ISSN 0300-9092 (Print)
ISSN 2412-5679 (Online)

Синдром поликистозных яичников: стромальный фиброз, ремоделирование внеклеточного матрикса и современные методы морфологической оценки

Буланов Д.В., Терещенко В.А., Абрамян С.А.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Минздрава России (Пироговский Университет), Москва, Россия

Цель. Систематизировать современные данные (2020–2025 гг.) о корковом фиброзе и утолщении белочной оболочки яичника при синдроме поликистозных яичников (СПЯ), оценках коллагенового матрикса методами пикросириус‑красного под линейно поляризованным светом (PSR‑PL) и оптической микроскопии второй гармоники (SHG), а также их связи с гиперандрогенией и механобиологией стромы.
Материалы и методы. Проведен целенаправленный поиск публикаций в PubMed, Scopus и eLibrary (2020–2025 гг.) с использованием комбинаций ключевых слов: PCOS, ovarian cortex/capsule, tunica albuginea, fibrosis, collagen morphometry, picrosirius red, polarized light, second harmonic generation, hyperandrogenism, elastography. В обзор включены оригинальные исследования, метааналитические и методические работы, где применялись количественные метрики PSR‑PL (доля «толстых» волокон, соотношение I/III, ориентация/анизотропия, фрактальная размерность) и/или SHG (плотность, индекс выравнивания, прямолинейность/извилистость) и их корреляции с биохимическими и фенотипическими признаками СПЯ.
Результаты. При СПЯ фиксируются: (i) увеличение толщины белочной оболочки и корковый фиброз со смещением к коллагену I и ростом выравнивания волокон; (ii) конвергенция метрик PSR‑PL и SHG, указывающая на повышение жесткости стромы; (iii) положительные ассоциации количественных параметров коллагена с биохимической гиперандрогенией в различных фенотипах СПЯ; (iv) приемлемая воспроизводимость цифровых метрик при стандартизации окраски/поляризационных настроек и алгоритмов сегментации (CT‑FIRE/CurveAlign, CNN‑подходы); (v) признаки обратимости в доклинических моделях гиперандрогении, где антифибротические/эндокринные вмешательства снижают коллагеновую нагрузку и частично нормализуют морфометрию. Выявлены пробелы: нехватка унифицированных порогов для диагностической стратификации, ограниченная многоцентровая валидация, малые выборки и редкая кросс‑верификация с эластографией.
Заключение. Корковый фиброз и утолщение белочной оболочки – воспроизводимые морфологические маркеры СПЯ, патогенетически связанные с гиперандрогенией и ригидностью стромы. Стандартизованная морфометрия коллагена по PSR‑PL/SHG с отчетом ключевых метрик и параллельной оценкой гормонального статуса и эластографии представляется перспективной для диагностической верификации, фенотипирования и мониторинга терапии. Необходимы многоцентровые исследования с унификацией протоколов и определением клинически значимых пороговых значений.

Вклад авторов. Буланов Д.В. – концептуализация исследования и разработка его структуры, критическая доработка и редактирование рукописи; Терещенко В.А. – систематизация и анализ литературных источников, подготовка основного текста обзора, форматирование и оформление статьи; Абрамян С.А. – отбор и анализ научной литературы, участие в подготовке текста рукописи.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование. Внешнее финансирование отсутствует.
Генеративный искусственный интеллект. При подготовке представленной научной статьи инструменты искусственного интеллекта, включая генеративные языковые модели, не использовались.
Для цитирования: Буланов Д.В., Терещенко В.А., Абрамян С.А. Синдром поликистозных яичников: стромальный фиброз, ремоделирование внеклеточного матрикса и 
современные методы морфологической оценки.
Акушерство и гинекология. 2026; 7: 24-30
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2026.33

Ключевые слова

синдром поликистозных яичников
корковый фиброз
белочная оболочка яичника
коллаген
пикросириус‑красный
поляризационная микроскопия
микроскопия второй гармоники
гиперандрогения
эластография

