Роль микроРНК, регулирующих гены окислительного стресса при синдроме поликистозных яичников
Ломтева С.В., Сагамонов А.С., Харченко Е.Ю.
Цель. Обобщить современные данные о микроРНК, регулирующих гены окислительного стресса, при синдроме поликистозных яичников (СПЯ) и оценить их диагностическую и терапевтическую значимость.
Материалы и методы. Проведен поиск публикаций 2016–2025 гг. в PubMed, Scopus, Web of Science, eLIBRARY и Google Scholar, а также в базах HMDD, PCOSKB и miRTargetLink 2.0 по ключевым словам: СПЯ, окислительный стресс, антиоксиданты, hsa-miR, miRNA, microRNA, микроРНК.
Результаты. По данным литературы и специализированных баз данных miR-145, miR-16, miR-323-3p и miR-324-3p вовлечены в регуляцию пролиферации, апоптоза и стероидогенеза клеток фолликулярного комплекса при СПЯ. Для miR-222-3p, miR-27a, miR-146a, miR-93 и miR-21 описаны связи с генами антиоксидантной защиты, включая SOD2, CAT и NFE2L2, и редокс-зависимыми сигнальными
путями.
Заключение. МикроРНК, ассоциированные с окислительным стрессом, являются перспективными кандидатами для диагностической и прогностической оценки СПЯ, однако их клиническая применимость требует дальнейшей валидации в стандартизированных проспективных исследованиях.
Вклад авторов. Ломтева С.В. – концепция статьи, написание текста; Сагамонов А.С., Харченко Е.Ю. – сбор и обработка материала, написание текста. Все авторы одобрили окончательную версию рукописи. Авторы проверили все внесенные изменения, несут ответственность за содержание, интерпретацию данных и окончательные выводы.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии возможных конфликтов интересов.
Финансирование. Исследование выполнено при финансовой поддержке Российского научного фонда, проект РНФ № 23–15-00464.
Генеративный искусственный интеллект. При подготовке рукописи использовался инструмент искусственного интеллекта для языковой редакции текста и проверки правильности цитирования списка литературы.
Для цитирования: Ломтева С.В., Сагамонов А.С., Харченко Е.Ю. Роль микроРНК,
регулирующих гены окислительного стресса при синдроме поликистозных яичников.
Акушерство и гинекология. 2026; 7: 31-37
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2025.345
Ключевые слова
Список литературы
- Teede H.J., Tay C.T., Laven J.J.E., Dokras A., Moran L.J., Piltonen T.T. et al. Recommendations from the 2023 International Evidence-based Guideline for the Assessment and Management of Polycystic Ovary Syndrome. Hum. Reprod. 2023; 38(9): 1655-79. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dead156
- Адамян Л.В., Андреева Е.Н., Абсатарова Ю.С., Григорян О.Р., Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Сутурина Л.В., Филиппов О.С., Шереметьева Е.В., Чернуха Г.Е., Ярмолинская М.И. Клинические рекомендации «Синдром поликистозных яичников». Проблемы Эндокринологии. 2022; 68(2): 112-27. https://dx.doi.org/10.14341/probl12874
- Чернуха Г.Е., Найдукова А.А., Каприна Е.К., Донников А.Е. Молекулярно-генетические предикторы формирования синдрома поликистозных яичников и его андрогенных фенотипов. Акушерство и гинекология. 2021; 4: 120-7. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.4.120-127
- Zeber-Lubecka N., Ciebiera M., Hennig E.E. Polycystic ovary syndrome and oxidative stress – from bench to bedside. Int. J. Mol. Sci. 2023; 24(18): 14126. https://dx.doi.org/10.3390/ijms241814126
- Rudnicka E., Duszewska A.M., Kucharski M., Tyczyński P., Smolarczyk R. Oxidative stress and reproductive function: oxidative stress in polycystic ovary syndrome. Reproduction. 2022; 164(6): F145-54. https://dx.doi.org/10.1530/REP-22-0152
