Актуальные вопросы хламидийной инфекции

Дубровина С.О., Рубаник Л.В., Aрдинцева О.А.

1) ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации. Ростов-на-Дону, Россия; 2) Государственное учреждение «Республиканский научно-практический центр эпидемиологии и микробиологии», Минск, Республика Беларусь
С 1 по 6 июля 2018 года в г. Зейст, Нидерланды проходил 14-й Международный симпозиум по хламидийной инфекции человека. Основными обсуждаемыми вопросами были: урогенитальная хламидийная инфекция, как одна из наиболее частых инфекций, передаваемых половым путем, основополагающие подходы и достижения лабораторной диагностики, иммунопатогенетические аспекты развития заболеваний, стандарты и тактика противохламидийного лечения. В статье изложены текущие знания в отношении хламидийной инфекции человека. Представлены последние данные научных исследований, касающиеся Chlamydia trachomatis, а также тенденции наиболее перспективных исследований.

Ключевые слова

Chlamydia trachomatis
диагностика
осложнения
лечение

Хламидийная инфекция и ее влияние на здоровье человека продолжают оставаться в центре внимания ученых. С 1 по 6 июля 2018 года в г. Зейст, Нидерланды проходил 14-й Международный симпозиум по хламидийной инфекции человека, собравший ведущих специалистов в этой области более чем из 23 стран мира. Ниже приведены не только важнейшие рассмотренные на конгрессе вопросы, но и последние данные по этой проблеме.

Распространенность. Урогенитальная хламидийная инфекция (УГХИ), вызываемая Сhlamydia trachomatis (CT), – по-прежнему самая частая бактериальная инфекция, передаваемая половым путем (ИППП). Глобальная распространенность УГХИ оценивается в 131 миллион случаев ежегодно. Показатели заболеваемости УГХИ остаются без существенных изменений последние несколько лет даже в странах, имеющих программы скрининга (например, Великобритания) и активное ИППП тестирование, лечение, уведомление партнера и ретестирование после лечения (Швеция, Нидерланды и др.). В то же время, как в Российской Федерации, так и в Республике Беларусь отмечается иная картина. На протяжении ряда лет регистрируется устойчивая тенденция к снижению заболеваемости УГХИ, что скорее отражает неполную регистрацию, чем реальную заболеваемость и требует дальнейшего всестороннего изучения и анализа [1, 2].

Ряд исследователей считает, что для улучшения репродуктивного здоровья населения необходим скрининг и более активный подход к диагностике и лечению УГХИ, чем просто случайная диагностика или выявление СТ только в случае появления симптомов и осложнений.

H.M. Gotz с соавторами полагают, что эффективное уведомление и лечение партнера может прервать цепочку передачи, предотвратить реинфицирование и привести к снижению заболеваемости. Для этого разработан и апробируется подход с использованием электронного уведомления партнера (через телефон, интернет) и назначение ему лечения. Несмотря на имеющиеся преимущества предложенного подхода, очевидны медицинские и правовые аспекты, требующие доработки. Кроме того, отсутствие тестирования на другие ИППП (гонорея, трихомониаз и прочие), которые могут быть в виде коинфекции с CТ, будет приводить к их «пропуску» и нерациональному лечению [3].

Патогенез. Многие патогенетические звенья развития УГХИ остаются неизвестными и продолжают активно изучаться. S. Filardo показал, что вагинальная микрофлора влияет на выживание CТ. В частности, было установлено, что бактериальный вагиноз является фактором риска УГХИ. Кроме того, некоторые микроорганизмы-комменсалы урогенитального тракта являются важным источником индола для последующего синтеза триптофана и выживания патогена. Это может отсрочивать элиминацию CТ после лечения, повышая риск трансмиссии и реинфекции [4].

Доказано, что плазмида кодирует белки важные для инфицирования и эффективной трансмиссии возбудителя. Штаммы, не содержащие плазмиду, и мутантные формы имеют сниженную вирулентность и вызывают слабый воспалительный ответ.

С помощью моделирования УГХИ на животных установлен риск горизонтальной передачи патогена от самцов к самкам и от самок к мышатам, который составил 93 и 60%, соответственно [5]. Выявлены случаи обнаружения «глазных» штаммов CТ (серотип В) в урогенитальных образцах. Показана возможность генетического обмена информацией (горизонтальный перенос отдельных генов и передача плазмиды) между урогенитальными и «глазными» штаммами CT, что также может влиять на патогенез заболевания [6].

