Преимплантационный анализ транскриптома бластоцисты

Волкова А.Г., Макарова Н.П., Тимофеева А.В., Городнова Е.А.

ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И Кулакова» Минздрава России, Москва, Россия
Данный обзор посвящен изучению влияния различных факторов на экспрессию генов бластоцисты человека и выявлению транскриптов, которые могут являться потенциальными маркерами успешной имплантации. По имеющимся в мировой научной литературе данным показано, что преимплантационный анализ транскриптома бластоцисты может быть инструментом для оценки имплантационного потенциала бластоцист.

Ключевые слова

транскриптом
бластоциста
вспомогательные репродуктивные технологии
экстракорпоральное оплодотворение

Качественная оценка эмбрионов на стадии бластоцисты является обязательным этапом отбора эмбрионов перед имплантацией в рамках процедуры экстракорпорального оплодотворения (ЭКО).

Активация эмбрионального генома носит генноспецифичный характер, начинается на стадии двух бластомеров для обеспечения последующего деления клеток эмбриона и переходит ко второй фазе выраженных изменений транскрипционного профиля на 4–8 клеточной стадиях развития, отражающих начало динамических морфологических изменений и приводящих к образованию бластоцисты [1, 2, 3]. Сравнение транскрипционного профиля отдельных эмбрионов человека на стадии четырех бластомеров и на стадии бластоцисты показало, что для каждой из этих стадий транскриптом специфичен, при этом транскриптомы отдельных эмбрионов, находящихся на одной и той же стадии развития, могут существенно различаться [4].

Влияние различных факторов на экспрессию генов бластоцисты человека в контексте вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ)

Наиболее изученными причинами неудачной имплантации эмбрионов в ходе ЭКО являются хромосомные аномалии эмбриона, асинхронность жизненной стадии эмбриона и «имплантационного окна» эндометрия матки, а также факторы, связанные с проведением самой процедуры ЭКО [5, 6, 7]. Сбои в активации собственного генома бластоцисты также могут обуславливать неспособность бластоцисты к имплантации и неблагоприятный исход беременности. Оценка транскрипционного профиля бластоцисты перед имплантацией и определение взаимосвязи с наступлением беременности позволит получить информацию о наличии или отсутствии аномалий экспрессии эмбрионального генома. Отбор бластоцист с наивысшим потенциалом к наступлению беременности снизит необходимость повторных переносов эмбрионов, а также частоту нежелательных многоплодных беременностей, которые являются следствием переноса нескольких бластоцист.

Активация эмбрионального генома зависит как от параметров гаметогенеза супружеской пары, так и от средовых факторов; как следствие, от указанных факторов могут зависеть успешная имплантация бластоцисты и исход беременности. Одним из наиболее значимых факторов, с которыми сталкиваются пациенты ВРТ, является снижение вероятности наступления беременности с увеличением возраста пациентки. [8]. Задокументирована прямая корреляция между возрастом матери и частотой хромосомных анеуплоидий эмбриона, приводящих к самопроизвольному прерыванию беременности [9, 10]. Группа ученых из Японии исследовала зависимость уровня экспрессии генов эмбриона в преимплантационном периоде от возраста матери [11]. В исследовании приняли участие 9 супружеских пар, у которых было получено 22 эмбриона на стадии бластоцисты с применением метода интрацитоплазматической инъекции сперматозоида в ооцит (ИКСИ). Использование метода РНК-секвенирования единичной клетки и биоинформатического анализа позволило выявить гены, уровень экспрессии которых был статистически достоверно снижен у пациенток старше 35 лет. Выявленные гены связаны с процессами сборки хроматина, организации хромосом и сегрегации гомологичных хромосом, созданием ДНК-белкового комплекса. Всего идентифицировано более 800 генов со сниженной экспрессией в группе пациенток старше 35 лет. Среди них – гены, кодирующие белок секурина, препятствующий возникновению хромосомных аномалий в митозе и мейозе, и киназу Aurora, обеспечивающую корректное взаимодействие между хромосомами и микротрубочками. Также выявлена обратная корреляция уровня экспрессии генов аутофагии и роста эмбриона с возрастом пациентки. Достоверной корреляции между уровнем экспрессии генома бластоцисты и возрастом отца выявлено не было.