- Gao Y., Zou Y., Wu G., Zheng L. Oxidative stress and mitochondrial dysfunction of granulosa cells in polycystic ovarian syndrome. Front. Med. (Lausanne). 2023; 10: 1193749. https://dx.doi.org/10.3389/fmed.2023.1193749
- Bartel D.P. Metazoan microRNAs. Cell. 2018; 173(1): 20-51. https://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2018.03.006
- Gao H., Jiang J., Shi Y., Chen J., Zhao L., Wang C. The LINC00477/miR-128 axis promotes the progression of polycystic ovary syndrome by regulating ovarian granulosa cell proliferation and apoptosis. Reprod. Biol. Endocrinol. 2021; 19(1): 29. https://dx.doi.org/10.1186/s12958-021-00718-z
- Hess A.L., Larsen L.H., Udesen P.B., Sanz Y., Larsen T.M., Dalgaard L.T. Levels of circulating miR‐122 are associated with weight loss and metabolic syndrome. Obesity. 2020; 28(3): 493-501. https://dx.doi.org/10.1002/oby.22704
- Гутникова Л.В., Шкурат Т.П. Идентификация транскриптов микроРНК в гранулезных клетках кумулюса при синдроме поликистозных яичников. Живые и биокосные системы. 2025; 51. https://dx.doi.org/10.18522/2308-9709-2025-51-16
- Cai G., Ma X., Chen B., Huang Y., Liu S., Yang H. et al. MicroRNA-145 negatively regulates cell proliferation through targeting IRS1 in isolated ovarian granulosa cells from patients with polycystic ovary syndrome. Reprod. Sci. 2017; 24(6): 902-10. https://dx.doi.org/10.1177/1933719116673197
- Fu X., He Y., Wang X., Peng D., Chen X., Li X. et al. MicroRNA-16 promotes ovarian granulosa cell proliferation and suppresses apoptosis through targeting PDCD4 in polycystic ovarian syndrome. Cell. Physiol. Biochem. 2018; 48(2): 670-82. https://dx.doi.org/10.1159/000491894
- Wang T., Liu Y., Lv M., Xing Q., Zhang Z., He X. et al. miR-323-3p regulates the steroidogenesis and cell apoptosis in polycystic ovary syndrome (PCOS) by targeting IGF-1. Gene. 2019; 683: 87-100. https://dx.doi.org/10.1016/j.gene.2018.10.006
- Jiang Y.C., Ma J.X. The role of MiR-324-3p in polycystic ovary syndrome (PCOS) via targeting WNT2B. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2018; 22(11): 3286-93. https://dx.doi.org/10.26355/eurrev_201806_15147
- Wang M., Zhang S. MiR-145 on the proliferation of ovarian cancer cells by regulating the expression of MMP-2/MMP-9. Cell. Mol. Biol. 2021; 67(6): 141-8. https://dx.doi.org/10.14715/cmb/2021.67.6.19
- Naji M., Nekoonam S., Aleyasin A., Arefian E., Mahdian R., Azizi E. et al. Expression of miR-15a, miR-145, and miR-182 in granulosa-lutein cells, follicular fluid, and serum of women with polycystic ovary syndrome (PCOS). Arch. Gynecol. Obstet. 2018; 297(1): 221-31. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-017-4570-y
- Chelegahi A.M., Ebrahimi S.O., Reiisi S., Nezamnia M. A glance into the roles of microRNAs (exosomal and non-exosomal) in polycystic ovary syndrome. Obstet. Gynecol. Sci. 2024; 67(1): 30-48. https://dx.doi.org/10.5468/ogs.23193
- He M., Wu N., Leong M.C., Zhang W., Ye Z., Li R. et al. miR-145 improves metabolic inflammatory disease through multiple pathways. J. Mol. Cell Biol. 2020; 12(2): 152-62. https://dx.doi.org/10.1093/jmcb/mjz015
- Wang W., Ge L., Zhang L., Liu L., Zhang X., Ma X. MicroRNA-16 represses granulosa cell proliferation in polycystic ovarian syndrome through inhibition of the PI3K/Akt pathway by downregulation of Apelin13. Hum. Fertil. (Camb). 2023; 26(3): 611-21. https://dx.doi.org/10.1080/14647273.2021.1998661
- Zehra N., Azhar A., Rehman R. MicroRNA-16, Programmed Cell Death Protein-4 (PDCD-4) and polycystic ovarian syndrome. J. Coll. Physicians Surg. Pak. 2020; 30(8): 880-1. https://dx.doi.org/10.29271/jcpsp.2020.08.880
