Поиск воспроизводимых биомаркеров для диагностики преэклампсии

Стародубцева Н.Л., Попов А.А., Николаев Е.Н., Иванец Т.Ю., Алексеева М.Л., Логинова Н.С., Николаева А.В., Вавина О.В., Сухих Г.Т.

1Федеральное бюджетное учреждение науки Институт энергетических проблем химической физики Российской академии наук; 2Федеральное бюджетное учреждение науки Институт биохимической физики им. Н. М. Эмануэля Российской академии наук; 3Московский физико-технический институт (Государственный университет); 4ФГБУ НЦ АГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России
В форме аналитического обзора литературы приводятся данные о проведенных на данный момент исследованиях с целью поиска биомаркеров для диагностики преэклампсии, в том числе на ранних стадиях развития патологии при отсутствии клинических проявлений. Приводятся панели маркеров, полученные как биохимическими, так и масс-спектрометрическими методами и включающие белки, пептиды, гликопротеиды и метаболиты сыворотки/плазмы крови и мочи. Среди множества данных биомаркеров отдельно отмечаются вещества (группы веществ) прошедшие длительную клиническую проверку на большом числе пациенток (более 200), показавшие высокие чувствительность и специфичность, хорошую воспроизводимость, а также возможность использования для оценки риска развития преэклампсии на ранних стадиях развития патологического состояния. Также делается вывод о том, что дополнительное применение ультразвуковых допплерографических методов исследования повышает точность диагностирования патологии, увеличивая не только чувствительность панели маркеров, но и специфичность теста.

Ключевые слова

преэклампсия
биомаркеры
артериальная гипертензия
ELISA
масс-спектрометрия
ультразвуковая допплерография

Преэклампсия – одно из самых опасных осложнений при беременности, проявляющееся повышением артериального давления (АД), протеинурией, появлением отеков конечностей. Обычно преэклампсия развивается во второй половине беременности, в конце II или в III триместре, хотя может отмечаться и раньше (после 18 нед беременности). В среднем 5–8% беременных женщин подвержены преэклампсии. В последние годы процент материнской смертности при развитии преэклампсии значительно снизился в развитых странах благодаря появлению адекватных методов терапии и постоянному мониторингу состояния женщины, однако артериальная гипертензия (АГ) остается основной причиной смертей среди беременных ежегодно, основной вклад в этот процент вносят развивающиеся страны [1]. При преэклампсии происходит нарушение кровоснабжения плаценты. Кроме того, клиническое ухудшение состояния женщин часто является показанием к преждевременному родоразрешению. Эклампсия – это последняя и самая тяжелая стадия преэклампсии; она возникает при отсутствии адекватного лечения, когда на фоне симптомов преэклампсии резко повышается АД, возникает выраженная головная боли, потеря сознания и судороги. Эклампсия может вызвать кому и даже смерть матери и плода. Появляется все больше доказательств, что у женщин с проявлением преэклампсии впоследствии выше риск возникновения сердечно-сосудистых заболеваний [2].

Для предотвращения развития преэклампсии, а затем и эклампсии крайне важно выявить данную патологию на ранней стадии развития, а также научиться отличать ее от других патологических состояний, сходных по клиническим признакам. Необходимость получения надежных тестовых систем для ранней диагностики преэклампсии была отмечена Всемирной Организацией Здравоохранения (ВОЗ), запустившей для этого в 2004 г. специальную программу [3].

После проведения систематизированного обзора опубликованных по данному синдрому результатов исследований и последующей оценке качества биомаркеров, ВОЗ констатировала, что «на данный момент отсутствует клинически достоверный и воспроизводимый тест для определения преэклампсии как для групп с предрасположенностью к синдрому (high risk – HR), так и для групп без предрасположенности к развитию патологии (low-risk – LR)».

Факторами риска развития преэклампсии являются следующие состояния: хроническая АГ, случаи преэклампсии в предыдущих беременностях, сахарный диабет, диабетическая нефропатия, мочекаменная болезнь, мембранозный гломерулонефрит, аутоиммунные заболевания, тромбофилия и серповидноклеточная анемия. За последние 7 лет было проведено множество исследований и найдено более 20 биомаркеров, проделано несколько метаанализов, но так и не было выявлено подходящего теста, позволяющего с высокой точностью диагностировать развитие преэклампсии до появления ее клинических симптомов [4, 5].

Определение преэклампсии

Впервые патологическая анатомия преэклампсии была описана более 100 лет назад, а исследование ее этиологии и патогенеза началось в 70-х гг. прошло- го века. Однако само определение этого состояния постоянно изменялось, и даже в современных работах встречаются расхождения. Большинство исследователей придерживаются определения, одобренного Международным обществом по изучению гипертонии при беременности. Преэклампсия диагностируется по повышению АД при двух замерах с интервалом более 6 ч у женщин с нормальным до этого момента давлением и наличию протеинурии [6]. В табл. 1 представлены различия между преэклампсией и другими заболеваниями, связанными с повышенным АД.

Таблица 1. Дифференциальный диагноз преэклампсии и других состояний, сопровождающихся повышением АД.

Таблица 2. Различия между умеренной и тяжелой формами преэклампсии.

Преэклампсия определяется как тяжелая в случае наличия у пациентки 2 первых признаков из табл. 2 (повышенное давление и протеинурия) и хотя бы одного из прочих признаков. Для минимизации ошибок при проведении исследования необходимо подробное указание всех клинических и социальных критериев пациентки, а также объединение этой информации в полуколичественную переменную «объективный клинический показатель тяжести преэклампсии» [7].