Известно, что кроме урогенитальных локусов CТ может выявляться в ректальных и орофарингеальных образцах. Риск ректальной хламидийной инфекции включает популяцию мужчин, практикующих секс с мужчинами (МСМ) и анальные контакты с женщинами. Анализ публикаций на эту тему показывает сходную распространенность ректальной хламидийной инфекции в этих двух группах (9 и 9,2%, соответственно) с преобладанием бессимптомных форм [7]. В то время как ректальная инфекция у мужчин наиболее вероятна из-за прямой инокуляции патогена, у женщин предполагают, что она может быть следствием аутоинокуляции из инфицированных генитальных сайтов. Это подтверждается тем, что аноректальная инфекция регистрируется у 50–65% женщин, не имевших анальный секс, и часто сочетается с генитальной инфекцией [8]. По данным N.H. Dukers-Muijrers с соавторами, у женщин с УГХИ тесты на наличие сопутствующей аноректальной инфекции были в 36–91% случаев положительными [9]. Аналогичные данные получены в исследовании B.De Barbeyrac, в котором 77% женщин, посещающих клинику ИППП, имели сочетанную урогенитальную и аноректальную хламидийную инфекцию. При этом 86% образцов из этих двух сайтов совпадали по генотипическим свойствам [10].

Полагают также, что ректальная инфекция может возникать у обоих полов из-за колонизации CТ желудочно-кишечного тракта или трансмиссии через оральные секреты лиц, инфицированных во время аналингуса [11]. Более того, имеются экспериментальные доказательства, что CТ может выживать в кислой среде (при рН=2) не менее 2 часов и оставаться в жизнеспособном состоянии в нижних отделах желудочно-кишечного тракта человека [12]. Несмотря на все эти данные, вопрос может ли CТ выживать, персистировать в кишечнике и вызывать аноректальную инфекцию нижних отделов желудочно-кишечного и урогенитального тракта, все еще остается дискутабельным.

Потенциальные последствия ректальной хламидийной инфекции включают дальнейшую передачу инфекции другим лицам и увеличение риска неэффективного лечения. У женщин неудача лечения ректальной инфекции может приводить к последующей реинфекции урогенитального тракта.

Следует отметить, что женщины рутинно не тестируются на аноректальную хламидийную инфекцию в отличие от МСМ, поэтому контролировать ее у женщин сложно. В целом, вопросы скрининга ректальной хламидийной инфекции и ее последствия, равно как и факторы риска остаются слабо понятыми.

Слизистые генитальных и ректальных сайтов являются более благоприятными для инфекции, чем орофарингеальные сайты, однако почему, пока неизвестно. Орофарингеальная хламидийная инфекция часто бессимптомна. Возможно, активный оральный секс может приводить к инфицированию урогенитального тракта и впоследствии к тазовым воспалительным заболеваниям и/или бесплодию, колонизировать желудочно-кишечный тракт и способствовать передаче патогена в популяции [13]. В недавнем исследовании австралийских ученых распространенность оральной хламидийной инфекции у МСМ определена на уровне 1,5%, что сопоставимо с другими исследованиями, где показатель варьирует от 1,1 до 3,6%. При этом у 78% обследованных CТ детектирована только в орофарингеальных образцах [14]. Единичные исследования проведены по орофарингеальному тестированию у женщин, которые свидетельствуют о распространенности инфекции у 0,2–1,5% [15]. Данные по значимости орофарингеальной хламидийной инфекции у мужчин гетеросексуалов остаются ограниченными.

В настоящее время имеются разногласия специалистов в отношении клинической актуальности тестирования на СТ орофарингеальных образцов. В соответствии с рекомендациями СDC (Centers for Disease Control and Prevention) 2015 года, нецелесообразно проводить скрининг орофарингеальной хламидийной инфекции в виду ее низкой распространенности в популяции и отсутствия ясного понимания клинической значимости и роли в передаче патогена. Более того, в 1/3 случаев орофарингеальных инфекций у МСМ и женщин возможна спонтанная элиминация патогена между тестированием и лечением [16]. Другие 2/3 инфекций трудно интерпретировать, так как у части констатирована передача патогена из урогенитального тракта и у 24–58% лиц имела место только орофарингеальная инфекция. В тоже время СDC признает, что с целью исключения орофарингеальной инфекции у лиц, сообщивших об оральных контактах, может быть проведено тестирование на СТ методами амплификации нуклеиновых кислот (МАНК). При этом в Нидерландах, начиная с 2015 года, в соответствии с локальными документами рекомендуется проводить у МСМ рутинный орофарингеальный скрининг на СТ [15].