Статистически значимое снижение уровня экспрессии генов бластоцист, полученных от пациенток старше 42 лет, по сравнению с группой пациенток до 30 лет описано в работе McCallie B.R. et al. [12]. Исследование выполнено на материале 12 бластоцист, полученных методом ИКСИ от 12 пациенток старше 42 лет, и 12 бластоцист от шести пациенток младше 30 лет в качестве группы сравнения. По результатам исследования обнаружены 2688 транскриптов, дифференциально экспрессирующихся в рассматриваемых группах. Для 2551 из них (что составляет 95%) уровень экспрессии оказался снижен у пациенток старшей возрастной группы. В бластоцистах пациенток старше 42 лет статистически значимо снижена экспрессия таких генов, как TNFRSF10A, задействованный в регуляции клеточного апоптоза, TSPAN9, значимый для процессов регуляции активации клеток иммунной системы, генов семейства HDAC, задействованных в формировании структуры хроматина, генов ВМР-опосредованного сигнального пути и других (перечень генов приведен в оригинальной публикации).

Наряду с возрастом пациентки факторами, влияющими на транскриптом бластоцисты, имплантацию и исход беременности, могут выступать клинико-анамнестические параметры отца и матери. В работе [13] изучена экспрессия генов бластоцист, полученных от пациентов с поликистозом яичников, мужским бесплодием и идиопатическим бесплодием. В каждую из трех групп, а также в группу контроля включено 50 криоконсервированных бластоцист. Исследование транскриптома проводилось на пуле бластоцист с применением микрочипов. Обнаружена высокая степень корреляционных связей транскрипционного профиля бластоцисты с клинико-анамнестическими данными супружеской пары: так, при поликистозе яичников выявлены изменения уровня экспрессии генов, связанных с сигнальными путями стресса и регуляцией апоптоза. Выявлен повышенный уровень стресс-чувствительного гена ATF3, экспрессия которого ведет к увеличению концентрации белка p53 и запуску апоптотического процесса; тогда как для развивающегося эмбриона регуляция апоптоза имеет критическое значение для выживания и поддержания гомеостаза. Одновременно с повышением уровня экспрессии проапоптотического гена наблюдается снижение экспрессии антиапоптотического гена BCL2L10 и гена HSPA1A, вовлеченного в процесс дифференцировки клеток. В бластоцистах, полученных от пациентов с мужским бесплодием, обнаружены значительные отличия от контроля по представленности транскриптов, ключевых для морфогенеза и пролиферации: повышена экспрессия гена INHBA, кодирующего регулятор пролиферации стромальных клеток гонад; снижена экспрессия генов LEFTY1 и LEFTY2, кодирующих факторы предопределения лево-правосторонней оси. У бластоцист от супружеских пар с идиопатическим бесплодием наблюдается сниженный уровень экспрессии гена адгезии CDH9, участвующего в регуляции морфогенеза и задействованного во внутриклеточных сигнальных путях, а также медиатора клеточной миграции LAMA4, играющего важную роль в органогенезе. Таким образом, для каждого из трех диагнозов наблюдаются изменения транскриптома бластоцисты, способные оказать негативное влияние на развитие и имплантацию эмбриона в силу нарушения клеточной пролиферации, миграции и адгезии.

Роль мужского фактора в детерминировании транскрипционного профиля бластоцисты была подчеркнута в работе Denomme M.M. et al. [14]. В данном исследовании транскриптом бластоцист, полученных от 128 пар с мужским бесплодием (олигоастенотератозооспермия), сравнивали с транскриптомом контрольной группы (118 пар). Статистически значимые (p<0,05) различия в уровне экспрессии зафиксированы для 469 транскриптов, имеющих отношение к процессу клеточного метаболизма в целом. Частота самопроизвольных прерываний беременности в группе с мужским бесплодием составила 14,7% против 2,2% в группе контроля. При этом частота наступления беременности между группами не различалась.

