ISSN 0300-9092 (Print)
ISSN 2412-5679 (Online)

Окислительный стресс у женщин с гиперпролиферативными заболеваниями: негормональные возможности коррекции

Крикунова Л.И., Мкртчян Л.С., Замулаева И.А., Якимова А.О., Дзиковская Л.А., Дегтярева Е.С., Беспалов П.Д., Салпагарова А.В., Хайлова Ж.В., Иванов С.А., Каприн А.Д.

1) Медицинский радиологический научный центр имени А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России, Обнинск, Россия; 2) ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов», Москва, Россия; 3) Московский научно-исследовательский онкологический институт имени П.А. Герцена – филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России, Москва, Россия; 4) ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России, Москва, Россия

Цель: Изучение результатов негормонального лечения женщин с гиперпролиферативными заболеваниями репродуктивной системы и щитовидной железы и оценка показателей окислительно-восстановительной системы.
Материалы и методы: В исследование были включены женщины с гиперпролиферативной патологией молочных и щитовидной желез, заболеваниями женских половых органов, проживающие на загрязненных радионуклидами вследствие аварии на Чернобыльской АЭС территориях. Изучена ультразвуковая динамика патологического процесса на фоне приема биологически активной добавки, состоящей из индол-3-карбинола 200 мг и лигнанов льна 200 мг (NOW Супер индол-3-карбинол с лигнанами). Выполнена оценка состояния окислительно-восстановительной системы до и после лечения по критерию общей антиоксидантной активности плазмы и содержанию в крови малонового диальдегида, являющегося биомаркером окислительного стресса (перекисного окисления липидов), проведено сравнение указанных показателей с таковыми у здоровых лиц сходного возраста.
Результаты: Применение комплекса индол-3-карбинола 200 мг и лигнанов льна 200 мг в течение 60 дней способствовало регрессу новообразований с увеличением количества случаев ВI-RADS1 (p<0,001) и TI-RADS1 (p<0,001). Негормональное лечение привело к снижению концентрации малонового диальдегида с 52,2 мкМ/л до 44,2 мкМ/л по медиане (p=0,0005) и повышению уровня общей антиоксидантной активности с 310 мкМ/л ТЭ до 425 мкМ/л ТЭ по медиане (p=0,0009). После окончания лечения значимых различий с показателями здоровых лиц не обнаружено (p=0,566 и p=0,230 соответственно). 
Заключение: Таким образом, комплекс индол-3-карбинола 200 мг и лигнанов льна 200 мг (NOW Супер индол-3-карбинол с лигнанами) показал эффективность в качестве негормонального лечения женщин с сочетанной гиперпролиферативной патологией с нормализацией показателей окислительно-восстановительной системы, что может явиться основой первичной профилактики злокачественных новообразований.

Вклад авторов: Каприн А.Д., Иванов С.А., Замулаева И.А., Мкртчян Л.С. – концепция и дизайн исследования; Салпагарова А.В., Дзиковская Л.А., Дегтярева Е.С., Беспалов П.Д. – сбор и обработка материала; Мкртчян Л.С., Замулаева И.А., Якимова А.О. – статистическая обработка данных; Мкртчян Л.С., Замулаева И.А., Якимова А.О. – написание текста; Замулаева И.А., Крикунова Л.И., Хайлова Ж.В. – редактирование. 
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование: Исследование проведено без спонсорской поддержки.
Согласие пациентов на публикацию: Все пациенты подписали добровольное информированное согласие на участие 
в исследовании.
Обмен исследовательскими данными: Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу 
у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.
Для цитирования: Крикунова Л.И., Мкртчян Л.С., Замулаева И.А., Якимова А.О., Дзиковская Л.А., Дегтярева Е.С., Беспалов П.Д., Салпагарова А.В., Хайлова Ж.В., Иванов С.А., Каприн А.Д. 
Окислительный стресс у женщин с гиперпролиферативными заболеваниями: 
негормональные возможности коррекции.
Акушерство и гинекология. 2024; 10: 138-146
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2024.242

Ключевые слова

окислительный стресс
гиперпролиферативные заболевания
рак молочной железы
рак щитовидной железы
индол
лигнаны
вирус папилломы человека (ВПЧ)
малоновый диальдегид

Окислительный стресс описывается как дисбаланс между оксидантной и антиоксидантной системами, который может возникнуть либо из-за производства избыточного количества активных форм кислорода (АФК), либо из-за недостаточной эффективности антиоксидантных механизмов. В последние годы многие авторы отмечают, что окислительный стресс связан с патогенезом ряда заболеваний и состояний (онкологические, сердечно-сосудистые и нейрологические заболевания, диабет, старение, физическая слабость пожилых лиц), если не в качестве основной причины болезни, то по крайней мере как отягощающий фактор [1–4]. В контексте нашего исследования важно заметить, что окислительный стресс является важнейшим фактором развития опухолей женской репродуктивной системы [5]. В частности, он участвует в развитии всех стадий опухолевого процесса и, более того, относится к основным механизмам цитотоксического действия радио- и химиотерапии злокачественных новообразований [6]. На ранних стадиях канцерогенеза АФК стимулируют сигнальные пути клеточного стресс-ответа, прямо индуцируют повреждения ДНК, генетические и эпигенетические изменения. Кроме того, окислительный стресс может приводить к повреждениям ДНК через модуляцию активности ферментов, участвующих в ремоделировании хроматина, путем модификации гистоновых белков и изменения биогенеза микроРНК. Во время прогрессирования опухолевого процесса АФК играют заметную роль в усилении метастатического потенциала первичной опухоли, например, за счет повышения экспрессии металлопротеиназ – ферментов, облегчающих инвазию опухолевых клеток [7]. На более поздних стадиях опухолевые клетки приобретают повышенную способность противостоять окислительному стрессу и сохранять жизнеспособность, усиливая механизмы антиоксидантной защиты, что снижает эффективность противоопухолевой терапии. Установлено, что особенно эффективной антиоксидантной защитой обладают опухолевые стволовые клетки; эта особенность, наряду с другими механизмами, обеспечивает выживание последних после противоопухолевой терапии и рецидивирование заболевания у части больных [8].