Список литературы

  1. Stener-Victorin E., Teede H., Norman R.J., Legro R., Goodarzi M.O., Dokras A. et al. Polycystic ovary syndrome. Nat. Rev. Dis. Primers. 2024; 10(1): 27. https://dx.doi.org/10.1038/s41572-024-00511-3
  2. Синдром поликистозных яичников. Клинические рекомендации. Акушерство и гинекология. 2025; 10 (Приложение. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2025.302
  3. Teede H.J., Tay C.T., Laven J.J.E., Dokras A., Moran L.J., Piltonen T.T. et al. Recommendations from the 2023 international evidence-based guideline for the assessment and management of polycystic ovary syndrome. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2023; 108(10): 2447-69. https://dx.doi.org/10.1210/clinem/dgad463
  4. Попов А.А., Овчаренко Д.В., Коваль А.А., Тюрина С.С. Роль хирургических методов лечения в восстановлении естественной фертильности у пациенток с синдромом поликистозных яичников. Российский вестник акушера-гинеколога. 2020; 20(1): 27-31. https://dx.doi.org/10.17116/rosakush20202001127
  5. Пустотина О.А. Инозитол и липоевая кислота в лечении инсулинорезистентности у женщин с синдромом поликистозных яичников. Акушерство и гинекология. 2020; 12: 209-16. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.12.209-216
  6. Zhu T., Goodarzi M.O. Causes and consequences of polycystic ovary syndrome: insights from Mendelian randomization. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2022; 107(3): e899-e911. https://dx.doi.org/10.1210/clinem/dgab757
  7. Чернуха Г.Е., Найдукова А.А., Каприна Е.К., Мирошина Е.Д., Донников А.Е. Молекулярно-генетические и эндокринные предикторы восстановления регулярного менструального ритма на фоне терапии метформином при синдроме поликистозных яичников. Акушерство и гинекология. 2022; 3: 80-8. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.3.80-88
  8. Liu J., Qu T., Li Z., Yu L., Zhang S., Yuan D. et al. Serum kisspeptin levels in polycystic ovary syndrome: a meta-analysis. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2021; 47(6): 2157-65. https://dx.doi.org/10.1111/jog.14767
  9. Sun Y., Gao S., Ye C., Zhao W. Gut microbiota dysbiosis in polycystic ovary syndrome: mechanisms of progression and clinical applications. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2023; 13: 1142041. https://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2023.1142041
  10. Кириллова Е.Д., Вторушина В.В., Кречетова Л.В., Иванец Т.Ю., Чернуха Г.Е. Избыток жировой ткани и хроническое субклиническое воспаление при синдроме поликистозных яичников. Акушерство и гинекология. 2023; 4: 111-9. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2023.56
  11. Liu Y., Zhu J., Yang Y., Chen Z., Zhou Y., Fei W. et al. Extracellular matrix dysregulation in PCOS: pathogenesis, therapeutic strategies, and innovative technologies. J. Biol. Eng. 2025; 19(1): 61. https://dx.doi.org/10.1186/s13036-025-00533-9
  12. Cao P., Yang W., Wang P., Li X., Nashun B. Characterization of DNA methylation and screening of epigenetic markers in polycystic ovary syndrome. Front. Cell. Dev. Biol. 2021; 9: 664843. https://dx.doi.org/10.3389/fcell.2021.664843
  13. Чернуха Г.Е., Найдукова А.А., Каприна Е.К., Донников А.Е. Молекулярно-генетические предикторы формирования синдрома поликистозных яичников и его андрогенных фенотипов. Акушерство и гинекология. 2021; 4: 120-7. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.4.120-127
  14. Gu M., Ma Y., Zhou T., Huang Y., Zhao X., Chen Y. et al. Ovarian fibrosis: molecular mechanisms and potential therapeutic targets. J. Ovarian Res. 2024; 17(1): 139. https://dx.doi.org/10.1186/s13048-024-01448-7