Патогенез преэклампсии

Симптомы преэклампсии не проявляются до 18-й нед беременности, но причины патологии связаны с реорганизацией спиралевидных артерий на 12-й нед беременности. Преэклампсия рассматривается как двухстадийное заболевание: стадия I относится к нарушениям при плацентации в начале беременности, а стадия II непосредственно связана с проявлением начальной стадии системной активации эндотелия и другими клиническими признаками во II–III триместрах [8]. Выделяют раннюю форму преэклампсии (проявляется во II триместре – после 18-й до 27-й нед) и позднюю форму. Было достоверно показано, что необходимым фактором проявления патологии является наличие плаценты (удаление плода без плаценты не приводит к исчезновению симптомов, только выскабливание матки ведет к быстрому и полному выздоровлению).

Основной структурной единицей плаценты являются ворсины хориона. Каждая ворсинка представлена сосудами плода, немногочисленными макрофагами и мезенхимальной соединительной тканью, окружена трофобластом. Трофобласт состоит из внутреннего слоя делящихся клеток цитотрофобласта (ЦТ) и непрерывного слоя многоядерных клеток синцитиотрофобласта (СТ), который покрывает всю поверхность ворсинок плаценты, образуя фетоплацентарный барьер. Клетки трофобласта синтезируют некоторые стероиды и гормоны (например, хорионический гонадотропин и плацентарный лактоген). Клетки цитотрофобласта дифференцируются в клетки синцитиотрофобласта, а начиная с 14-го дня имплантации, клетки CT проходят через барьер синцитиотрофобласта и дают начало новому типу клеток – вневорсинчатому трофобласту (ВВТ). Эти клетки внедряются в строму матки, образуя колонии. Двигаясь латерально от концов колоний, субпопуляции этих мобильных и инвазивных клеток достигают децидуальной оболочки и миометрия и активируют ремоделирование спиральных артерий. Субпопуляция клеток ВВТ мигрирует по артериям, заменяя эндотелиальные клетки. Это достигается за счет экспрессии молекул адгезии эндотелиальных клеток [9] и индукции трофобластом апоптоза эндотелия. Присутствующие в большом количестве в децидуальной оболочке клетки – естественные киллеры, также вызывают апоптоз клеток гладких мышц сосудов [10]. К концу I триместра спиральные артерии становятся широкими, неэластичными и рефрактерными к вазотропным влияниям. Нарушения в процессе ремоделирования спиральных артерий приводят к повреждению плаценты вследствие гипоксии и постоянного механического воздействия, связанного с сохранением высокой скорости движения крови и турбулентным характером ее течения, что приводит к некрозу тканей синтиоцитобласта и выделению продуктов некроза в материнскую кровь. Развивается системный воспалительный ответ, который, наряду с постоянной местной активацией материнского эндотелия, ведет к развитию симптомов преэклампсии [11].

Дифференцирование клеток CT в линии ST или EVT четко контролируется различными факторами, а именно гормонами, факторами транскрипции, цитокинами, факторами роста и уровнем кислорода. Транскрипционные факторы АР-1 семейства (Jun и Fos) и Hash-2 и Id-2 определяют дифференцирование трофобласта в инвазивный вневорсинчатый фенотип [12]. Было обнаружено, что экспрессия некоторых из этих факторов зависит от уровня O2 и cAMP. Низкий уровень кислорода (до 10-й нед гестации) стимулирует пролиферацию CT и подавляет дифференцировку клеток посредством модулирования экспрессии генов и стабильности mRNA [13]. Изменения в дифференцировке трофобласта приводят к нарушениям нормальноготечения беременности и проявлению различных патологических состояний, в частности преэклампсии. Показано, что постоянная гипоксия, совместно с повышением уровней фактора, индуцируемого гипоксией-1 (HIF-1) и фактора некроза опухоли а (TNF-α) [14] снижает образование ST-клеток, и, как следствие, ускоряет апоптоз трофобласта – одну из причин развития преэклампсии.

Поиск воспроизводимых биомаркеров

В наиболее ранних попытках поиска маркера преэклампсии была предложена оценка уровня мочевой кислоты в моче, однако этот тест не обладал достаточной чувствительностью и специфичностью. Следует отметить, что высокий уровень мочевины в крови при хронической АГ отмечается у женщин с повышенной вероятностью развития преэклампсии [15].

При исследовании качественных и количественных изменений белков крови в группе с преэклампсией по сравнению с группой пациенток с нормальным течением беременности было идентифицировано множество циркулирующих в крови факторов. Эти растворимые факторы связаны с нарушениями в реорганизации спиралевидных артерий на раннем этапе развития патологии и последующей эндотелиальной дисфункцией. Среди них – TNF-α, интерлейкин-1α (IL-1α), IL-1β, IL-6, факторы апоптоза (Fas-лиганд), продукты окисления липидов, нейрокинин В и ассиметричный диметиларгинин и антиангиогенные факторы: растворимая fms-подобная тирозин киназа-1 (sFlt-1) и эндоглин [16–19]. Следует отметить, что концентрации практически всех этих биомаркеров были измерены с помощью метода ELISA, причем данные различных исследований отличаются не только количественно, но и характеризуются различной динамикой – уменьшение/увеличение по сравнению с нормой. Это может быть связано с различием в специфичности применяемых антител, многокомпонентностью исследуемой биологической жидкости (в крови концентрации некоторых веществ могут различаться на 6 порядков), различием в методах подавления мажорных белков, а также недостаточностью самой выборки пациентов как в количественном аспекте, так и в отношении ее однородности.