- Hasegawa T., Kamada Y., Hosoya T., Fujita S., Nishiyama Y., Iwata N. et al. A regulatory role of androgen in ovarian steroidogenesis by rat granulosa cells. J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 2017; 172: 160-5. https://dx.doi.org/10.1016/j.jsbmb.2017.07.002
- Zhao Y., Tao M., Wei M., Du S., Wang H., Wang X. Mesenchymal stem cells derived exosomal miR-323-3p promotes proliferation and inhibits apoptosis of cumulus cells in polycystic ovary syndrome (PCOS). Artif. Cells Nanomed. Biotechnol. 2019; 47(1): 3804-13. https://dx.doi.org/10.1080/21691401.2019.1669619
- Wu L., Tu Z., Bao Y., Zhai Q., Jin L. Long noncoding RNA NEAT1 decreases polycystic ovary syndrome progression via the modulation of the microRNA‐324‐3p and BRD3 axis. Cell Biol. Int. 2022; 46(12): 2075-84. https://dx.doi.org/10.1002/cbin.11893
- Chakraborti S., ed. Handbook of oxidative stress in cancer: therapeutic aspects. Singapore: Springer Nature; 2022. 4120 p. https://dx.doi.org/10.1007/978-981-16-5422-0
- Carbonell T., Gomes A.V. MicroRNAs in the regulation of cellular redox status and its implications in myocardial ischemia-reperfusion injury. Redox Biol. 2020; 36: 101607. https://dx.doi.org/10.1016/j.redox.2020.101607
- Kushwaha P.P., Verma S., Gupta S. MicroRNA targeting nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidases in cancer. Antioxid. Redox Signal. 2020; 32(18): 1328-43. https://dx.doi.org/10.1089/ars.2019.7918
- Youn S.W., Li Y., Kim Y.M., Sudhahar V., Abdelsaid K., Kim H.W. et al. Modification of cardiac progenitor cell-derived exosomes by miR-322 provides protection against myocardial infarction through Nox2-dependent angiogenesis. Antioxidants. 2019; 8(1): 18. https://dx.doi.org/10.3390/antiox8010018
- Xu X., Zhang G., Chen Y., Xu W., Liu Y., Ji G. et al. Can proline dehydrogenase – a key enzyme involved in proline metabolism – be a novel target for cancer therapy? Front. Oncol. 2023; 13: 1254439. https://dx.doi.org/10.3389/fonc.2023.1254439
- Kern F., Aparicio-Puerta E., Li Y., Fehlmann T., Kehl T., Wagner V. et al. miRTargetLink 2.0 – interactive miRNA target gene and target pathway networks. Nucleic acids research. 2021; 49(W1): W409-16. https://dx.doi.org/10.1093/nar/gkab297
- Lee S. Cardiovascular disease and miRNAs: possible oxidative stress-regulating roles of miRNAs. Antioxidants. 2024; 13(6): 656. https://dx.doi.org/10.3390/antiox13060656
- Saha S. Role of microRNA in oxidative stress. Stresses. 2024; 4(2): 269-81. https://dx.doi.org/10.3390/stresses4020016
- Minjares M., Wu W., Wang J.M. Oxidative stress and MicroRNAs in endothelial cells under metabolic disorders. Cells. 2023; 12(9): 1341. https://dx.doi.org/10.3390/cells12091341
- Włodarski A., Strycharz J., Wróblewski A., Kasznicki J., Drzewoski J., Śliwińska A. The role of microRNAs in metabolic syndrome-related oxidative stress. Int. J. Mol. Sci. 2020; 21(18): 6902. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21186902
- Matoušková P., Hanousková B., Skálová L. MicroRNAs as potential regulators of glutathione peroxidases expression and their role in obesity and related pathologies. Int. J. Mol. Sci. 2018; 19(4): 1199. https://dx.doi.org/10.3390/ijms19041199
- Verma S., Thompson C.L., Fu P., MacLennan G.T., Gupta S. miRNAs regulating GSTP1 as potential diagnostic biomarkers in prostate cancer. Prostate. 2025; 85(13): 1235-44. https://dx.doi.org/10.1002/pros.70011
- Zargari M., Maadi N., Rezapour M., Bagheri A., Fallahpour S., Nosrati M. et al. The regulatory variant-108C/T in the promoter of paraoxonase 1 (PON1) gene has a more important role in regulating PON1 activity compared to rs3735590
- in 3ʹ-UTR in patients with coronary artery disease. Adv. Biomed. Res. 2024; 13(1): 38. https://dx.doi.org/10.4103/abr.abr_391_22