Таким образом, орально-генитальный и орально-анальный секс рассматривается в качестве одного из механизмов передачи СТ у человека. Роль оральной передачи патогена посредством кунилингуса, феллацио и аналингуса, как важного аспекта эпидемиологии УГХИ требует дальнейшего исследования.

Клинические проявления. Клиническое течение хламидийной инфекции, включая риск осложнений, является результатом комплексной взаимосвязи многих факторов (молекулярно-биологических свойств микроорганизма, бактериальной нагрузки, влияния окружающей среды (коинфекция, состояние микробиоценоза урогенитального тракта, генетической предрасположенности организма хозяина) [17]. По данным литературы, примерно 70% инфицированных женщин и 50% мужчин с лабораторно верифицированной CТ имеют субклиническое течение УГХИ [18]. E. Toh при обследовании пациентов с УГХИ в 5% уретральных мазков-соскобов не выявил воспалительной реакции [19].

Интересным представляется факт частоты верификации СТ у пациенток со слизисто-гнойными цервицитами (СГЦ), что дает ответ на вопрос, почему они не всегда «реагируют» на антихламидийную терапию. Мультицентровое исследование СГЦ показало, что только 17% всех женщин с данными клиническими проявлениями инфицированы СТ, в то время как 13% позитивны на Mycoplasma genitalium, 16% – на Trichomonas vaginalis и 2% – на Neisseria gonorrhoeae [20].

Активация вируса герпеса человека 6 типа (ВПГ6) может происходить во время хламидийной инфекции и влиять на эффективность терапии. Эти данные подтверждают предположение, что ВПГ6 является потенциальным генитальным ко-патогеном [21]. Кроме того, хламидийная инфекция является ко-фактором папилломавирусной инфекции, ассоциированной с цервикальной карциномой [22]. Эпителиально-мезенхимальный переход – ключевой процесс в воспалении эпителия, фиброгенезе и росте опухолей [23].

Геном хозяина и риск развития воспалительных заболеваний женских тазовых органов (ВЗЖТО). Персистенция хламидий может приводить к патологическим последствиям, ассоциированным с инфекцией. Если СТ не полностью элиминируется иммунной системой, она может сохраняться внутри клеток мишеней. По мере ослабления иммунного ответа на микроорганизм, персистирующие хламидии могут реактивироваться, реплицироваться и рестимулировать воспаление и привлечение иммунных эффекторов к очагу инфицирования. Воспалительные эффекторы, приводимые в действие иммунной системой, могут затем вернуть микроорганизм в персистирующее состояние. Повторные циклы хламидийной персистенции, чередующиеся с реактивацией, могут стимулировать хроническое воспаление урогенитального тракта.

Недавно было обнаружено, что СТ синтезирует ее собственный пептидогликан, который может быть распознан с помощью внутриклеточного белка-рецептора NOD2 (nucleotide-binding oligomerization domain-containing 2) [24]. От его экспрессии и функциональной активности зависит этап нейтрализации патогена и блокирования его проникновения внутрь клетки-мишени.

Известно также, что большое количество однонуклеотидных полиморфизмов (SNPs) хозяина связано с различиями восприимчивости и тяжести УГХИ [25]. Наиболее релевантные SNPs идентифицированы в рецепторах внутри- и внеклеточного распознавания патогенов (PRRs), а также в цитокинах и хемокинах, участвующих в иммунном ответе и модулирующих его после заражения СТ. Некоторые из них имеют SNPs, что приводит к повышенному риску инфицирования или осложнений после заражения СТ, в то время как другие оказывают защитное действие. На сегодняшний день существуют четыре хорошо описанных и изученных гена: TLR2 +2477 G / A (rs5743708), NOD1 +32656 T- / GG (rs6958571), CXCR5 +10950 T / C (rs3922) и IL10 -1082 A / G (rs1800896). TRL2 играет важную роль как фактор врожденного иммунного ответа на СТ в ранней продукции медиаторов воспаления и развитии хронической воспалительной патологии [26]. S.P. Verweij с соавторами показали, что он повышает риск развития патологии маточных труб (OR 17,5, 95% ДИ: 0,9 - 343, p=0,015) [27]. СТ серопозитивные женщины, носительницы NOD1 GG, также имеют повышенный риск развития патологии труб (OR: 2,25, 95% ДИ: 1,08-4,67, p=0,04) [28]. NOD1 обычно функционирует как рецептор, связывающий бактериальный пептидогликан, но вставка GG создает стоп-кодон, что ухудшает функционирование гена. В отличие от мутаций TLR2 и NOD1, SNP в гене CXCR5 является защитным SNP. Генотип CC хемокинового рецептора защищает СТ позитивных женщин с OR 0,1 от развития патологии труб [29]. И, наконец, SNPIL10, который находится в промоторной области этого иммуносупрессивного цитокина, также является защитной мутацией с OR 0,14 для развития тяжелого повреждения маточных труб (95% ДИ: 0,02-0,8, p=0,03) [30]. При развитии тяжелых осложнений было показано, что перенос мутантных аллелей NOD1 +32656 T-/GG ассоциировался с симптоматическим течением инфекции и IL10 -1082 A/G с повышенным риском развития поздних осложнений после хламидийной инфекции [31].