В этом аспекте представляет интерес состояние здоровья лиц, подвергшихся радиационному воздействию. По данным литературы, у женской части населения территорий Российской Федерации, загрязненных радионуклидами вследствие аварии на Чернобыльской АЭС (ЧАЭС), наблюдается высокий уровень встречаемости гиперпролиферативных заболеваний женских половых органов, щитовидной железы (ЩЖ) и молочных желез (МЖ), причем в 33,7% случаев – в виде сочетанной патологии [9]. Повышенный риск развития новообразований может быть связан, в том числе, с интенсификацией окислительного стресса вследствие воздействия на организм комплекса экологических, психологических и социально-экономических факторов [10]. Авторы сообщают о значимой положительной корреляции уровня общепринятого маркера окислительного стресса – малонового диальдегида (МДА) в плазме крови жительниц радиационно-загрязненных районов Калужской и Брянской областей (спустя 28–30 лет после аварии на ЧАЭС) с возрастом, индексом массы тела (ИМТ) и наличием доброкачественных новообразований женских половых органов, МЖ и ЩЖ или их сочетаний, по сравнению со здоровыми лицами, проживающими на «чистых» территориях.

Существенная роль окислительного стресса в развитии и прогрессировании опухолевого процесса определяет возрастающий интерес исследователей, с одной стороны, к выяснению закономерностей и механизмов формирования окислительно-восстановительного баланса в организме, а с другой стороны – к разработке методов коррекции состояния окислительно-восстановительной системы в целях профилактики и лечения основного заболевания или побочных осложнений противоопухолевой терапии и повышения качества жизни онкологических больных [5]. Особое внимание привлекает проблема контроля окислительного стресса в ходе вирусного канцерогенеза, поскольку имеются данные о влиянии вирусов папилломы человека (ВПЧ) на многочисленные процессы и сигнальные пути, связанные с регуляцией окислительно-восстановительного баланса [11, 12]. Известно много попыток (в том числе клинических испытаний), связанных с использованием различных антиоксидантов в составе лекарственных препаратов, биологически активных добавок (БАД) и пищевых продуктов, но полученные результаты неоднозначны [1, 2].

Было установлено, что такие природные соединения, как индолы и лигнаны, благодаря своей антиоксидантной активности нормализуют редокс-статус организма и могут ингибировать канцерогенез, регулируя многочисленные клеточные сигнальные пути [13–17]. Индолы – это гетероциклические соединения, которые являются биологически активным компонентом крестоцветных овощей (брокколи, брюссельская капуста, цветная капуста и др.) [18]. Дериваты – индол-3-карбинол и дииндолилметан, по данным целого ряда исследователей, обладают такими биологическими свойствами, как ингибирование воспаления и ангиогенеза, снижение пролиферации, индукция апоптоза и ускорение гибели опухолевых клеток, супрессия окислительного стресса, и являются перспективными антиканцерогенными и антиоксидантными нутрицевтиками [20, 21]. В настоящее время индол-3-карбинол входит в стандарты лечения доброкачественной дисплазии молочных железы (ДДМЖ) при циклической мастодинии [22], а дииндолилметан – цервикальных интраэпителиальных неоплазий [23] с целью ускорения элиминации ВПЧ-инфицированных клеток и повышения вероятности регрессии диспластических изменений шейки матки [24].

Природные лигнаны представляют собой группу вторичных метаболитов – матаирезинол, гидроксиматаирезинол, пинорезинол и секоизоларицирезинол, которые усваиваются главным образом из цельных зерновых, семян, орехов, бобовых, фруктов, овощей, чая, кофе и вина [25]. Ингибируя клеточный цикл (фазы G1 и G2/M) и индуцируя апоптоз, лигнаны оказывают антипролиферативное действие и обладают не только противоопухолевым эффектом, но и рядом многообещающих свойств, включая антибактериальную, противовирусную, антитромбоцитарную, антианемическую, антиоксидантную и иммуносупрессивную активности [26–31]. Результаты исследований показывают ассоциативную связь потребления продуктов льна со снижением риска развития рака молочной железы (РМЖ) и прогрессирования заболевания после специализированного лечения [32, 33]. Дериваты лигнанов, влияя на профиль эстрогеновых метаболитов (снижение эстрадиола, эстрона, эстриола, 16а-ОНЕ1), способствуют уменьшению клинических проявлений, а также опухолевых рисков, связанных с гиперэстрогенией при ДДМЖ [34],

С учетом особого психологического состояния лиц, пострадавших вследствие чернобыльской катастрофы – радио- и гормонофобии [35], терапевтический противоопухолевый потенциал подобных биологически активных соединений благодаря высокой комплаентности, доступности и низкой токсичности может явиться приемлемым негормональным подходом и перспективной альтернативой лечения гиперпролиферативных заболеваний с целью реализации, в том числе вторичной профилактики злокачественных новообразований.