- Joseph S., Barai R.S., Bhujbalrao R., Idicula-Thomas S. PCOSKB: A KnowledgeBase on genes, diseases, ontology terms and biochemical pathways associated with PolyCystic Ovary Syndrome. Nucleic Acids Res. 2015; 44(D1): D1032-5. https://dx.doi.org/10.1093/nar/gkv1146
- Cirillo F., Catellani C., Lazzeroni P., Sartori C., Nicoli A., Amarri S. et al. MiRNAs regulating insulin sensitivity are dysregulated in polycystic ovary syndrome ovaries and are associated with markers of inflammation and insulin sensitivity. Front. Endocrinol. 2019; 10: 879. https://dx.doi.org/10.3389/fendo.2019.00879
- Wang Q., Fang C., Zhao Y., Liu Z. Correlation study on serum miR-222-3p and glucose and lipid metabolism in patients with polycystic ovary syndrome. BMC Women's Health. 2022; 22(1): 398. https://dx.doi.org/10.1186/s12905-022-01912-w
- Dubois-Deruy E., Cuvelliez M., Fiedler J., Charrier H., Mulder P., Hebbar E. et al. MicroRNAs regulating superoxide dismutase 2 are new circulating biomarkers of heart failure. Sci Rep. 2017; 7(1): 14747. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-017-15011-6
- Ломтева С.В. Роль генов, связанных с окислительным стрессом, в синдроме поликистозных яичников: понимание генетической предрасположенности и патогенеза. Экологическая генетика. 2025; 23(3): 303-10. https://dx.doi.org/10.17816/ecogen679724
- Tabrizi Z.P.F., Miraj S., Tahmasebian S., Ghasemi S. Plasma levels of miR-27a, miR-130b, and miR-301a in polycystic ovary syndrome. Int. J. Mol. Cell. Med. 2020; 9(3): 198-206. https://dx.doi.org/10.22088/IJMCM.BUMS.9.3.198
- Wang M., Sun J., Xu B., Chrusciel M., Gao J., Bazert M. et al. Functional characterization of MicroRNA-27a-3p expression in human polycystic ovary syndrome. Endocrinology. 2018; 159(1): 297-309. https://dx.doi.org/10.1210/en.2017-00219
- Lavanya K.K., Palaniappan N., Vinodhini V., Silambanan S. Serum microRNAs as diagnostic markers in polycystic ovary syndrome: a narrative review. JCDR. 2025; 19(1): 01-06. https://dx.doi.org/10.7860/JCDR/2025/74412.20507
- Curtale G., Rubino M., Locati M. MicroRNAs as molecular switches in macrophage activation. Front. Immunol. 2019; 10: 799. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2019.00799
- Zhao Y., Dong D., Reece E.A., Wang A.R., Yang P. Oxidative stress-induced miR-27a targets the redox gene nuclear factor erythroid 2-related factor 2 in diabetic embryopathy. Am. J. Obstet. Gynecol. 2018; 218(1): 136.e1-10. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2017.10.040
- Banerjee S., Cui H., Xie N., Tan Z., Yang S., Icyuz M. et al. Emerging roles of microRNAs in the regulation of Toll-like receptor (TLR)-signaling. Front. Biosci. (Landmark Ed). 2021; 26(4): 771-96. https://dx.doi.org/10.2741/4917
- Cho S.H., An H.J., Kim K.A., Ko J.J., Kim J.H., Kim Y.R. et al. Single nucleotide polymorphisms at miR-146a/196a2 and their primary ovarian insufficiency-related target gene regulation in granulosa cells. PLoS One. 2017; 12(8): e0183479. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0183479
- Ashrafnezhad Z., Naji M., Aleyasin A., Hedayatpour A., Mahdavinezhad F., Gharaei R. et al. Evaluating the differential expression of miR-146a, miR-222, and miR-9 in matched serum and follicular fluid of polycystic ovary syndrome patients: profiling and predictive value. Int. J. Mol. Cell. Med. 2022; 11(4):320-33. https://dx.doi.org/10.22088/IJMCM.BUMS.11.4.320
- Ciesielska S., Ślezak-Prochazka I., Bil P., Rzeszowska-Wolny J. Micro RNAs in regulation of cellular redox homeostasis. Int. J. Mol. Sci. 2021; 22(11): 6022. https://dx.doi.org/10.3390/ijms22116022