В процессе ангиогенеза важная роль отводится фактору роста сосудистого эндотелия (VEGF) и плацентарному фактору роста (PlGF), которые экспрессируются клетками децидуального слоя. Данные факторы участвуют в реорганизации спиралевидных артерий и являются ключевыми компонентами регуляции пролиферации, дифференцировки и функционирования трофобласта. VEGF и PIGF оказывают свое действие благодаря наличию соответствующих рецепторов VEGFR-1 (Flt-1) и VEGFR-2. Экспрессия sFlt-1, антагониста VEGFR-1 и VEGFR-2 регулируется уровнем кислорода и повышается при моделируемой гипоксии плаценты (in vitro и in vivo) [20].

Увеличение концентрации sFlt-1 в материнской крови во II триместре коррелирует с риском развития преэклампсии [21, 22]. Отмечается более выраженное изменение уровней Flt-1 и PlGF в I триместре при развитии ранней преэклампсии, чем ее поздней формы [23]. Несмотря на высокую чувствительность (ЧВ=96%), отдельное определение sFlt-1 нельзя использовать при диагностике преэклампсии в связи с низкой специфичностью [24]. Достоверные изменения уровня PlGF при преэклампсии отмечаются уже в I [22, 25] или начале II триместра [26, 27]. Этот дисбаланс ангиогенных факторов после 25-й нед беременности у женщин с преэклампсией в анамнезе позволяет использовать соотношение sFlt-1/PlGF как новый биомаркер риска развития преэклампсии. В данный момент скрининговый тест европейской компании Roche (sFlt-1/PlGF) для диагностики преэклампсии во II триместре проходит процедуру регистрации в FDA. Коммерческий автоматизированный электрохемилюминесцентный иммунологический анализ (Elecsys sFlt-1 и PlGF) обладает высокой диагностической эффективностью (особенно при взятии пробы в I триместре беременности), а его отношение sFlt-1/PlGF позволяет диагностировать как раннюю, так и позднюю формы преэклампсии. При пороговом значении Flt-1/PlGF больше 45, ЧВ, СП при диагностике ранней/поздней преэклампсии равны 100%, 95 и 97, 95% соответственно [28]. Отмечено, что дополнительное определение уровня белка теплового шока Hsp70 позволяет повысить чувствительность диагностики преэклампсии [29].

Определение уровней sFlt-1, VEGF, PlGF и оценка их соотношения sFlt-1/PlGF были проведены также в моче беременных женщин. Обнаружено снижение уровня PlGF у пациенток с риском развития преэклампсии до появления симптомов [30]. По сообщению I. Buhimschi определение sFlt-1/PlGF в моче позволяет с 88% чувствительностью и 100% специфичностью дифференцировать женщин с тяжелой формой преэклампсии (требующей впоследствии искусственного прерывания беременности) [30].

Эндоглин является корецептором трансформирующего фактора роста (TGF-β1, -3) и регулирует тонус сосудов через взаимодействие с эндотелиальной синтетазой оксида азота (eNOS). Внеклеточный домен эндоглина (sEng) препятс- твует связыванию TGFβ1 с рецепторами на поверхности клеток, тем самым снижая действие оксида азота на эндотелий, что ингибирует ангиогенез и приводит к дисфункции сосуда. Уровень sFlt-1 значительно повышен в материнской плазме еще за 5 нед до появления признаков преэклампсии, тогда как повышение уровня sEng наблюдается немного раньше – за 2–3 мес до появления призна- ков патологии [31, 32]. Это позволяет предложить использовать sEng в комбинации с sFlt-1/PlGF, т.е. отношения (sFlt-1+sEng)/PlGF в качестве маркера для ранней диагностики развития преэклампсии (при взятии пробы на 13-й и 20-й нед беременности) [31]. Однако при диагностировании тяжелой формы преэклампсии (в случае, когда показано прерывание беременности) в III триместре отношение sFlt-1/PlGF в моче имеет более высокую специфичность и чувствительность, чем уровень sEng, и добавление sEng к тесту sFlt-1/PlGF не повышает диагностические качества теста [33].

Нейрокинин В (NKB) – плацентарный нейропептид с нейроэндокринной и антиангиогенными функциями. При беременности, осложненной преэлампсией, или при внутриутробной задержке роста плода (ВЗРП) значительное повышение уровня NKB в плазме на 33-й нед коррелирует с повышенным уровнем оксида азота, что может рассматриваться как компенсационный механизм, улучшающий кровоснабжение плаценты [34]. Группа Li и соавт. [35] в результате длительного эксперимента по изучению изменения концентрации NKB и эндотелина-1 в плазме в норме и при развитии преэклампсии в интервале от 12-й до 32-й нед беременности обнаружила значительное повышение концентраций этих факторов еще до развития патологического состояния. Это изменение было специфичным для преэклампсии по сравнению с АГ, связанной с беременностью. Однако специфичность маркера оказалась низкой при сравнении преэклампсии и ВЗРП [35].

Обнаружено, что у пациентов с преэклампсией начинают вырабатываться собственные антитела ко второй внеклеточной петле AT1 рецептора к ангиотензину II. Эти антитела не являются специфичными для преэклампсии и наблюдаются также при ВЗРП [36]. В ходе предварительных исследований получены данные, что антитела к АТ1 являются хорошим биомаркером для преэклампсии на поздней стадии развития беременности, тогда как sFlt-1 – на ранней стадии (I триместр) [37].