Противоречивость результатов, отмечаемая в последних обзорах на тему окислительного стресса и использования антиоксидантов, по всей видимости, связана с плейотропным действием АФК не только в качестве повреждающих агентов, но и регуляторов основных биологических процессов, таких как пролиферация клеток, дифференцировка, репарация повреждений ДНК, адаптация к меняющимся условиям внешней среды [21]. Конечный эффект использования антиоксидантов будет зависеть от содержания про- и антиоксидантных факторов, а также их соотношения. Поэтому вполне обоснованно отмечается, что для правильного применения антиоксидантов важно учитывать индивидуальный баланс АФК и факторов антиоксидантной защиты с учетом особенностей заболевания, а также проводить мониторинг состояния окислительно-восстановительной системы в ходе лечения [6].

В данной работе проведено изучение ультразвуковой динамики гиперпролиферативной патологии репродуктивной системы и ЩЖ на фоне применения БАД, состоящей из индол-3-карбинола 200 мг и лигнанов льна 200 мг (NOW Супер индол-3-карбинол с лигнанами) у женщин, проживающих на загрязненных вследствие аварии на ЧАЭС территориях Российской Федерации; выполнена оценка состояния окислительно-восстановительной системы в крови пациенток до и после лечения по критерию общей антиоксидантной активности (ОАА) плазмы и содержанию МДА, являющегося биомаркером окислительного стресса (перекисного окисления липидов); исследуемые показатели были сопоставлены с таковыми у здоровых лиц сходного возраста.

Материалы и методы

В исследование включены 30 женщин с гиперпролиферативными заболеваниями, проживающих на загрязненных в результате Чернобыльской аварии территориях Тульской, Липецкой и Орловской областей. Всем больным в условиях МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России проводилось комплексное обследование, включающее ультразвуковое исследование (УЗИ) МЖ и ЩЖ, органов малого таза, гинекологический осмотр, осмотр специалистов (маммолога, гинеколога и эндокринолога); по показаниям выполнялись маммография, магнитно-резонансная томография, пункция новообразований МЖ и/или ЩЖ. Для адекватной трактовки результатов инструментальной диагностики использовались стандартизированные шкалы оценки МЖ – BI-RADS (Breast Imaging Reporting and Data System) [36], ЩЖ – TI-RADS (Thyroid Imaging, Reporting and Data System) [37], миоматозных образований матки – PALM-COEIN (согласно классификации FIGO, International Federation of Gynecology and Obstetrics) и яичников – O-RADS (Ovarian-Adnexal Imaging, Reporting and Data System) [38, 39].

Критериями включения являлись: наличие фиброзно-кистозной мастопатии (шифр по МКБ.10 N60 «Доброкачественная дисплазия молочной железы») в сочетании с доброкачественными новообразованиями ЩЖ с/без эстрогензависимой гинекологической патологией; отсутствие злокачественного новообразования; подписанное информированное согласие.

Лечение предполагало пероральный прием комплекса индол-3-карбинола 200 мг и лигнанов льна 200 мг (NOW Супер индол-3-карбинол с лигнанами), 1 капсула в сутки в течение 60 дней.

Оценка эффективности лечения проводилась на сроке 3 месяца в соответствии с критериями RECIST [40]. Степень масталгии пациенток оценивалась по визуально-аналоговой шкале, приверженность к проводимой терапии – по шкале Morisky–Green [41].

В группу контроля вошли 20 условно здоровых женщин сходного возраста, которые проживали на не загрязненной радионуклидами территории и являлись сотрудниками МРНЦ им. А.Ф. Цыба или постоянными донорами крови, зарегистрированными в отделении трансфузиологии этой организации. По данным комплексного обследования, проведенного в условиях МРНЦ им. А.Ф. Цыба по вышеописанной схеме, у женщин отсутствовала патология ЩЖ и МЖ и не было зарегистрировано гинекологических гиперпролиферативных заболеваний.

Средний возраст [M (SD)] в группе пациенток составил 46,6 (6,8) года, в контрольной группе – 45,7 (8,1) года.

Определение ОАА плазмы периферической крови

ОАА плазмы крови определяли в группе контроля однократно, в группе больных – двукратно (до и после лечения). Анализ выполняли с использованием АБАП (2,2'-азобис(2-метилпропионамидин), флуоресцеина и тролокса (6-гидрокси-2,5,7,8-тетраметилхроман-2-карбоновая кислота) по методике Marimoutou [42] с рядом модификаций.

К 5 мкл плазмы крови добавляли 165 мкл раствора Хэнкса, 20 мкл раствора флуоресцеина (100 мкМ), затем 10 мкл раствора АБАП (100 мМ). Пробы инкубировали 45 минут при 25°С, после чего измеряли флуоресценцию при длине волны 528 нм (λвозбуждения составляла 485 нм). Антиоксидантные свойства образца определяли по калибровочной прямой, построенной с использованием тролокса в диапазоне концентраций от 0 до 12 мкМ, и выражали в мкМ тролокс-эквивалента (ТЭ).