На транскриптом бластоцисты человека также может оказывать влияние среда, в которой культивируется эмбрион до имплантации. В работе Kleijkers S.H. et al. [15] проведено сравнение транскриптомов эмбрионов, культивированных в течение 6 дней в средах HTF (human tubal fluid) и G5 PLUS, по 10 эмбрионов в каждой из двух групп. Эмбрионы из двух групп были сопоставлены друг с другом попарно для сравнения таким образом, чтобы качество бластоцист и использованный метод оплодотворения в паре совпадали, а возраст пациентки различался в пределах 2,8 года. Анализ транскриптомов проводился индивидуально для каждого эмбриона, с использованием РНК-амплификации и микрочипов Agilent. В результате эксперимента между группами обнаружили статистически значимые отличия по уровню экспрессии 951 гена (p<0,01). В группе G5 PLUS зафиксирована повышенная экспрессия генов окислительного фосфорилирования, регуляции перехода от G1-фазы к S-фазе в клеточном цикле и репликации ДНК. Необходимо отметить, что для данного исследования были использованы бластоцисты, не прошедшие отбор для последующего переноса пациенткам.

Таким образом, анализ транскриптома бластоцист может, наряду с преимплантационным генетическим скринингом, служить инструментом для оценки качества и селекции бластоцист.

Транскриптом бластоцисты как маркер успешной имплантации

Впервые оценка связи между наступлением и исходом беременности и транскрипционным профилем бластоцисты была выполнена в эксперименте на быках в 2006 г. [16]. По результатам данной работы, сопоставление групп с отсутствием беременности или резорбцией эмбриона с контрольной группой, где родился теленок, выявило отличия в экспрессии 52 и 58 генов соответственно. В группе с наступившей беременностью и ее успешным разрешением наблюдалась экспрессия генов COX2 и CDX2, связанных с имплантацией, а также генов фактора роста BMP15, гена сериновой протеазы PLAU, участвующей в деградации внеклеточного матрикса, и плацента-ассоциированного белка 8 типа PLAC8. В случае с резорбцией эмбриона обнаружена дифференциальная экспрессия генов PLAC8, OCLN, PGK1 и AKR1B1. В группе с ненаступлением беременности выявлены отличия в экспрессии транскриптов TNFα, EEF1A1, MSX1, PTTG1, PGK1, AKR1B1 и CD9. Этой же группой исследователей данный эксперимент был воспроизведен на эмбрионах, полученных in vivo [17]. Биопсия бластоцист была проведена на 7-й день после инсеминации. Показано, что для полученных in vivo эмбрионов в случаях с ненаступлением беременности и с потерей беременности транскрипционные профили схожи. Выявлен 21 ген, уровень экспрессии которых отличен в группе с рожденным теленком, по сравнению с группами с ненаступлением и с потерей беременности как для in vivo, так и для in vitro полученных эмбрионов.

В другом эксперименте на животных (мыши линии BDF1) сопоставляли результаты анализа экспрессии генов в клетках трофэктодермы бластоцист и исходов переноса эмбриона в полость матки. Выявлено, что в неимплантировавшихся бластоцистах снижен уровень экспрессии генов B3gnt5 и Eomes, а в бластоцистах, перенос которых завершился самопроизвольным прерыванием беременности, снижена экспрессия генов Wnt3a и Eomes [18, 19].