Лабораторная диагностика. Вопрос, кого и как эффективно тестировать на хламидийную инфекцию, по-прежнему остается в приоритете. Усилия направлены на создание быстрого, точного, недорого медицинского теста для диагностики.

МАНК-тесты рекомендуются CDC, как основные для диагностики УГХИ. В настоящее время FDA досконально изучены и разрешены к применению тест-системы 5 производителей: Abbott (Real Time CT/NG), Becton-Dickinson (BD Probe TecET и CT/GC и MaxTMCT/NG), Cepheid (Xpert CT/NG), Hologic (Aptima Combo 2), Roche (cobas 4800, 6800/8800 CT/NG). Все тесты предназначены для одновременного обнаружения C. trachomatis/N. gonorrhoeae. Хотя имеются некоторые отличия в их аналитических параметрах, все они демонстрируют сходную высокую клиническую чувствительность. Важно, что тест-системы могут быть использованы для исследования образцов, полученных как инвазивным (мазки-соскобы), так и неинвазивным путем (первая порция мочи и вагинальный мазок). FDA (Food and Drug Administration) разрешены к исследованию моча и уретральный мазок у мужчин и цервикальный мазок, влагалищный мазок и первая порция мочи у женщин. Для рутинного скрининга рекомендуется первая порция мочи у мужчин и влагалищный мазок у женщин [32].

В соответствии с действующими нормативными документами в Российской Федерации и Республике Беларусь основным методом лабораторной диагностики УГХИ также являются МАНК, в частности, полимеразная цепная реакция. Рекомендуемым клиническим материалом для исследования являются соскоб из уретры, цервикального канала, влагалища и первая порция мочи у женщин и соскоб из уретры и первая порция мочи у мужчин [33].

Обращает на себя внимание то, что клиницисты стали все больше внимания уделять скринингу экстрагенитальной хламидийной инфекции, однако остается нерешенным вопрос об оптимальном подходе к ее диагностике. FDA пока не утвердил какие-либо доступные в настоящее время тесты на основе МАНК для детекции СТ в экстрагенитальных образцах (фарингеальных и ректальных).

Следует отметить, что в большинстве коммерческих тест-систем на основе МАНК мишенью для амплификации является консервативный регион 16SрРНК или криптической плазмиды СТ. При этом отмечается, что изменения в последовательности праймеров и проб, мутантные варианты патогена и штаммы, не содержащие плазмиду, могут оказывать отрицательное влияние на контроль за УГХИ. Поэтому двухмишенные тест-системы, направленные на детекцию хромосомных и плазмидных локусов ДНК, рекомендуются для эффективного выявления всего существующего разнообразия генетических вариантов патогена, которые могут быть не диагностированы одномишенными тест-системами [34–37].

В последние годы за рубежом активно апробируется подход к самостоятельному взятию биологического материала (например, влагалищного мазка женщинами) дома или в клинике. Актуальным направлением развития лабораторной диагностики является также создание наборов для домашнего тестирования, электронных рецептов на лекарственные средства, информационное уведомление о выявлении СТ у партнера [38]. Несомненно, это проще, удобнее, экономит время и не вызывает психологического дискомфорта. Результаты исследования пациенты получают на электронный адрес или по телефону. Однако пересылка проб в лабораторию для МАНК теcтирования пока не получила одобрение FDA. Это порождает проблемы, связанные с лечением, отслеживанием контактов и осуществлением эффективного эпидемиологического надзора. Все это свидетельствует о том, что тесты для самостоятельного забора материала и диагностики в домашних условиях, а также подходы к применению системы электронного здравоохранения должны быть более детально исследованы и усовершенствованы [3].