Определение МДА в плазме крови

Как и в случае ОАА, концентрацию МДА определяли в группе контроля однократно, в группе больных – двухкратно (до и после лечения). Определение МДА осуществлялось по модифицированной нами методике Темирбуланова Р.А. и Селезнева Е.Н. [43, 44].

К образцу плазмы (0,1 мл) добавляли 0,251 мл 0,01 М фосфатного буфера, рН 6,8–7,0, содержащего 0,125 М КСl, и 0,083 мл 1 mM KMnO4. Смесь инкубировали в течение 10 минут, затем вносили 0,083 мл 10 mM FeSO4*7H2O и инкубировали еще 5 минут. К реакционной смеси приливали 1,2 мл 20% трихлоруксусной кислоты, 0,6 мл 1 N HCl и 1,2 мл 0,67% тиобарбитуровой кислоты (ТБК). Смесь перемешивали, прогревали в течение 20 минут в кипящей водяной бане. После охлаждения центрифугировали 15 минут при 2000 об/мин. Оптическую плотность супернатанта определяли при 532 нм. Концентрацию ТБК-продуктов рассчитывали по данным определения оптической плотности, учитывая, что молярный коэффициент экстинкции этих продуктов составляет 156 000 моль-1 см-1.

Статистический анализ

Обработку данных по МДА и ОАА проводили с использованием программного обеспечения Statistica 10 (StatSoft., Inc.), графики строили в программе Excel 2016 (MicroSoft Corp.). Анализ соответствия вида распределения признаков (возраста, содержания МДА и ОАА) закону нормального распределения осуществляли по критерию Шапиро–Уилка. Поскольку распределение возраста обследованных лиц в обеих группах не отличалось от нормального (р=0,180 в группе пациентов и р=0,138 в контрольной группе), то для описательной статистики этого признака использовали среднее значение в формате M (SD). Распределение другого признака (концентрация МДА) соответствовало нормальному в группах пациентов до лечения (р=0,095) и после него (р=0,211), однако в контрольной группе вид распределения отличался от нормального (р<0,001). Распределение ОАА соответствовало нормальному в группе пациентов до лечения (р=0,399), но в остальных группах отличалось от нормального: в группе пациентов после лечения р=0,006, в группе контроля р=0,006. Поскольку данные по МДА и ОАА не во всех сравниваемых группах соответствовали нормальному распределению, для описательной статистики этих признаков были использованы медиана (Me) и интерквартильный интервал (Q1; Q3).

Групповое сравнение полученных данных проводили по критерию Краскелла–Уоллеса (Kruskal–Wallis ANOVA). Критерий Манна–Уитни (Mann–Whitney U test) использовали для сравнения независимых групп (контроль vs группа пациентов), критерий Вилкоксона – для сравнения связанных групп пациентов до и после лечения. Сравнительный анализ бинарных переменных проводился с помощью критерия МакНемара. Различия считали статистически значимыми при р<0,05.

Результаты

Оценка эффективности негормонального лечения гиперпролиферативных заболеваний

По результатам обследования у всех 30/30 (100%) женщин была зарегистрирована сочетанная патология МЖ (фиброзно-кистозная мастопатия – у 8, узловые формы мастопатии – у 24) и ЩЖ (одиночный узел – у 3, множественные узлы – у 27), у 25/30 (83,3%) имели место гинекологические заболевания (миома матки с/без внутреннего эндометриоза – у 24, эндометриоидная киста яичника – у 2).

При динамическом УЗИ МЖ картине BI-RADS 1 через 3 месяца от начала лечения соответствовало уже 23/30 (76,7%) пациенток (p<0,0001), в основном за счет регрессии патологических процессов, соответствующих BI-RADS 2 (p<0,0001) (рис. 1). Патология BI-RADS 3 сохранялась лишь в 4/30 (13,3%) случаях, а BI-RADS 4 не было ни в одном (р>0,05). У подавляющего большинства женщин отмечено снижение интенсивности мастодинии (73,3%) с полным исчезновением болевого синдрома (6%).

142-1.jpg (45 KB)

Мониторинг женщин с новообразованиями ЩЖ показал увеличение случаев TI-RADS 1 до 23/30 (76,6%) и уменьшение TI-RADS 2 с 24/30 (80,0%) до 4/30 (13,3%), в обоих случаях результаты оказались статистически значимыми (p<0,001) (рис. 2).

При оценке результатов УЗИ уменьшение балла по шкале O-RADS и FIGO отмечалось лишь у 1/25 (4%) больных (р>0,05), однако по шкале RECIST частичная регрессия наблюдалась в 14/25 (56,0%) случаях (р=0,003); увеличение миоматозного узла зарегистрировано только у 1/25 (4%) пациентки. Нормализацию менструального цикла отметили 7/18 (38,9%) пациенток с ациклическими кровянистыми выделениями (p<0,001) и 5/12 (42,7%) – с дисменореей (р=0,009).