Взаимосвязь между экспрессией генов и клиническим исходом переноса эмбрионов человека в полость матки мало изучена по причине ограниченного доступа к биологическому материалу. Биопсия клеток трофэктодермы бластоцисты человека, согласно опубликованным данным, не оказывает влияния на дальнейшее развитие эмбриона и используется для преимплантационной генетической диагностики [19–21]. Исследование транскриптома бластоцист человека с последующим переносом этих бластоцист в полость матки впервые было выполнено в 2008 г. Jones G.M. et al. исследовали транскриптом клеток трофэктодермы бластоцист человека, отобранных на 5-й день культивирования, и сопоставили эти данные с результатами переноса бластоцист [22]. Перенос бластоцист проводили спустя сутки после биопсии, на 6-й день культивирования. Переносили от 1 до 4 бластоцист, а для идентификации бластоцист, перенос которых привел к рождению ребенка, использовали метод генетической дактилоскопии. После переноса 149 бластоцист, подвергнутых биопсии, родились 37 здоровых детей. По результатам анализа биоптатов трофэктодермы бластоцист с применением ДНК-микрочипов были выявлены 44 947 транскриптов; из них 7317 транскриптов обнаружены исключительно в бластоцистах, перенос которых привел к беременности, и 1896 транскриптов – исключительно в неимплантировавшихся бластоцистах. Среди генов, экспрессируемых только в успешно имплантировавшихся бластоцистах, названы гены клеточной адгезии и коммуникации.

Группа ученых из Дании опубликовала в 2015 г. работу, посвященную анализу методом РНК-секвенирования транскриптома биоптата трофэктодермы бластоцист человека с последующим переносом единичного эмбриона и определением различий в уровне экспрессии генов между эмбрионами, перенос которых в полость матки привел к рождению ребенка, и неимплантировавшимися эмбрионами [23]. В исследовании участвовали пациентки моложе 38 лет без диагностированного эндометриоза. Биопсия осуществлялась на 5-й день культивирования, за сутки до переноса эмбрионов. В отличие от предыдущей работы, в данном исследовании «успешной» считалась бластоциста, перенос которой завершился рождением ребенка, а не только имплантацией. Ввиду очень ограниченного количества биологического материала, для сравнительной оценки уровня экспрессии был отобран только 181 ген, экспрессирующийся в каждом образце внутри группы с небольшим внутригрупповым разбросом в уровне экспрессии. Для 145 генов выявлен повышенный уровень экспрессии в неимплантировавшихся бластоцистах, остальные 36 генов продемонстрировали повышенную экспрессию в имплантировавшихся эмбрионах. При этом только для 37 генов уровень экспрессии между группами различался статистически значимо (p<0,05). Около 17% транскриптов, представленных в биоптатах «успешных» бластоцист, относятся к некодирующей РНК. Перечень выявленных транскриптов приведен в публикации [23].

В исследовании Ntostis P. et al. [24] в рамках программы ВРТ участвовали пять пациенток, которым в полость матки в сумме было перенесено восемь бластоцист. При этом в трех случаях из пяти перенос бластоцист привел к наступлению беременности. С применением РНК-секвенирования выявлено 47 транскриптов генов, дифференциально экспрессированных в успешно имплантировавшихся бластоцистах и в бластоцистах, перенос которых не привел к наступлению беременности. Из этого числа транскриптов в группе с неуспешной имплантацией в 36 случаях наблюдалась сниженная экспрессия соответствующих генов, а в остальных 11 – повышенная экспрессия генов. В неимплантировавшихся бластоцистах зарегистрирован сниженный уровень экспрессии генов DHCR7, HSD17B1 и CYP11A1, участвующих в биосинтезе стероидов, и повышенный уровень экспрессии гена BAK1, кодирующего проапоптотический фермент. При этом экспрессия гена KHDC1P1, функции которого пока не ясны, детектирована в клетках трофэктодермы всех неудачных бластоцист и практически отсутствует у имплантировавшихся бластоцист. Перечень выявленных транскриптов – потенциальных маркеров успешной имплантации приведен в публикации [24].

Исследования по изучению транскриптома бластоцисты человека были начаты не так давно и публикуются нечасто в связи с технической сложностью такого анализа, высокой ценностью биологического материала, а также с этическим аспектом. Однако проведенные в последнее десятилетие исследования показывают, что биопсия трофэктодермы бластоцисты с последующим анализом транскриптома может быть инструментом для исчерпывающей оценки имплантационного потенциала бластоцист, что позволит перейти к селективному переносу единственного эмбриона в ходе ЭКО.