Лечение. Адекватное лечение лиц, как с генитальными, так и с экстрагенитальными хламидийными инфекциями занимает особое внимание специалистов последние несколько лет.

Общепризнано, что азитромицин в дозе 1 грамм остается первой линией терапии для неосложненной УГХИ вместе с доксициклином в течение 7 дней 100 мг два раза в день. Установлено, после однократного приема 1 грамма азитромицин быстро всасывается и сохраняет высокой уровень во влагалище, как минимум, одну неделю [39]. По данным R.F. Savaris с соавторами, эффективность эрадикации хламидий при лечении острой неосложненной УГХИ азитромицином составила 98%, доксициклином – 100% [40]. В работах M. Unemo с соавторами показан 99% успех 5-дневного курса азитромицина в эрадикации, как хламидий, так и микоплазм [41].

В терапии УГХИ также применяют фторхинолоны [42]. Однако, несмотря на высокую эффективность рекомендуемой для хламидий и гонореи терапии, в случае микст-инфицирования урогенитального тракта широкое применение макролидов и фторхинолонов может привести к еще большему возрастанию устойчивости к этим препаратам микоплазм. В последние годы появляется информация о снижении эффективности лечения микоплазм доступными на сегодняшний день антибиотиками [43]. Предполагается, что переход на доксициклин не спасет нас от значительных проблем с резистентностью в будущем. Изучение комбинированной терапии с азитромицином для лечения хламидий и микоплазмы, как это уже является обычным для гонореи, также может быть полезным направлением. Мы не можем отказаться от использования азитромицина для лечения бактериальных ИППП, но правильно поставить вопрос о том, как мы его в настоящее время используем [44]. Полагают, что эффективность может быть снижена не только с различиями в биодоступности антибиотика в разные ткани, но и свойствами микроорганизма (нагрузка, антимикробная резистентность, динамика жизненного цикла).

По данным исследований C.M. Khosropour, уровень персистентной/рецидивирующей УГХИ составляет 6,7% у женщин, пролеченных азитромицином, и 4,7% – у пролеченных доксициклином [45]. Сообщается также, что рекомендуемые режимы лечения пациентов с УГХИ азитромицином не способны приводить к эффективному лечению аноректальной инфекции у МСМ [9]. Важно также учитывать, что лечение пациентов, инфицированных штаммами L1-L3 СТ, должно быть более продолжительным, чем в случае инфекции, вызванной урогенитальными штаммами патогена. Кроме того, показано, что эрадикация хламидийной инфекции из желудочно-кишечного тракта при лечении мышей азитромицином менее эффективна, чем в случае урогенитальной инфекции [11, 44].

Учеными из Нидерландов предложена схема для ведения пациенток с предполагаемым трубным фактором бесплодия. На первом этапе рекомендуется определение однонуклеотидного полиморфизма и антител к СТ. И только в случае наличия изменений в полиморфизме генов, предполагающих предрасположенность к воспалительным заболеваниям органов малого таза, несмотря на результат исследования антител к СТ, показана лапароскопия [46]. Спонтанная элиминация СТ описана в литературе с частотой до 44% всех инфицирований в период от диагностики до начала лечения [47].

Заключение

Таким образом, несмотря на многочисленные достижения в изучении CT, еще многие проблемы остаются нерешенными, что требует объединения усилий, как ученых, так и врачей в борьбе с хламидийной инфекцией.