  15. Ouni E., Peaucelle A., Haas K.T., Van Kerk O., Dolmans M.M., Tuuri T. et al. A blueprint of the topology and mechanics of the human ovary for next-generation bioengineering and diagnosis. Nat. Commun. 2021; 12: 5603. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-021-25934-4
  16. Zhou J., Tan Y., Wang X., Zhu M. Paeoniflorin attenuates DHEA-induced polycystic ovary syndrome via inactivation of TGF-β1/Smads signaling pathway in vivo. Aging (Albany NY). 2021; 13(5): 7084-95. https://dx.doi.org/10.18632/aging.202564
  17. Han S., Wang S., Fan X., Chen M., Wang X., Huang Y. et al. Abnormal expression of prolyl oligopeptidase (POP) and its catalytic products Ac-SDKP contributes to the ovarian fibrosis change in polycystic ovary syndrome (PCOS) mice. Biomedicines. 2023; 11(7): 1927. https://dx.doi.org/10.3390/biomedicines11071927
  18. Umehara T., Winstanley Y.E., Andreas E., Morimoto A., Williams E.J., Smith K.M. et al. Female reproductive life span is extended by targeted removal of fibrotic collagen from the mouse ovary. Sci. Adv. 2022; 8(24): eabn4564. https://dx.doi.org/10.1126/sciadv.abn4564
  19. Rittié L. Method for picrosirius red-polarization detection of collagen fibers in tissue sections. Methods Mol. Biol. 2017; 1627: 395-407. https://dx.doi.org/10.1007/978-1-4939-7113-8_26
  20. Greiner C., Fenk S., Teupser D., Holdt L.M., Albrecht T. Robust quantitative assessment of collagen fibers with picrosirius red stain and linearly polarized light as demonstrated on atherosclerotic plaque samples. PLoS One. 2021; 16(3): e0248068. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0248068
  21. Aghigh A., Bancelin S., Rivard M., Pinsard M., Ibrahim H., Légaré F. Second harmonic generation microscopy: a powerful tool for bio-imaging. Biophys. Rev. 2023; 15(1): 43-70. https://dx.doi.org/10.1007/s12551-022-01041-6
  22. Nejim Z., Navarro L., Morin C., Badel P. Quantitative analysis of second harmonic generated images of collagen fibers: a review. Res. Biomed. Eng. 2023; 39: 273-295. https://dx.doi.org/10.1007/s42600-022-00250-y
  23. Cicchi R., Baria E., Mari M., Chorvat D., Dey P., Karasawa K. et al. Extraction of collagen morphological features from second-harmonic generation microscopy images via GLCM and CT analyses: a cross-laboratory study. J. Biophotonics. 2024; 17(8): e202400090. https://dx.doi.org/10.1002/jbio.202400090
  24. Brandt D., Nikishina A.A., Bias A., Günther R., Hauser A.E., Duda G.N. et al. Segmentation-free Radon transform algorithm to detect orientation and size of tissue structures in multiphoton microscopy images. J. Biomed. Opt. 2025; 30(8): 086001. https://dx.doi.org/10.1117/1.JBO.30.8.086001
  25. Stanciu S.G., Ávila F.J., Hristu R., Bueno J.M. A study on image quality in polarization-resolved second harmonic generation microscopy. Sci. Rep. 2017; 7(1): 15476. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-017-15257-0
  26. Cisek R., Joseph A., Harvey M., Tokarz D. Polarization-sensitive second harmonic generation microscopy for investigations of diseased collagenous tissues. Front. Phys. 2021; 9: 726996. https://dx.doi.org/10.3389/fphy.2021.726996
  27. Bueno J.M., Ávila F.J., del Barco O. Collagen organization, polarization sensitivity and image generation in second harmonic microscopy. Photonics. 2022; 9(10): 672. https://dx.doi.org/10.3390/photonics9100672
  28. Del Valle J.S., Van Helden R.W., Moustakas I., Wei F., Asseler J.D., Metzemaekers J. et al. Ex vivo removal of pro-fibrotic collagen and rescue of metabolic function in human ovarian fibrosis. iScience. 2025; 28(3): 112020. https://dx.doi.org/10.1016/j.isci.2025.112020