Количество возможных маркеров преэклампсии постоянно увеличивается и далее будут рассмотрены лишь те из них, которые упоминаются более чем в одной работе, в частности P-селектин, ADAM12, плацентарный белок 13 (PP13), пен- траксин 3 (Ptx3) и другие [26, 38, 39, 41, 42]. Еще до появления симптомов преэклампсии (11–15-я нед) происходит увеличение концентрации Р-селектина в плазме крови. Предпринятые попытки использования Р-селектина в комбинации с другими биомаркерами (активином А и VEGFR) не выявили высокой диагностической значимости (около 59% чувствительность при 95% специфичности) [38]. У женщин с ранней преэклампсией в анамнезе было отмечено выраженное снижение уровня плацентарного белка 13 (PP-13) в I триместре. При этом чувствительность и специфичность составили 79 и 90% соответственно [39]. Удалось добиться повышения эффективности этого теста (I триместр) при комбинировании его с пульсационным индексом маточных артерий во II триместре (чувствительность – 90%, специфичность – 94%) [40]. Компанией Diagnostic Technologies, разработан иммунологический тест к PP-13 для диагностики преэклампсии в I триместре. Этот тест уже одобрен в Европе и в данный момент проходит регистрацию в США.

Собрано немало данных о том, что уровни плацентарных гликопротеинов – ингибина А и актиина А – в плазме крови в III триместре повышаются при преэклампсии и АГ, связанной с беременностью [41]. При комбинации активина А, ингибина А и пульсационного индекса маточных артерий были получены высокие значения чувствительности и специфичности теста – 92 и 95% соответственно [41]. Петраксин 3 (Ptx3) – пептид, является воспалительной молекулой, экспрессируемой на амниотическом эпителии, мезодерме хориона, терминальных ворсинках трофобласта. Уровень Ptx3 достоверно повышен в 5–7 раз в течение всей беременности у женщин с преэклампсией в анамнезе [42]. Уровень внеклеточной ДНК плода cffDNA у 240 женщин на 17-й нед беременности до проявления признаков преэклампсии оказался в 2–5 раз выше, чем в контрольной группе [43]. Комбинация мембраносвязанной, цинк-зависимой протеазы ADAM12 в I триместре с пульсационным индексом маточных артерий во II триместре позволила добиться уровня детекции в 66% [44], что впоследствии не было подтверждено [45]. Было показано, что уровень фермента жировой ткани висфатина в плазме в III триместре достоверно снижается в 3–5 раз у женщин с тяжелой формой преэклампсии [46]. Отмечается также повышение уровня как адреномодулина в плазме, так и его мРНК в плаценте пациенток с преэклампсией в III триместре беременности [47]. Поскольку АМ обладает сосудорасширяющим действием, увеличение синтеза этого пептида может быть адапторным механизмом, компенсирующим повышение давления при преэклампсии.

Описанные выше результаты были получены с помощью иммуноферментных диагностических тест-систем (в основном ELISA). В клиническую практику также активно внедряются современные методы протеомного анализа с применением высокочувствительной масс-спектрометрической техники. Использование данного подхода позволило выявить в моче беременных женщин со сроком гестации более 28 нед более 50 кандидатных биомаркеров , среди которых идентифицированы фрагменты a-цепи фибриногена, a-цепи коллагена и уромодулина [48]. В лаборатории I. Buhimschi было проведено сходное исследование протеома мочи 284 женщин [49]. Показано, что панель из 13 пептидных маркеров позволяет со 100% чувствительностью и 73% специфичностью диагностировать тяжелую форму преэклампсии, при этом точность диагностирования с использованием новой панели биомаркеров оказалась выше, чем у отношения sFlt-1/PlGF.

Говоря о поиске биомаркеров для диагностирования преэклампсии нельзя не отметить две недавно опубликованные работы, авторы которых исследовали изменения протеомов сыворотки крови пациенток с преклампсией относительно контрольной группы [50–51]. Обе работы были проведены на сходных по клиническим признакам группах из 10 пациенток с применением одинаковых методов выделения и анализа (жидкостной хроматографии) белков из сыворотки крови. Результаты сопоставили с таковыми для количественного метода ELISA, в итоге обнаружены 62 и 51 маркер соответственно. Однако полное совпадение установлено только для 15 белков, из них концентрация шести белков в одной работе повышена при патологии, а в другой работе – снижена. Повышение концентрации в крови при преэклампсии обнаружено для SERPINA1, α - 2 - HS - гликопротеина (AHSG ) , α - 1 - микроглобулина (AMBP), кластерина β-цепи компонента комплемента C8, фактора комплемента Н, фибронектина; концентрация α-цепи C4b-связывающего белка и ретинол-связывающего белка 4 (RBP4), наоборот, снижена. AHSG и RBP4 вовлечены в метаболизм липидов и изменение их содержания в крови свидетельствует о тесной взаимосвязи нарушений в метаболизме липидов с развитием преэклампсии.

