 1411. Е-mail: teselkin-box@mail.ru

Для цитирования: Жамбалова Б.А., Носикова И.Н., Малушенко С.В., Максина А.Г., Ганковская Л.В., Доброхотова Ю.Э., Осипов А.Н., Теселкин Ю.О. Показатели оксидативного стресса у здоровых беременных женщин и беременных женщин с урогенитальной инфекцией на ранних сроках гестации.
Акушерство и гинекология. 2017; 9: 40-6.
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.9.40-6

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.