- Qin Y., Wang Y., Zhao H., Yang Z., Kang Y. Aberrant miRNA-mRNA regulatory network in polycystic ovary syndrome is associated with markers of insulin sensitivity and inflammation. Ann. Transl. Med. 2021; 9(18): 1405. https://dx.doi.org/10.21037/atm-21-1288
- Bao C., Chen J., Chen D., Lu Y., Lou W., Ding B. et al. MiR-93 suppresses tumorigenesis and enhances chemosensitivity of breast cancer via dual targeting E2F1 and CCND1. Cell Death Dis. 2020; 11(8): 618. https://dx.doi.org/10.1038/s41419-020-02855-6
- Tan W., Dai F., Yang D., Deng Z., Gu R., Zhao X. et al. MiR-93-5p promotes granulosa cell apoptosis and ferroptosis by the NF-kB signaling pathway in polycystic ovary syndrome. Front. Immunol. 2022; 13: 967151. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2022.967151
- Aldakheel F.M., Abuderman A.A., Alduraywish S.A., Xiao Y., Guo W.W. MicroRNA-21 inhibits ovarian granulosa cell proliferation by targeting SNHG7 in premature ovarian failure with polycystic ovary syndrome. J. Reprod. Immunol. 2021; 146: 103328. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2021.103328
- La Sala L., Mrakic-Sposta S., Micheloni S., Prattichizzo F., Ceriello A. Glucose-sensing microRNA-21 disrupts ROS homeostasis and impairs antioxidant responses in cellular glucose variability. Cardiovasc Diabetol. 2018; 17: 105. https://dx.doi.org/10.1186/s12933-018-0748-2
- Тимофеева А.В., Гусар В.А., Прозоровская К.Н. , Балашов И.С., Ломова Н.А., Ганичкина М.Б., Амирасланов Э.Ю., Волочаева М.В., Низяева Н.В., Боровиков П.И., Франкевич В.Е., Тютюнник В.Л., Кан Н.Е., Бобров М.Ю., Сухих Г.Т. Идентификация ассоциированных с преэклампсией микроРНК методом глубокого секвенирования и количественной полимеразной цепной реакции в реальном времени. Акушерство и гинекология. 2016; 8: 60-70. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.8.60-70
- Гусар В.А., Тимофеева А.В., Кан Н.Е., Чаговец В.В., Ганичкина М.Б., Франкевич В.Е. Профиль экспрессии плацентарных микроРНК – регуляторов окислительного стресса при синдроме задержки роста плода. Акушерство и гинекология. 2019; 1: 74-80. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.1.74-80
- Бобров М.Ю., Балашов И.С., Филиппова Е.С., Альмова И.К., Тимофеева А.В., Гусар В.А., Боровиков П.И., Хилькевич Е.Г., Чупрынин В.Д., Павлович С.В. Оценка экспрессии микроРНК в очагах ретроцервикального эндометриоза. Акушерство и гинекология. 2018; 6: 55-61. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2018.6.55-61
- Филиппова Е.С., Межлумова Н.А., Гамисония А.М., Эльдаров Ч.М., Кузнецова М.В., Трофимов Д.Ю., Павлович С.В., Козаченко И.Ф., Бобров М.Ю., Адамян Л.В. Профилирование микроРНК и мРНК в тканях эутопического и эктопического эндометрия при эндометриоме. Проблемы репродукции. 2019; 25(2): 27-45. https://dx.doi.org/10.17116/repro20192502127
Поступила 28.11.2025
Принята в печать 26.06.2026
Об авторах / Для корреспонденции
Ломтева Светлана Витальевна, к.б.н., с.н.с. лаборатории биологии развития и организации генома, Южный федеральный университет, 344034, Россия, Ростов-на-Дону, пр. Стачки, д. 194/1; эмбриолог, Центр репродукции человека и ЭКО, 344068, Россия, Ростов-на-Дону, ул. Бодрая, д. 90, +7(919)874-23-72, embryolab61@gmail.com, https://orcid.org/0000-0002-8791-1936Сагамонов Артур Сергеевич, аспирант кафедры акушерства и гинекологии № 3, Ростовский государственный медицинский университет Минздрава России,
344022, Россия, Ростов-на-Дону, пер. Нахичеванский, д. 29, +7(988)537-7-008, a.sagamonov@gmail.com, https://orcid.org/0009-0009-3668-3417
Харченко Евгения Юрьевна, аспирант кафедры генетики, Южный федеральный университет, 344034, Россия, Ростов-на-Дону, пр. Стачки, д. 194/1, +7(928)604-31-50, jenya.xarchenko@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0002-4278-8575