В качестве биомаркеров преэклампсии могут выступать не только белки, но и низкомолекулярные соединения. Группа L.C. Kenny определила комбинацию из 14 метаболитов (мочевина, 2-оксиглутарат, глутамат, аланин и др.) плазмы крови, позволяющих с высокой диагностической значимостью определять на ранних этапах (14–16 нед беременности) развитие патологического состояния как в случае ранней, так и поздней формы преэклампсии [52]. Определение метаболитов крови проводилось также и на более ранних сроках беременности (I триместр), и была выделена панель из 4 метаболитов (гидроксигексаноил- карнитин, аланин, фенилаланин и глутамат), позволяющих с довольно высокой степенью достоверности диагностировать преэклампсию [53]. Интересно отметить, что обнаруженные в этом исследовании биомаркеры отличаются от маркеров диагностической панели группы L.C. Kenny. Это подчеркивает необходимость стандартизации процедуры последующего поиска биомаркеров при исследовании метаболома в норме и патологии. Представляет также интерес исследование отношения уровней симметричного и ассимметричного диметиларгинина (ADMA), связанного с активностью NO-синтазы. Обнаружено, что уровень ADMA повышен в крови пациенток с патологией и коррелирует с эндотелиальной дисфункцией у женщин с преэклампсией [54]. Нарушения в экспрессии и активности фермента, деградирующего ADMA, и соответственное повышение уровня ADMA, снижение уровня L-карнитина и уменьшение экспрессии eNOS могут быть компенсационным механизмом для снижения биодоступности оксида азота в плаценте при развивающейся преэклампсии.

Морфологическим отражением поражения клубочков почки при преэклампсии является гломерулярный эндотелиоз, причиной которого является воздействие вазоконстрикторных факторов (эндотелина-1, sFlt-1 и др.) на эндотелиоциты капилляров клубочка. Наличие связи между уровнем экспрессии указанных белков и нарушениями проницаемости гломерулярного барьера предполагает возможность их использования как диагностических маркеров преэклампсии. Подобные исследования проводились для нефрина, подокалицина, синаптоподина, подоцина [55–57]. Результаты исследований выявили снижение экспрессии первых трех из указанных белков подоцитами (при изучении гистологических срезов) и увеличение их выделения с мочой. Взаимосвязь наблюдаемых изменений экспрессии белков подоцитов с патогенетическими механизмами преэклампсии была изучена в масштабном исследовании [55]. Было обнаружено снижение экспрессии нефрина и синаптоподина культурой подоцитов при воздействии на нее сывороткой, инкубированной со взвесью эндотелиальных клеток, полученных от больных преэклампсией. Повышение экспрессии эндотелина-1 отмечалось авторами при добавлении к взвеси эндотелиальных клеток sFlt-1, а также при использовании блокирующих антител к VEGF. Это может служить «связующим звеном» между протеинурией и генерализованным вазоспазмом при преэклампсии. Косвенно эти результаты подтверждены у 34 пациенток [56], у которых с помощью методов ELISA было обнаружено повышение содержания нефрина и подокалицина в моче женщин, страдающих преэклампсией, по сравнению с таковыми показателями у здоровых беременных и беременных с АГ. Вопрос о взаимосвязи нефринурии и повреждения подо- цитов поднят также в работе [54], где авторы методом вестерн-блоттинга определяли содержание нефрина в моче здоровых беременных и женщин с преэклампсией. Нефринурия детектировалась за 5 дней до манифестации протеинурии. Таким образом, выделение с мочой нефрина отражает активную фазу повреждения почечной паренхимы при преэклампсии, предшествуя манифестации повреждения гломерулярного барьера и появлению протеинурии. А сам этот белок может служить маркером повреждения при преэклампсии паренхимы почек.

Заключение

Подводя итог анализу опубликованных данных, представляется, что в настоящее время, несмотря на многочисленные попытки поисков биомаркеров для ранней диагностики угрозы развития преэклампсии, наиболее информативным является определение концентрации sFlt-1, PlGF и их соотношения. Такой подход позволяет с высокой чувствительностью (95–100%) и специфичностью (95–97%) выявлять угрозу развития преэклампсии в I и начале II триместра беременности. Кроме того, данные маркеры адекватно отражают патогенез ранней патологии.

Безусловный интерес представляет развитие методов протеомного анализа с применением высокочувствительной масс-спектрометрической техники. По всей вероятности, совершенствование этих подходов позволит идентифицировать информативные маркеры и внедрить в клиническую практику методы их определения.