  29. Hristu R., Stanciu S.G., Dumitru A., Eftimie L.G., Paun B., Tranca D.E. et al. PSHG-TISS: a collection of polarization-resolved second harmonic generation microscopy images of fixed tissues. Sci. Data. 2022; 9(1): 376. https://dx.doi.org/10.1038/s41597-022-01477-1
  30. Winkler J., Abisoye-Ogunniyan A., Metcalf K.J., Werb Z. Concepts of extracellular matrix remodelling in tumour progression and metastasis. Nat. Commun. 2020; 11(1): 5120. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-020-18794-x
  31. Sun B. The mechanics of fibrillar collagen extracellular matrix. Cell. Rep. Phys. Sci. 2021; 2(8): 100515. https://dx.doi.org/10.1016/j.xcrp.2021.100515
  32. Herrera J., Henke C.A., Bitterman P.B. Extracellular matrix as a driver of progressive fibrosis. J. Clin. Invest. 2018; 128(1): 45-53. https://dx.doi.org/10.1172/JCI93557
  33. Panciera T., Azzolin L., Cordenonsi M., Piccolo S. Mechanobiology of YAP and TAZ in physiology and disease. Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. 2017; 18(12): 758-770. https://dx.doi.org/10.1038/nrm.2017.87
  34. Cai X., Wang K.C., Meng Z. Mechanoregulation of YAP and TAZ in cellular homeostasis and disease progression. Front. Cell. Dev. Biol. 2021; 9: 673599. https://dx.doi.org/10.3389/fcell.2021.673599
  35. Wang D., Zhu Z., Fu Y., Zhang Q., Zhang Y., Wang T. et al. Bromodomain-containing protein 4 activates androgen receptor transcription and promotes ovarian fibrosis in PCOS. Cell. Rep. 2023; 42(9): 113090. https://dx.doi.org/10.1016/j.celrep.2023.113090
  36. Ji S.Y., Liu X.M., Li B.T., Zhang Y.L., Liu H.B., Zhang Y.C. et al. The polycystic ovary syndrome-associated gene Yap1 is regulated by gonadotropins and sex steroid hormones in hyperandrogenism-induced oligo-ovulation in mouse. Mol. Hum. Reprod. 2017; 23(10): 698-707. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gax046
  37. Wen J., Cheng G., Zhang Y., Liu S. Hippo signaling pathway in polycystic ovary syndrome. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2025; 16: 1623143. https://dx.doi.org/10.3389/fendo.2025.1623143
  38. Yuan J., Li Z., Yu Y., Wang X., Zhao Y. Natural compounds in the management of polycystic ovary syndrome: a comprehensive review of hormonal regulation and therapeutic potential. Front. Nutr. 2025; 12: 1520695. https://dx.doi.org/10.3389/fnut.2025.1520695
  39. Gündoğdu A.Ç., Arı N.S., Koçak A., Şenol G., Höbel A., Eldiven Ö. et al. Pirfenidone reduces ovarian fibrosis and improves PCOS in letrozole-induced rat model. Biomol. Biomed. 2025; 25(11): 2558-69. https://dx.doi.org/10.17305/bb.2025.12676

Поступила 03.02.2026

Принята в печать 05.06.2026

Об авторах / Для корреспонденции

Буланов Дмитрий Владимирович, к.м.н., кафедра патологической анатомии и клинической патологической анатомии, РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России (Пироговский Университет), 117513, Россия, Москва, ул. Островитянова, д. 1, dbulanov81@gmail.com, https://orcid.org/0009-0005-3772-6643
Терещенко Варвара Алексеевна, РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России (Пироговский Университет), 117513, Россия, Москва, ул. Островитянова, д. 1, v.a.tereshchenko@mail.ru, https://orcid.org/0009-0007-8054-9958
Абрамян София Арменовна, РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России (Пироговский Университет), 117513, Россия, Москва, ул. Островитянова, д. 1, abramyansofia2005@gmail.com, https://orcid.org/0009-0007-8421-0476
Автор, ответственный за переписку: Варвара Алексеевна Терещенко, v.a.tereshchenko@mail.ru

Также по теме