Список литературы

  1. Vassena R., Boué S., González-Roca E., Aran B., Auer H., Izpisua Belmonte J.C. Waves of early transcriptional activation and pluripotency program initiation during human preimplantation development. Development. 2011. 138(17): 3699-709. https://dx.doi.org/10.1242/dev.064741.
  2. Yan L., Yang M., Guo H., Yang L., Wu J., Li R. et al. Single-cell RNA-Seq profiling of human preimplantation embryos and embryonic stem cells. Nat. Struct. Mol. Biol. 2013; 20(9): 1131-9. https://dx.doi.org/10.1038/nsmb.2660.
  3. Jukam D., Shariati S.A.M., Skotheim J.M. Zygotic genome activation in vertebrates. Dev. Cell. 2017; 42(4): 316-32. https://dx.doi.org/10.1016/j.devcel.2017.07.026.
  4. Shaw L., Sneddon S., Zeef L., Kimber S., Brison D. Global gene expression profiling of individual human oocytes and embryos demonstrates heterogeneity in early development. PLoS One. 2013. 8(5). e64192. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0064192.
  5. Bashiri A., Halper K.I., Orvieto R. Recurrent Implantation Failure-update overview on etiology, diagnosis, treatment and future directions. Reprod. Biol. Endocrinol. 2018; 16(1): 121. https://dx.doi.org/10.1186/s12958-018-0414-2.
  6. Simon A., Laufer N. Assessment and treatment of repeated implantation failure (RIF). J. Assist. Reprod. Genet. 2012. 29(11): 1227-39. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-012-9861-4.
  7. Coughlan C., Ledger W., Wang Q., Liu F., Demirol A., Gurgan T. et al. Recurrent implantation failure: definition and management. Reprod. Biomed. Online. 2014; 28(1): 14-38. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2013.08.011.
  8. Choi H.W., Park Y.S., Lee S.H., Lim C.K., Seo J.T., Yang K.M. Effects of maternal age on embryo quality and pregnancy outcomes using testicular sperm with intracytoplasmic sperm injection. Clin. Exp. Reprod. Med. 2016; 43(4): 221-7. https://dx.doi.org/10.5653/cerm.2016.43.4.221.
  9. Nagaoka S.I., Hassold T.J., Hunt P.A. Human aneuploidy: mechanisms and new insights into an age-old problem. Nat. Rev. Genet. 2012; 13(7): 493-504. https://dx.doi.org/10.1038/nrg3245.
  10. Herbert M., Kalleas D., Cooney D., Lamb M., Lister L. Meiosis and maternal aging: insights from aneuploid oocytes and trisomy births. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2015; 7(4): a017970. https://dx.doi.org/10.1101/cshperspect.a017970.
  11. Kawai K., Harada T., Ishikawa T., Sugiyama R., Kawamura T., Yoshida A. et al. Parental age and gene expression profiles in individual human blastocysts. Sci. Rep. 2018; 8(1): 2380. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-018-20614-8.
  12. McCallie B.R., Parks J.C., Trahan D., Jones K., Coate B., Griffin D.K. et al. Compromised global embryonic transcriptome associated with advanced maternal age. J. Assist. Reprod. Genet. 2019; 36(5): 915-24. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-019-01438-5.
  13. McCallie B.R., Parks J.C., Griffin D.K., Schoolcraft W.B., Katz-Jaffe M.G. Infertility diagnosis has a significant impact on the transcriptome of developing blastocysts. Mol. Hum. Reprod. 2017; 23(8): 549-56. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gax034.
  14. Denomme M.M., McCallie B.R., Parks J.C., Booher K., Schoolcraft W.B., Katz-Jaffe M.G. Inheritance of epigenetic dysregulation from male factor infertility has a direct impact on reproductive potential. Fertil. Steril. 2018; 110(3): 419-28. e1. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.04.004.
  15. Kleijkers S.H., Eijssen L.M., Coonen E., Derhaag J.G., Mantikou E., Jonker M.J. et al. Differences in gene expression profiles between human preimplantation embryos cultured in two different IVF culture media. Hum. Reprod. 2015; 30(10): 2303-11. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dev179.