Список литературы

1. Say L., Inoue M., Mills S., Suzuki E. Maternal mortality in 2005. Geneva: World Health Organization; 2005.
2. McDonald S.D., Malinowski A., Zhou Q., Yusuf S., Devereaux P.J. Cardiovascular sequelae of preeclampsia/eclampsia: a systematic review and meta-analyses. Am. Heart J. 2008; 156(5): 918 –30.
3. WHO/OMS. Programme of Work 2004–2008 of Department of Reproductive Health and Research. Geneva; 2003.
4. Meads C.A., Cnossen J.S., Meher S., Juarez-Garcia A., ter Riet G., Duley L. et al. Methods of prediction and prevention of pre-eclampsia: systematic reviews of accuracy and effectiveness literature with economic modelling. Health Technol. Assess. 2008; 12(6): iii–iv; 1-270.
5. Thangaratinam S., Coomarasamy A., Sharp S., O’Mahony F., O’Brien S., Ismail K.M., Khan K.S. Tests for predicting complications of pre-eclampsia: a protocol for systematic reviews. BMC Pregnancy Childbirth. 2008; 8: 38.
6. Brown M.A., Lindheimer M.D., de Swiet M., Van Assche A., Moutquin J.M. The classification and diagnosis of the hypertensive disorders of pregnancy: statement from the International Society for the Study of Hypertension in Pregnancy (ISSHP). Hypertens. Pregnancy. 2001; 20(1): IX–XIV.
7. Robinson C.J., Johnson D.D., Chang E.Y., Armstrong D.M., Wang W. Evaluation of placenta growth factor and soluble Fms-like tyrosine kinase 1 receptor levels in mild and severe preeclampsia. Am. J. Obstet. Gynecol. 2006; 195: 255-9.
8. Roberts J.M., Hubel C.A. The two stage model of preeclampsia: variations on the theme. Placenta. 2009; 30( Suppl. A): S32–7.
9. Zhou Y., Fisher S.J., Janatpour M., Genbacev O., Dejana E., Wheelock M., Damsky C.H. Human cytotrophoblasts adopt a vascular phenotype as they differentiate. A strategy for successful endovascular invasion? J. Clin. Invest. 1997; 99: 2139-51.
10. Quenby S., Farquharson R. Uterine natural killer cells, implantation failure and recurrent miscarriage. Reprod. Biomed. Online. 2006; 13: 24-8.
11. Kharfi A., Giguere Y., Sapin V., Masse J., Dastugue B., Forest J.C. Trophoblastic remodeling in normal and preeclamptic pregnancies: implication of cytokines. Clin. Biochem. 2003; 36: 323-31.
12. Janatpour M.J., Utset M.F., Cross J.C., Rossant J., Dong J., Israel M.A., Fisher S.J. A repertoire of differentially expressed transcription factors that offers insight into mechanisms of human cytotrophoblast differentiation. Dev. Genet. 1999; 25: 146-57.
13. Paulding W.R., Czyzyk-Krzeska M.F. Hypoxia-induced regulation of mRNA stability. Adv. Exp. Med. Biol. 2000; 475: 111-20.
14. Crocker I.P., Cooper S., Ong S.C., Baker P.N. Differences in apoptotic susceptibility of cytotrophoblast and syncytiotrophoblast in normal pregnancy to those complicated with preeclampsia and intrauterine growth restriction. Am. J. Pathol. 2003; 162: 637-43.
15. Koopmans C.M., van Pampus M.G., Groen H., Aarnoudse J.G., van den Berg P.P., Mol B.W. Accuracy of serum uric acid as a predictive test for maternal complications in pre-eclampsia: bivariate meta-analysis and decision analysis. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2009; 146(1): 8-14.
16. Benyo D., Smarason A., Redman C., Sims C., Conrad K. Expression of inflammatory cytokines in placentas from women with preeclampsia. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2001; 86: 2505-12.
17. Page N.M., Woods R.J., Gardiner S.M., Lomthaisong K., Gladwell R.T., Butlin D.J. et al. Excessive placental secretion of neurokinin B during the third trimester causes preeclampsia. Nature. 2000; 405 (6788): 797-800.
18. Savvidou M., Hingorani A., Tsikas D., Frolich J., Vallance P., Nicolaides K. Endothelial dysfunction and raised plasma concentrations of asymmetric dimethylarginine in pregnant women who subsequently develop pre-eclampsia. Lancet. 2003; 361: 1511-17.
19. Kim Y., Lee D., Jeong D., Sung M., Kim K. The relationship of the level of circulating antiangiogenic factors to the clinical manifestations of preeclampsia. Prenat. Diagn. 2009; 29: 464-70.
20. Ahmad S., Ahmed A. Elevated placental soluble vascular endothelial growth factor receptor-1 inhibits angiogenesis in preeclampsia. Circ. Res. 2004; 95: 884-91.
21. Chaiworapongsa T., Romero R., Kim Y.M., Kim G.J., Kim M.R., Espinoza J. et al. Plasma soluble vascular endothelial growth factor receptor-1 concentration is elevated prior to the clinical diagnosis of pre-eclampsia. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2005; 17(1): 3-18.
22. Herse F., Verlohren S., Wenzel K., Pape J., Muller D.N., Modrow S. et al. Prevalence of agonistic autoantibodies against the angiotensin II type 1 receptor and soluble fms-like tyrosine kinase 1 in a gestational age-matched case study. Hypertension. 2009; 53(2): 393-8.
23. Wikstrom A.K., Larsson A., Eriksson U.J., Nash P., Norden-Lindeberg S., Olovsson M. Placental growth factor and soluble FMS-like tyrosine kinase-1 in early-onset and late-onset preeclampsia. Obstet. Gynecol. 2007; 109: 1368-74.
24. Kenny L.C., Broadhurst D.I., Dunn W., Brown M., North R.A., McCowan L. et al. Screening for Pregnancy Endpoints Consortium. Robust early pregnancy prediction of later preeclampsia using metabolomic biomarkers. Hypertension. 2010; 56(4): 741-9.
25. Smith G.C., Crossley J.A., Aitken D.A., Jenkins N., Lyall F., Cameron A.D. et al. Circulating angiogenic factors in early pregnancy and the risk of preeclampsia, intrauterine growth restriction, spontaneous preterm birth, and stillbirth. Obstet. Gynecol. 2007; 109(6): 1316-24.
26. Levine R.J., Maynard S.E., Qian C., Lim K.H., England L.J., Yu K.F. et al. Circulating angiogenic factors and the risk of preeclampsia. N. Engl. J. Med. 2004; 350(7): 672-83.
27. Polliotti B.M., Fry A.G., Saller D.N., Mooney R.A., Cox C., Miller R.K. Second-trimester maternal serum placental growth factor and vascular endothelial growth factor for predicting severe, early-onset preeclampsia. Obstet. Gynecol. 2003; 101(6): 1266–74.
28. Ohkuchi A., Hirashima C., Suzuki H., Takahashi K., Yoshida M., Matsubara S., Suzuki M. Evaluation of a new and automated electrochemiluminescence immunoassay for plasma sFlt-1 and PlGF levels in women with preeclampsia. Hypertens. Res. 2010; 33(5): 422-7.
29. Molvarec A., Szarka A., Walentin S., Beko G., Karádi I., Prohászka Z., Rigó J. Jr. Serum heat shock protein 70 levels in relation to circulating cytokines, chemokines, adhesion molecules and angiogenic factors in women with preeclampsia. Clin. Chim. Acta. 2011; 412(21-22): 1957-62.