Необходимо отметить, что в целом, эффективность негормональной терапии – полная или частичная регрессия одного или более новообразований представленных локализаций – отмечена во всех 30/30 случаях (100%). Наиболее выраженными оказались результаты лечения 4 женщин с гиперпролиферативными заболеваниями всех трех локализаций – МЖ, ЩЖ и матки: после лечения отмечена полная регрессия новообразований и скачкообразное позитивное изменение показателей окислительно-восстановительной системы (рис. 3).

143-1.jpg (146 KB)

Побочные реакции в виде тошноты отмечены у 2/30 (3,3%) женщин, приверженность к лечению 4 балла по шкале Morisky–Green – у 25/30 (83,3%).

Оценка показателей окислительно-восстановительной системы

Результаты оценки показателей окислительно-восстановительной системы представлены на рисунке 4 с указанием уровня статистической значимости отличий между группами по критериям Манна–Уитни и Вилкоксона. Уровни значимости отличий по Kruskal–Wallis ANOVA приведены в таблице.

144-1.jpg (75 KB)

Согласно полученным данным, гиперпролиферативные заболевания ассоциированы со статистически значимым повышением концентрации МДА в плазме крови пациенток относительно таковой у здоровых женщин сходного возраста (p=0,021 по критерию Манна–Уитни). Медиана концентрации МДА в плазме крови в группе пациенток до лечения составила 52,2 (47,4; 60,4) мкМ/л против 43,2 (41,3; 49,7) мкМ/л в группе здоровых лиц. Причем наличие указанных заболеваний ассоциировано с некоторым снижением уровня ОАА плазмы: медиана данного показателя составила 310 (261; 432) мкМ/л ТЭ в группе пациенток до лечения против 401 (271; 536) мкМ/л ТЭ в контрольной группе. Однако отличия в уровне ОАА плазмы в данном случае не являются статистически значимыми, что может быть связано с высокой вариабельностью данного показателя у женщин контрольной группы.

Примечательно, что прием комплекса индол-3-карбинола 200 мг и лигнанов льна 200 мг в течение 60 дней в группе пациенток с гиперпролиферативными заболеваниями приводит к статистически значимому изменению обоих показателей в сторону нормализации. Так, медиана концентрации МДА в плазме крови пациенток снижается после курса лечения с 52,2 (47,4; 60,4) мкМ/л до 44,2 (39,0; 55,0) мкМ/л (p=0,0005 по критерию Вилкоксона), а уровень ОАА плазмы повышается c 310 (261; 432) мкМ/л ТЭ до 425 (359; 602) мкМ/л ТЭ (p=0,0009 по критерию Вилкоксона). В обоих случаях значения исследованных показателей после курса лечения не отличаются от таковых в группе здоровых женщин (p=0,566 для МДА, p=0,230 для ОАА по критерию Манна–Уитни).

Заключение

Таким образом, применение комплекса индол-3-карбинола 200 мг и лигнанов льна 200 мг (NOW Супер индол-3-карбинол с лигнанами) у больных с сочетанной патологией МЖ и ЩЖ с/без эстрогензависимых гинекологических заболеваний показало его высокую комплаентность, а также способствовало уменьшению/исчезновению новообразований, что влияло на качество жизни больных в виде нивелирования болевого синдрома и/или нормализации менструального цикла. Полученные данные лабораторных исследований указывают на возможность использования комплекса индол-3-карбинола 200 мг и лигнанов льна 200 мг (NOW Супер индол-3-карбинол с лигнанами) у женщин с гиперпролиферативными заболеваниями для снижения уровня перекисного окисления липидов, повышения ОАА и, в конечном итоге, для нормализации окислительно-восстановительного баланса в организме, что является залогом профилактики злокачественных новообразований. Полученные результаты могут быть перспективными и в отношении новых лечебных стратегий ВПЧ-ассоциированных новообразований, особенно с учетом данных о потенциальном участии ВПЧ в канцерогенезе патологических изменений ЩЖ и МЖ.