Список литературы

  1. Рубаник Л.В., Шиманович В.П., Глинская И.Н., Зданович Н.Н., Полещук Н.Н. Анализ заболеваемости урогенитальной хламидийной инфекцией в Республике Беларусь за период 2001-2015 гг. Лабораторная диагностика. Восточная Европа. 2017; 2(6): 257-265.
  2. Кубанова А.А., Кубанов А.А., Мелехина Л.Е. Динамика изменений интенсивных показателей заболеваемости инфекций, передаваемых половым путем, в оценке эпидемиологического процесса и состояния здоровья населения Российской Федерации за 2006–2016 годы. Вестник дерматологии и венерологии. 2018; 91(1): 27-37. [Kubanova A.A., Kubanov A.A., Melekhina L.E. Dynamics of incidence of sexually transmitted infections in the evaluation of the epidemiological process and state of health of the Russian Federation population in 2006–2016.Vestnik Dermatologiii Venerologii. 2018; 91(1): 27-37. doi.org/10.25208/0042-4609-2018-94-1-27-37.
  3. Gotz H.M., van Aar F., van den Broek I.V.F., van Bergen J.E.A.M., Donker G.A., Hek K. et al. Synthesis of results of pick-up: potential of expedited partner therapy for Chlamydia in the Netherlands: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018:77-81.
  4. Filardo S., Marisa D. P., Porpora M. G., Recine N., Farcomeni A., Latino M.A. et al. Diversity of Cervical Microbiota in Asymptomatic Chlamydia trachomatis Genital Infection: A Pilot Study. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2017; 7: 321. doi: 10.3389/fcimb.2017.00321.
  5. Pal. S., Tifrea D.F., de la Maza L.M. Implementation of a new murine model for the characterization of the horizontal and vertical transmission of genital chlamydial infections: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 211-215.
  6. Versteeg B., Bruisten S.M., Pannekoek Y., Jolley K.A., Maiden M.C.J., van der Ende A. et al. Genomic analysis of the Chlamydia trachomatis core genome shows an association between chromosomal genome, plasmide type and disease: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 589-593.
  7. Dewart C.M., Bernstein K.T., De Groote N.P., Romaguera R., Turner A.N. Prevalence of rectal chlamydial and gonococcal infections: a systematic review. Sex. Trans. Dis. 2018; 45:280-293. doi: 10.1097/OLQ.0000000000000754.
  8. Leenen. J., van Liere G.A.F.S., Hoebe C.J.P.A., Hogewoning A.A., de Vries H.J.C., Dukers-Muijrers N.H.T.M. Preceding oropharyngeal Chlamydia trachomatis infection is not a risk factor for anorectal Chlamydia trachomatis infection in men who have sex with men (MSM) and women: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 89-93.
  9. Dukers-Muijrers N.H., Schachter J., van Liere G.A.F.S., Wolffs P.F.G., Hoebe C.J.P.A. What is needed to guide testing for anorectal and pharyngeal Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae in women and men? Evidence and opinion. BMC infectious diseases. 2015; 15:533. doi 10.1186/s12879-015-1280-6.
  10. Barbeyrac B., Baita D., Touati A., Bebear C., Peuchant O. Does Chlamydia trachomatis anal infection occur with vaginal infection in women?: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 95-97.
  11. Rank R., Yeruva L. Hidden in plain sight: chlamydial gastrointestinal infection and its relevance to persistence in human genital infection. Infection and immunity. 2014; 82(4): 1362-1371. doi: 10.1128/IAI.01244-13.
  12. Moncada J., Schachter J. In vitro survival of Chlamydia trachomatis in a low pH environment: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 131-133.
  13. Bavoil P., Marques P. X., Brotman R., Ravel J. Does active oral sex contribute to female infertility. The Journal of infectious disease. 2017; 216(8): 932-5. doi:10.1093/infdis/jix419.
  14. Workowski K.A., Bolan G.A. Sexually Transmitted Diseases Treatment Guidelines 2015. MMWR Recomm. Rep. 2015; 64(33):1-137. PMCID: PMC5885289.
  15. van Liere G.A.F.S., Dukers-Muijrers N.H.T.M., Hoebe C.J.P.A. Oropharyngeal Chlamydia trachomatis testing and positivity at an STI clinic in the past 5 years; testing more and finding even more: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 173-177.
  16. van Rooijen M. S., van der Loeff M.F.S, Morré S.A, van Dam A.P., Speksnijder A.G.C.L., de Vries H.J.C. Spontaneous pharyngeal Chlamydia trachomatis RNA clearance. A cross-sectional study followed by a cohort study of untreated STI clinic patients in Amsterdam, The Netherlands. Sex. Transm. Infect. 2015, 91(3): 157-164. doi: 10.1136/sextrans-2014-051633.
  17. Menon S., Timms P., Allan J.A., Alexander K., Rombauts L., Horner P. et al. Human and pathogen factors associated with Chlamydia trachomatis-related infertility in women. Clin. Microbiol. Rev. 2015; 28(4): 969-85.doi: 10.1128/CMR.00035-15.
  18. Quigley B.L., Hanger J., Carver S., Timms P. Moddeling analysis of urogenital and ocular chlamydial disease reveals distinct host and chlamydial factors lead to clinical disease, using the koala as a model system: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 61- 64.
  19. Toh E., Gao X., Lin H., Dong Q., Batteiger T., Jordan S.J. et al. C trachomatis infection profoundly alters the urethral microbiome in men: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018:509-512.
  20. Taylor S.N., Lensing S., Schwebke J., Lillis R., Mena L.A., Nelson A.L et al. Prevalence and treatment outcome of cervicitis of unknown etiology. Sex. Trans. Dis.2013;40(5): 379-85. PMID:23588127.doi: 10.1097/OLQ.0b013e31828bfcb1.
  21. Prusty B.K., Siegl C., Hauck P., Hain J., Korhonen S.J., Hitunen-Back E. et al. Chlamydia trachomatis infection induces replication of latent HHV-6. PLos One 2013; 8(4):e61400. doi:10.1371/journal.pone.0061400.
  22. Hafner L. Pathogenesis of fallopian tube damage caused by Chlamydia trachomatis infections. Contraception. 2015; 92:108-115. doi: 10.1016/j.contraception.2015.01.004.
  23. Zou X., Liu T., Gong Z., Hu C., Zhang Z. Micro RNAs-mediated epithelial-mesenchymal transition in fibrotic diseases. Eur. J. Pharmacol. 2017; 796: 190-206. doi: 10.1016/j.ejphar.2016.12.003.