30. Buhimschi I., Norwitz E.R., Funai E., Richman S., Guller S., Lockwood C.J., Buhimschi I.A. Urinary angiogenic factors cluster hypertensive disorders and identify women with severe preeclampsia. Am. J. Obstet. Gynecol. 2005; 192(3): 734-41.
31. Levine R.J., Lam C., Qian C., Yu K.F., Maynard S.E., Sachs B.P. et al. Soluble endoglin and other circulating antiangiogenic factors in preeclampsia. N. Engl. J. Med. 2006; 355(10): 992-1005.
32. Romero R., Nien J.K., Espinoza J., Todem D., Fu W., Chung H. et al. A longitudinal study of angiogenic (placental growth factor) and anti-angiogenic (soluble endoglin and soluble vascular endothelial growth factor receptor-1) factors in normal pregnancy and patients destined to develop preeclampsia and deliver a small for gestational age neonate. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2008; 21(1): 9-23.
33. Buhimschi C.M., Baumbusch M.A., Dulay A.T., Lee S., Wehrum M., Zhao G. et al. The role of urinary soluble endoglin in the diagnosis of preeclampsia: comparison with soluble fms-like tyrosine kinase 1 to placental growth factor ratio. Br. J. Obstet. Gynaecol. 2010; 117(3): 321-30.
34. D’Anna R., Baviera G., Corrado F., Crisafulli A., Ientile R., Buemi M., Squadrito F. Neurokinin B and nitric oxide plasma levels in pre-eclampsia and isolated intrauterine growth restriction. Br.J. Obstet. Gynaecol. 2004; 111(10): 1046-50.
35. Li Z.M., Zhao Y., Chen Q., Zou L., Wang Z.H. Relationship between neurokinin B and endothelin-1 and hypertensive disorders complicating pregnancy. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2008; 43: 584-8.
36. Walther T., Wallukat G., Jank A., Bartel S., Schultheiss H.P., Faber R., Stepan H. Angiotensin II type 1 receptor agonistic antibodies reflect fundamental alterations in the uteroplacental vasculature. Hypertension. 2005; 46(6): 1275-9.
37. Herse F., Verlohren S., Wenzel K., Pape J., Muller D.N., Modrow S. et al. Prevalence of agonistic autoantibodies against the angiotensin II type 1 receptor and soluble fms-like tyrosine kinase 1 in a gestational age-matched case study. Hypertension. 2009; 53(2): 393-8.
38. Banzola I., Farina A., Concu M., Sekizawa A., Purwosunu Y., Strada I. et al. Performance of a panel of maternal serum markers in predicting preeclampsia at 11-15 weeks' gestation. Prenat. Diagn. 2007; 27(11): 1005-10.
39. Chafetz I., Kuhnreich I., Sammar M., Tal Y., Gibor Y., Meiri H. et al. First-trimester placental protein 13 screening for preeclampsia and intrauterine growth restriction. Am. J. Obstet. Gynecol. 2007; 197(1): 35; e1-7.
40. Nicolaides K.H., Bindra R., Turan O.M., Chefetz I., Sammar M., Meiri H. et al. A novel approach to first-trimester screening for early pre-eclampsia combining serum PP-13 and Doppler ultrasound. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2006; 27(1): 13-7.
41. Spencer K., Yu C.K., Savvidou M., Papageorghiou A.T., Nicolaides K.H. Prediction of pre-eclampsia by uterine artery Doppler ultrasonography and maternal serum pregnancy-associated plasma protein-A, free beta-human chorionic gonadotropin, activin A and inhibin A at 22 to 24 weeks’ gestation. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2006; 27: 658-63.
42. Rovere-Querini P., Antonacci S., Dell’Antonio G., Angeli A., Almirante G., Cin E.D. et al. Plasma and tissue expression of the long pentraxin 3 during normal pregnancy and preeclampsia. Obstet. Gynecol. 2006; 108(1): 148-55.
43. Levine R.J., Qian C., Leshane E.S., Yu K.F., England L.J., Schisterman E.F. et al. Two-stage elevation of cell-free fetal DNA in maternal sera before onset of preeclampsia. Am. J. Obstet. Gynecol. 2004; 190(3): 707-13.
44. Spencer K., Cowans N.J., Stamatopoulou A. ADAM12s in maternal serum as a potential marker of pre-eclampsia. Prenat. Diagn. 2008; 28: 212-6.
45. Poon L.C., Chelemen T., Granvillano O., Pandeva I., Nicolaides K.H. First-trimester maternal serum a disintegrin and metalloprotease 12 (ADAM12) and adverse pregnancy outcome. Obstet. Gynecol. 2008; 112: 1082-90.
46. Hu W., Wang Z., Wang H., Huang H., Dong M. Serum visfatin levels in late pregnancy and pre-eclampsia. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2008; 87: 413-8.
47. Zenna A.A., Zedan M., el-Salam G.E., el-Mashad A.I. Study of plasma adrenomedullin level in normal pregnancy and preeclampsia. Medscape J. Med. 2008; 10(2): 29.
48. Poon L.C., Kametas N.A., Maiz N., Akolekar R., Nicolaides K.H. First-trimester prediction of hypertensive disorders in pregnancy. Hypertension. 2009; 53: 812-8.
49. Buhimschi I.A., Zhao G., Funai E.F., Harris N., Sasson I.E., Bernstein I.M. et al. Proteomic profiling of urine identifies specific fragments of SERPINA1 and albumin as biomarkers of preeclampsia. Am. J. Obstet. Gynecol. 2008; 199(5): 551; e1-16.
50. Park J., Cha D.H., Lee S.J., Kim Y.N., Kim Y.H., Kim K.P. Discovery of the serum biomarker proteins in severe preeclampsia by proteomic analysis. Exp. Mol. Med. 2011; 43(7): 427-35.
51. Liu C., Zhang N., Yu H., Chen Y., Liang Y., Deng H., Zhang Z. Proteomic analysis of human serum for finding pathogenic factors and potential biomarkers in preeclampsia. Placenta. 2011; 32(2): 168-174.
52. Kenny L.C., Broadhurst D.I., Dunn W. et al. Screening for Pregnancy Endpoints Consortium. Robust early pregnancy prediction of later preeclampsia using metabolomic biomarkers. Hypertension. 2010; 56(4): 741-9.
53. Odibo A.O., Goetzinger K.R., Odibo L., Cahill A.G., Macones G.A., Nelson D.M., Dietzen D.J. First-trimester prediction of preeclampsia using metabolomic biomarkers: a discovery phase study. Prenat. Diagn. 2011; 31(10): 990-4.
54. Anderssohn M., Maas L.M., Diemert A. Severely decreased activity of placental dimethylarginine dimethylaminohydrolase in pre-eclampsia. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2012; 161(2): 152-6.
55. Collino F., Bussolati B., Gerbaudo E., Marozio L., Pelissetto S., Benedetto C., Camussi G. Preeclamptic sera induce nephrin shedding from podocytes through endothelin-1 release by glomerular endothelial cells. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 2008; 294(5): F1185-94.
56. Wang Y., Zhao S., Loyd S., Groome L.J. Increased urinary excretion of nephrin, podocalyxin, and βig-h3 in women with preeclampsia. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 2012; 302(9): F1084-9.
57. Son G.H., Kim J.H., Hwang J.H., Kim Y.H., Park Y.W., Kwon J.Y. Urinary excretion of nephrin in patients with severe preeclampsia. Urinary nephrin in preeclampsia. Hypertens. Pregnancy. 2011; 30(4): 408-13.