  16. Sayed A., Hoelker M., Rings F., Salilew D., Jennen D., Tholen E. et al. Large-scale transcriptional analysis of bovine embryo biopsies in relation to pregnancy success after transfer to recipients. Physiol. Genomics. 2006; 28(1): 84-96. https://dx.doi.org/10.1152/physiolgenomics.00111.2006.
  17. Ghanem N., Salilew-Wondim D., Gad A., Tesfaye D., Phatsara C., Tholen E. et al. Bovine blastocysts with developmental competence to term share similar expression of developmentally important genes although derived from different culture environments. Reproduction. 2011; 142(4): 551-64. https://dx.doi.org/10.1530/REP-10-0476.
  18. Parks J.C., McCallie B.R., Janesch A.M., Schoolcraft W.B., Katz-Jaffe M.G. Blastocyst gene expression correlates with implantation potential. Fertil. Steril. 2011; 95(4): 1367-72. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2010.08.009.
  19. Cimadomo D., Capalbo A., Ubaldi F.M., Scarica C., Palagiano A., Canipari R., Rienzi L. The impact of biopsy on human embryo developmental potential during preimplantation genetic diagnosis. Biomed. Res. Int. 2016; 2016: 7193075. https://dx.doi.org/10.1155/2016/7193075.
  20. 20. Kokkali G., Vrettou C., Traeger-Synodinos J., Jones G.M., Cram D.S., Stavrou D. et al. Birth of a healthy infant following trophectoderm biopsy from blastocysts for PGD of beta-thalassaemia major. Hum. Reprod. 2005; 20(7): 1855-9. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deh893.
  21. Scott R.T., Upham K.M., Forman E.J., Zhao T., Treff N.R. Cleavage-stage biopsy significantly impairs human embryonic implantation potential while blastocyst biopsy does not: a randomized and paired clinical trial. Fertil. Steril. 2013; 100(3): 624-30. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.04.039.
  22. Jones G.M., Cram D.S., Song B., Kokkali G., Pantos K., Trounson A.O. Novel strategy with potential to identify developmentally competent IVF blastocysts. Hum. Reprod. 2008; 23(8): 1748-59. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/den123.
  23. Kirkegaard K., Villesen P., Jensen J.M., Hindkjær J.J., Kølvraa S., Ingerslev H.J., Lykke-Hartmann K. Distinct differences in global gene expression profiles in non-implanted blastocysts and blastocysts resulting in live birth. Gene. 2015; 571(2): 212-20. https://dx.doi.org/10.1016/j.gene.2015.06.057.
  24. Ntostis P., Kokkali G., Iles D., Huntriss J., Tzetis M., Picton H. et al Can trophectoderm RNA analysis predict human blastocyst competency? Syst. Biol. Reprod. Med. 2019; 65(4): 312-25. https://dx.doi.org/ 10.1080/19396368.2019.1625085.

Поступила 11.12.2019

Принята в печать 07.02.2020

Об авторах / Для корреспонденции

Волкова Анастасия Геннадьевна, к.б.н., научный сотрудник, ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России.
Тел.: +7 (495) 531-44-44. E-mail: agvolkova33@gmail.com.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Макарова Наталья Петровна, д.б.н., ведущий научный сотрудник, ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7 (495) 531-44-44.
E-mail: np.makarova@gmail.com.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Тимофеева Анжелика Владимировна, к.б.н., заведующая лабораторией прикладной транскриптомики, ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России.
Тел.: +7 (495) 531-44-44. E-mail: v_timofeeva@oparina4.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Городнова Елена Александровна, к.м.н., начальник центра клинических исследований департамента организации научной деятельности,
ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7 (495) 531-44-44. E-mail: e_gorodnova@oparina4.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Для цитирования: Волкова А.Г., Макарова Н.П., Тимофеева А.В., Городнова Е.А. Преимплантационный анализ транскриптома бластоцисты.
Акушерство и гинекология. 2020; 4: 16-20
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.4.16-20

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.