Список литературы

  1. Lambring C.B., Chen L., Nelson C., Stevens A., Bratcher W., Basha R. Oxidative stress and cancer: harnessing the therapeutic potential of curcumin and analogues against cancer. Eur. J. Biol. 2023; 82(2): 317-25. https://dx.doi.org/10.26650/eurjbiol.2023.1348427.
  2. Ильина И.Ю., Доброхотова Ю.Э. Роль окислительного стресса в развитии гинекологических заболеваний. Акушерство и гинекология. 2021; 2: 150-6.
  3. Korkmaz Ş.A., Kaymak S.U., Neşelioğlu S., Erel Ö. Thiol-disulphide homeostasis in patients with schizophrenia: the potential biomarkers of oxidative stress in acute exacerbation of schizophrenia. Clin. Psychopharmacol. Neurosci. 2024; 22(1): 139-50. https://dx.doi.org/10.9758/cpn.23.1084.
  4. Красный А.М., Кан Н.Е., Тютюнник В.Л., Ховхаева П.А., Волгина Н.Е., Сергунина О.А., Тютюнник Н.В., Беднягин Л.А. Окислительный стресс при преэклампсии и при нормальной беременности. Акушерство и гинекология. 2016; 5: 90-4.
  5. Nitti M., Marengo B., Furfaro A.L., Pronzato M.A., Marinari U.M., Domenicotti C. et al. Hormesis and oxidative distress: pathophysiology of reactive oxygen species and the open question of antioxidant modulation and supplementation. Antioxidants (Basel). 2022; 11(8): 1613. https://dx.doi.org/10.3390/antiox11081613.
  6. Tretter V., Hochreiter B., Zach M.L., Krenn K., Klein K.U. Understanding cellular redox homeostasis: a challenge for precision medicine. Int. J. Mol. Sci. 2021; 23(1):106. https://dx.doi.org/10.3390/ijms23010106.
  7. Soundararajan L., Warrier S., Dharmarajan A., Bhaskaran N. Predominant factors influencing reactive oxygen species in cancer stem cells. J. Cell. Biochem. 2024; 25(1): 3-21. https://dx.doi.org/10.1002/jcb.30506.
  8. Крикунова Л.И., Мкртчян Л.С., Замулаева И.А., Рябченко Н.И., Киселева В.И., Иванова Т.И., Мельницкая Т.Б., Хорохорина В.А. Роль специализированной и высокотехнологичной медицинской помощи в выявлении и профилактике онкопатологии гинекологической сферы. В кн.: Иванов В.К., Каприн А.Д., ред. Медицинские радиологические последствия Чернобыля: прогноз и фактические данные спустя 30 лет. М.: ГЕОС; 2015: 220-41.
  9. Иванова Т.И., Дзиковская Л.А., Хорохорина В.А., Мкртчян Л.С., Крикунова Л.И., Иванов С.А., Шегай П.В., Каприн А.Д. Уровень малондиальдегида в крови женщин, подвергшихся радиационному воздействию в результате чернобыльской аварии. Радиация и риск. 2023; 32(4): 79-93.
  10. Calaf G.M., Urzua U., Lara Termini L., Aguayo F. Oxidative stress in female cancers. Oncotarget. 2018; 9(34): 23824-42. https://dx.doi.org/10.18632/oncotarget.25323.
  11. Foppoli C., De Marco F., Cini C., Perluigi M. Redox control of viral carcinogenesis: The human papillomavirus paradigm. Biochim. Biophys. Acta. 2015; 1850(8): 1622-32. https://dx.doi.org/10.1016/j.bbagen.2014.12.016.
  12. Cruz-Gregorio A., Aranda-Rivera A.K. Redox-sensitive signalling pathways regulated by human papillomavirus in HPV-related cancers. Rev. Med. Virol. 2021; 31(6): e2230. https://dx.doi.org/10.1002/rmv.2230.
  13. Fujioka N., Fritz V., Upadhyaya P., Kassie F., Hecht S.S. Research on cruciferous vegetables, indole-3-carbinol, and cancer prevention: A tribute to Lee W. Wattenberg. Mol. Nutr. Food Res. 2016; 60(6): 1228-38. https://dx.doi.org/10.1002/mnfr.201500889.
  14. Garcia-Oliveira P., Otero P., Pereira A.G., Chamorro F., Carpena M., Echave J. et al. Status and challenges of plant-anticancer compounds in cancer treatment. Pharmaceuticals (Basel). 2021; 14(2): 157. https://dx.doi.org/10.3390/ph14020157.
  15. Chu M., Zheng C., Chen C., Song G., Hu X., Wang Z.W. Targeting cancer stem cells by nutraceuticals for cancer therapy. Semin. Cancer Biol. 2022; 85: 234-45. https://dx.doi.org/10.1016/j.semcancer.2021.07.008.
  16. Vrânceanu M., Galimberti D., Banc R., Dragoş O., Cozma-Petruţ A., Hegheş S.C. et al. The anticancer potential of plant-derived nutraceuticals via the modulation of gene expression. Plants (Basel). 2022; 11(19): 2524. https://dx.doi.org/10.3390/plants11192524.
  17. Hashem S., Ali T.A., Akhtar S., Nisar S., Sageena G., Ali S. et al. Targeting cancer signaling pathways by natural products: Exploring promising anti-cancer agents. BiomedPharmacother. 2022; 150: 113054. https://dx.doi.org/10.1016/j.biopha.2022.113054.
  18. Williams D.E. Indoles derived from glucobrassicin: cancer chemoprevention by indole-3-carbinol and 3,3’-diindolylmethane. Front. Nutr. 2021; (8): 734334. https://dx.doi.org/10.3389/fnut.2021.734334
  19. Donia T., Gerges M.N., Mohamed T.M. Anticancer effects of combination of indole-3-carbinol and hydroxychloroquine on Ehrlich ascites carcinoma via targeting autophagy and apoptosis. Nutr. Cancer. 2022; 74(5): 1802-18. https://dx.doi.org/10.1080/01635581.2021.1960388.
  20. Amarakoon D., Lee W.J., Tamia G., Lee S.H. Indole-3-carbinol: occurrence, health-beneficial properties, and cellular/molecular mechanisms. Annu. Rev. Food Sci. Technol. 2023; 14: 347-66. https://dx.doi.org/10.1146/annurev-food-060721-025531.
  21. Reyes-Hernández O.D., Figueroa-González G., Quintas-Granados L.I., Gutiérrez-Ruíz S.C., Hernández-Parra H., Romero-Montero A. et al. 3,3'-Diindolylmethane and indole-3-carbinol: potential therapeutic molecules for cancer chemoprevention and treatment via regulating cellular signaling pathways. Cancer Cell. Int. 2023; 23(1):180. https://dx.doi.org/10.1186/s12935-023-03031-4.
  22. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Клинические рекомендации. Доброкачественная дисплазия молочной железы. 2020.
  23. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Клинические рекомендации. Цервикальная интраэпителиальная неоплазия, эрозия и эктропион шейки матки. 2020.