Об авторах / Для корреспонденции

Стародубцева Наталия Леонидовна, кандидат.биологических.наук., научный сотрудник лаборатории ионной и молекулярной физики
ФБУН ИНЭП ХФ РАН
Адрес: 119334 Москва, Ленинский просп., 38, корп. 2
Телефон: (8-499) 137-8258
E-mail: snl_1985@yandex.ru
Попов Игорь Алексеевич, к.ф-м.н., старший научный сотрудник лаборатории масс-спектрометрии биомакромолекул
ФБУН ИБХФ им. Н.М.Эмануэля РАН
Адрес: 119934, г. Москва, ул. Косыгина, д. 4
Телефон: (8-499) 137-4101;
E-mail: hexapole@gmail.com
Николаев Евгений Николаевич, д.ф-м.н., заведующий лабораторией масс-спектрометрии биомакромолекул
ФБУН ИБХФ им. Н.М.Эмануэля РАН
Адрес: 119934, г. Москва, ул. Косыгина, д. 4
Телефон: (8-499) 137-4101;
профессор МФТИ (ГУ)
Адрес: 141700 Долгопрудный Московской области, Институтский пер., д. 9
Телефон: (8-495) 408-5677
E-mail: ennikolaev@rambler.ru
Иванец Татьяна Юрьевна, кандидат.медицинских.наук., заведующая. научно-диагностической лабораторией
ФГБУ НЦ АГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России
Адрес: 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4
Телефон/факс: (8-495)-438-25-66, моб.(8-910) 404-26-69
E-mail: t_ivanets@oparina4.ru
Алексеева Марина Леонидовна, кандидат.биологических.наук., cтарший.научный.cотрудник. научно-диагностической лаборатории
ФГБУ НЦ АГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России
Адрес: 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4
Телефон: (8-495)-438-25-77
Логинова Наталья Сергеевна, кандидат.биологических.наук., врач-лаборант лаборотории. клинической иммунологии
ФГБУ НЦ АГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России
Адрес: 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4
Телефон: (8-495)-438-11-83
Николаева Анастасия Владимировна, кандидат медицинских наук, заведующая по клинической работе отделения патологии беременности ФГБУ НЦ АГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России
Адрес: 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.Телефон:8(495)438-06-74. E-mail: a_nikolaeva@oparina4.ru
Вавина Ольга Владимировна, клинический ординатор ФГБУ НЦ АГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России
Адрес: 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Сухих Геннадий Тихонович, доктор медицинских наук, профессор, академик РАМН, директор ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-18-00. E-mail: g_sukhikh@oparina4.ru

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.