  24. Helble J. D., Roan N.R., Starnbach M.N. Immune components required for control of Chlamydia infection: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 431-440.
  25. Morre S.A., Karimi O., Ouburg S. Chlamydia trachomatis: identification of susceptibility markers for ocular and sexually transmitted infection by immunogenetics. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2009; 55(2): 140-53.doi: 10.1111/j.1574-695X.2009.00536.
  26. Hoenderboom B.M., Jukema J.B., van Benthem B.H., van den Broek I.V., van der Sande M.A., de Vries H.J.C. et al. The role of SNPs in the TRL2, NOD1, CXCR5, and IL10 genes in the course of Chlamydia trachomatis infections: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018:605-609.
  27. Verweij S.P., Karimi O., Pleijster J., Lyons M.J., de Vries H.J.C., Land J.A. et al. TLR2, TLR4 and TLR9 genotypes and haplotypes in the susceptibility to and clinical course of Chlamydia trachomatis infections in Dutch women. Pathog. Dis. 2016; 74(1): ftv107. doi: 10.1093/femspd/ftv107.
  28. Brankovic I., van Ess E.F., Noz M.P., Wiericx J. W., Spaargaren J., Morre S.A. et al. NOD1 in contrast to NOD2 functional polymorphism influence Chlamydia trachomatis infection and the risk of tubal factor infertility. Pathog. Dis. 2015; 73(1): 1-9. doi: 10.1093/femspd/ftu028.
  29. Jiang J., Karimi O., Ouburg S., Champion C.I., Khurana A., Liu G. Interruption of CXCL13-CXCR5 axis increases upper genital tract pathology and activation of NK Tcells following chlamydial genital infection. PLo S One. 2012; 7(11): e47487. doi: 10.1371/journal.pone.0047487.
  30. Ohman H., Tiitinen A., Halttunen M., Lehtinen M., Paavonen J., SurcelH.-M. Cytokine polymorphism sandseverity of tubal damage in women with Chlamydia-associated infertility. J. Infect. Dis. 2009; 199(9): 1353-9.doi: 10.1086/597620.
  31. Hoenderboom B. M., Jukema J.B., van Benthem B.H., van den Broek I.V., van der Sande M.A., de Vries H.J.C et al. The role of SNPs in the TRL2, NOD1, CXCR5, and IL10 genes in the course of Chlamydia trachomatis infections: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018:605-609.
  32. Schachter J. Diagnosis of Chlamydia trachomatis infection with some comments on other Chlamydiae: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 333-340.
  33. Федеральные клинические рекомендации. Дерматовенерология 2015: Болезни кожи. Инфекции, передаваемые половымпутем. М.: Деловой экспресс. 2016; 768с.
  34. Ripa T., Nilsson P. A variant of Chlamydia trachomatis with deletion in cryptic plasmid: implications for use of PCR diagnostic tests. Euro Surveill. 2006; 11(11): E061109.2.
  35. Федорова В. А., Коннова С. С., Полянина Т. И., Дружкин И.Н., Федотов Э.А., Мотин В.Л. Использование различных мишеней для выявления штаммов Chlamydia trachomatis. Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия. Химия. Биология. Экология. 2011; 11(2): 73-77.
  36. Shipitsyna E., Hadad R., Ryzhkova O., Savicheva A., Domeika M., Unemo M. First reported case of the Swedish new variant of Chlamydia trachomatis (nvCT) in Eastern Europe (Russia), and evaluation of Russian nucleic acid amplification tests regarding their ability to detect nvCT. Acta DermatoVenereologica. 2012; 92(3): 330–331. doi:10.2340/00015555-1269
  37. Рубаник Л.В., Капустина Ю.М., Асташонок А.Н., Полещук Н.Н. Медицинские новости. 2017; 12: 49–53.
  38. Gaydos C.A., Barnes M., Holden J., Silver B., Smith R., Hardick J. et al. Acceptability of a “selfie” or self-collected vaginal swab specimen for enhancing Chlamydia screening in a pharmacy: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands; 2018: 353-356.
  39. Vodstrcil L.A., Rupasinghe T.W.T., Kong, F. Y. S., Tull D., Worthington K., Chen M.Y., Huston W.M., et al. Measurement of tissue azithromycin levels in selfcollected vaginal swabs post treatment using liquid chromatography and tandem mass spectrometry. PLoS One. 2017; 12(5): e0177615. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0177615.
  40. Savaris R.F, Fuhrich D.G, Duarte R.V, Franik S, Ross J. Antibiotic therapy for pelvic inflammatory disease (Review). Cochrane Database of Systematic Reviews 2017; Issue 4. Art. No.: CD010285. doi: 10.1002/14651858.CD010285.pub2.
  41. Unemo M., Endre K.M., Moi H. Five-day Azithromycin treatment regimen for Mycoplasma genitalium infection also effectively eradicates Chlamydia trachomatis. Acta DermatoVenereologica. 2015; 95(6): 730-732.doi:10.2340/00015555-2108.
  42. Асхаков М.С., Чеботарев В.В., Вышеславцев В.В. Диагностика и лечение инфекций, передаваемых половым путем, «второй генерации». Медицинский вестник Северного Кавказа. 2014; 9(1): 102-107.
  43. Jensen J.S., Bradshaw C. Management of Mycoplasma genitalium infections – can we hit a moving target? BMC Infect Dis. 2015; 15:343. doi:10.1186/s12879-015-1041-6.
  44. Horner P., Saunders J. Should azithromycin 1 g be abandoned as a treatment for bacterial STIs? The case for and against. The Case for and Against. Sex Transm Infect. 2017; 93(2): 85-87. doi:10.1136/sextrans-2015-052414.
  45. Khosropour C.M., Bell T.R., Hughes J.P., Manhart L.E., Golden M.R. A population-based study to compare treatment outcomes among women with urogenital chlamydial infection in Washington State, 1992-2015. Sex. Trans. Dis. 2018; 45: 319-324. doi: 10.1097/OLQ.0000000000000764.
  46. Malogajski J., Brankovic I., Land J.A., Morré S.A., Ambrosino E. Potential of Chlamydia trachomatis host genetic profiling to modify the screening for tubal factor infertility (TFI) – the Dutch perspective: Proceedings of the Fourteenth international symposium on human chlamydial infections. 2018, July 1-6; Zeist; The Netherlands. The Netherlands;2018: 223-226.
  47. Geisler W., Lensing S.Y., Press C.G, Hook E.W. Spontaneous resolution of genital Chlamydia trachomatis infection in women and protection from reinfection. J. Infect. Dis. 2013. 207: 1850-6. doi: 10.1093/infdis/jit094.