  24. Сухих Г.Т., Ашрафян Л.А., Киселев В.И., Аполихина И.А., Мальцева Л.И., Сутурина Л.В., Селиванов С.П., Леонидова Т.Н., Цхай В.Б., Радзинский В.Е., Ордиянц И.М., Бебнева Т.Н., Евтушенко И.Д., Удут В.В., Кулагина Н.В., Баранов А.Н., Хасанов Р.Ш., Гурьева В.А., Шамина И.В., Карахалис Л.Ю., Муйжнек Е.Л. Исследование эффективности и безопасности препарата на основе дииндолилметана у пациенток с цервикальной интраэпителиальной неоплазией (CIN 1-2). Акушерство и гинекология. 2018; 9: 91-8.
  25. Ražná K., Nôžková J., Vargaová A., Harenčár Ľ., Bjelková M. Biological functions of lignans in plants. Agriculture (Pol'nohospodárstvo). 2021; 67(4): 155-65. https://dx.doi.org/10.2478/agri-2021-0014.
  26. Bhuia M.S., Wilairatana P., Chowdhury R., Rakib A.I., Kamli H., Shaikh A. et al. Anticancer potentials of the lignan magnolin: a systematic review. Molecules. 2023; 28(9): 3671. https://dx.doi.org/10.3390/molecules28093671.
  27. Majdalawieh A.F., Ahari S.H., Yousef S.M., Nasrallah G.K. Sesamol: A lignan in sesame seeds with potent anti-inflammatory and immunomodulatory properties. Eur. J. Pharmacol. 2023; 960: 176163. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejphar.2023.176163.
  28. Hazafa A., Iqbal M.O., Javaid U., Tareen M.B.K., Amna D., Ramzan A. et al. Inhibitory effect of polyphenols (phenolic acids, lignans, and stilbenes) on cancer by regulating signal transduction pathways: a review. Clin. Transl. Oncol. 2022; 24(3): 432-45. https://dx.doi.org/10.1007/s12094-021-02709-3.
  29. Fang X., Hu X. Advances in the synthesis of lignan natural products. Molecules. 2018; 23(12): 3385. https://dx.doi.org/10.3390/molecules23123385.
  30. Полуэктова М.В., Мкртчян Л.С., Чиркова Т.В., Воробьева О.А., Крикунова Л.И. Антиоксидантные эффекты лигнана - 7-гидроксиматаирезинола в качестве комплементарной терапии гинекологических заболеваний. Гинекология. 2018; 20(6): 16-21.
  31. Кузьмина Е.Г., Мкртчян Л.С., Мушкарина Т.Ю., Ватин О.Е., Крикунова Л.И. Роль 7-гидроксиматаирезинола в противовоспалительной терапии гинекологических заболеваний. Лечащий врач. 2018; 2: 82.
  32. Mukhija M., Joshi B.C., Bairy P.S., Bhargava A., Sah A.N. Lignans: a versatile source of anticancer drugs. Beni Suef Univ. J. Basic. Appl. Sci. 2022; 11(1): 76. https://dx.doi.org/10.1186/s43088-022-00256-6.
  33. Liu Z., Fiu Z., Fei Y.J., Cao X.H., Xu D., Tang W.J. et al. Lignans intake and enterolactone concentration and prognosis of breast cancer: a systematic review and meta-analysis. J. Cancer. 2021; 12(9): 2787-96. https://dx.doi.org/10.7150/jca.55477.
  34. Рубашкина А.Н., Лапочкина Н.П., Торшин И.Ю., Громова О.А. Роль 7-гидроксиматаирезинола в модуляции метаболизма эстрогенов и терапии мастопатии. Гинекология. 2020; 22(4): 43-8.
  35. Шамрей В.К., Чистякова Е.И., Матыцина Е.Н., Нечипоренко В.В., Рудой И.С. Радиационная психосоматическая болезнь у ликвидаторов последствий аварии на Чернобыльской АЭС. Медико-биологические и социально-психологические проблемы безопасности в чрезвычайных ситуациях. 2016; (1): 21-33.
  36. American College of Radiology (ACR). ACR-BI-RADS--5th edition. ACR Breast Imaging Reporting and Data System, Breast Imaging Atlas; BI-RADS. Reston, VA: American College of Radiology; 2014.
  37. Tessler F.N., Middleton W.D., Grant E.G., Hoang J.K., Berland L.L., Teefey S.A. et al. ACR Thyroid Imaging, Reporting and Data System (TI-RADS): White Paper of the ACR TI-RADS Committee. J. Am. Coll. Radiol. 2017; 14(5): 587-95. https://dx.doi.org/10.1016/j.jacr.2017.01.046.
  38. Munro M.G., Critchley H.O., Broder M.S., Fraser I.S.; FIGO Working Group on Menstrual Disorders. FIGO classification system (PALM-COEIN) for causes of abnormal uterine bleeding in nongravid women of reproductive age. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2011; 113(1): 3-13. https://dx.doi.org/10.1016/j.ijgo.2010.11.011.
  39. American College of Radiology. O-RADS Ultrasound v2022 Assessment Categories. Available at: https://www.acr.org/-/media/ACR/Files/RADS/O-RADS/US-v2022/O-RADS-US-v2022-Assessment-Categories-Algorithm.pdf
  40. Eisenhauer E.A., Therasse P., Bogaerts J., Schwartz L.H., Sargent D., Ford R. et al. New response evaluation criteria in solid tumours: revised RECIST guideline (version 1.1). Eur. J. Cancer. 2009; 45(2): 228-47. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejca.2008.10.026.
  41. Morisky D.E., Green L.W., Levine D.M. Concurrent and predictive validity of a self-reported measure of medication adherence. Med. Care. 1986; 24(1): 67-74. https://dx.doi.org/10.1097/00005650-198601000-00007.
  42. Marimoutou M., Le Sage F., Smadja J., d’Hellencourt C.L., Gonthier M-P., Da Silva C.R. Antioxidant polyphenol-rich extracts from the medicinal plants Antirhea borbonica, Doratoxylon apetalum and Gouania mauritiana protect 3T3-L1 preadipocytes against H2O2, TNFα and LPS inflammatory mediators by regulating the expression of superoxide dismutase and NF-κB genes. J. Inflamm. (Lond.). 2015; 12(1): 10. https://dx.doi.org/10.1186/s12950-015-0055-6.
  43. Темирбуланов P.A., Селезнев E.H. Метод повышения интенсивности свободнорадикального окисления липидосодержащих компонентов крови и его диагностическое значение. Лабораторное дело. 1981; 4: 209-11.
  44. Osipov A.N., Ryabchenko N.I., Ivannik B.P., Dzikovskaya L.A., Ryabchenko V.I., Kolomijtseva G.Ya. A prior administration of heavy metals reduces thymus lymphocyte DNA lesions and lipid peroxidation in gamma-irradiated mice. J. Phys. IV France. 2003; 107: 987-92. https://dx.doi.org/10.1051/jp4:20030464.