Поступила 17.09.2018

Принята в печать 21.09.2018

Об авторах / Для корреспонденции

Дубровина Светлана Олеговна, д.м.н., профессор, главный научный сотрудник ФГБОУ ВО Ростовский государственный медицинский университет Минздрава России. Адрес: 344012, Россия, Ростов-на-Дону, ул. Мечникова, д. 43/38/2. Телефон: 8 (918) 558-51-13. E-mail: s.dubrovina@gmail.com
Рубаник Людмила Владимировна, канд. биол. наук, зав. лабораторией диагностики сочетанных бактериально-вирусных инфекций
Государственное учреждение «Республиканский научно-практический центр
эпидемиологии и микробиологии». Адрес: 220114, ул. Филимонова 23, г. Минск, Беларусь. Телефон/факс +375172672198. E-mail: rubaniklv@tut.by
Ардинцева Оксана Александровна, аспирант ФГБОУ ВО Ростовский государственный медицинский университет Минздрава России.
Адрес: 344012, Россия, Ростов-на-Дону, ул. Мечникова, д. 43/38/2. Телефон: 8 (918) 502-34-26. E-mail: ardintsevadoc@yandex.ru

Для цитирования: Дубровина С.О., Рубаник Л.В., Aрдинцева О.А. Актуальные вопросы хламидийной инфекции. Акушерство и гинекология. 2019; 5: 36-42.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.5.36-42

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.