Поступила 04.10.2024

Принята в печать 25.10.2024

Об авторах / Для корреспонденции

Крикунова Людмила Ивановна, д.м.н., профессор, главный н.с., МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 249036, Россия, Калужская область, Обнинск, ул. Королева, д. 4, krikunova_li@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-1842-156X
Мкртчян Лиана Сирекановна, д.м.н., в.н.с., МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России,
249036, Россия, Калужская область, Обнинск, ул. Королева, д. 4, +7(909)251-28-49, liana6969@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-5027-5331
Замулаева Ирина Александровна, д.б.н., профессор, заведующая отделом радиационной биохимии, МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 249036, Россия, Калужская область, Обнинск, ул. Королева, д. 4, zamulaeva@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-6136-8445
Якимова Анна Олеговна, к.б.н., заведующая лабораторией молекулярной и клеточной радиобиологии отдела радиационной биохимии, МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 249036, Россия, Калужская область, Обнинск, ул. Королева, д. 4, anna.prosovskaya@gmail.com,
https://orcid.org/0000-0002-7834-6533
Дзиковская Лариса Анатольевна, к.б.н., с.н.с. лаборатории молекулярной и клеточной радиобиологии отдела радиационной биохимии, МРНЦ им. А.Ф. Цыба –
филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 249036, Россия, Калужская область, Обнинск, ул. Королева, д. 4, ldzik@yandex.ru
Дегтярева Елена Сергеевна, н.с. лаборатории молекулярной и клеточной радиобиологии отдела радиационной биохимии, МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 249036, Калужская область, г. Обнинск, ул. Королева, д. 4, l170366@yandex.ru
Беспалов Павел Дмитриевич, к.м.н., заведующий отделением ультразвуковой диагностики, МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии»
Минздрава России, 249036, Россия, Калужская область, Обнинск, ул. Королева, д. 4.
Салпагарова Арина Владимировна, врач-онколог, МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 249036, Россия, Калужская область, Обнинск, ул. Королева, д. 4, arina.rubtsova.2020@inbox.ru, https://orcid.org/0009-0000-2954-9505
Хайлова Жанна Владимировна, к.м.н., заместитель директора по организационно-методической работе, МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, руководитель Центра координации деятельности учреждений регионов в области онкологии и радиологии, 249036, Россия, Калужская область, Обнинск, ул. Королева, д. 4, https://orcid.org/0000-0003-3258-0954
Иванов Сергей Анатольевич, д.м.н., чл.-корр. РАН, директор, МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 249036, Россия, Калужская область, Обнинск, ул. Королева, д. 4; профессор кафедры онкологии и рентгенорадиологии имени В.П. Харченко медицинского института РУДН, oncourolog@gmail.com, https://orcid.org/0000-0001-7689-6032
Каприн Андрей Дмитриевич, д.м.н., профессор, академик РАН, академик РАО, директор МНИОИ им. П.А. Герцена – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии»
Минздрава России; генеральный директор НМИЦ радиологии Минздрава России; заведующий кафедрой онкологии и рентгенорадиологии им. В.П. Харченко медицинского института РУДН, kaprin@mail.ru https://orcid.org/0000-0001-8784-8415

Также по теме