Особенности наследования тринуклеотидных CGG повторов в гене FMR1 от женщин с преждевременной недостаточностью яичников: серия случаев

Рштуни С.Д., Зарецкая Н.В., Кузнецова М.В., Марченко Л.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика. В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия
Актуальность: В последние годы особый клинический интерес представляет потенциал передачи последующему поколению аномального числа триплетных CGG повторов в гене FMR1 в качестве биомаркера наследования преждевременного старения яичников.
Цель: Анализ особенностей здоровья детей, рожденных от матерей с преждевременной недостаточностью яичников (ПНЯ), имеющих нарушение числа тринуклеотидных CGG повторов в гене FMR1.
Материалы и методы: В проспективное одноцентровое исследование серии непоследовательных случаев были включены 90 женщин в возрасте от 18 до 39 лет (средний возраст составил 33,5 года) с ПНЯ, которым было проведено определение CGG повторов в гене FMR1. На втором этапе исследования было проведено изучение числа CGG тринуклеотидов 27 детей, рожденных от носительниц аномального числа триплетных CGG повторов в гене FMR1.
Результаты: В 66,7% случаев у потомства были выявлены различные числовые нарушения в гене FMR1. В 7,4% случаев (2/27) наблюдается неблагоприятный исход наследования за счет формирования у сыновей синдрома Мартина–Белл вследствие экспансии тринуклеотидных повторов от носительниц премутационных аллелей. Стабильное наследование премутации в гене FMR1 наблюдается в 22,2% случаев (6/27), при этом, у девочек в сравнении с матерями отмечается тяжелый фенотип ПНЯ с ранним дебютом заболевания.
Заключение: Носительницам премутационных аллелей в гене FMR1 показано медико-генетическое консультирование с последующим решением вопроса о достижении беременности за счет донорских яйцеклеток или эмбрионов в программе ВРТ.

Вклад авторов: Рштуни С.Д. – обзор литературы; Марченко Л.А., Рштуни С.Д. – концепция и дизайн исследования, написание текста; Кузнецова М.В., Рштуни С.Д. – сбор и обработка материала; Зарецкая Н.В., Кузнецова М.В. – редактирование.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликтов интересов.
Финансирование: Исследование проведено без спонсорской поддержки.
Одобрение Этического комитета: Исследование одобрено локальным этическим комитетом ФГБУ «НМИЦ АГП
им. В.И. Кулакова» Минздрава России (регистрационный номер 5 от 14.04.2016 г.).
Согласие пациентов на публикацию: Пациенты подписали информированное согласие на публикацию своих данных.
Обмен исследовательскими данными: Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.
Для цитирования: Рштуни С.Д., Зарецкая Н.В., Кузнецова М.В. Марченко Л.А. Особенности наследования тринуклеотидных CGG повторов в гене FMR1 от женщин с преждевременной недостаточностью яичников: серия случаев.
Акушерство и гинекология. 2023; 3: 91-98
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.285

Ключевые слова

FMR1
CGG повторы
премутация в гене FMR1
синдром Мартина–Белл
прежде­временная недостаточность яичников

Преждевременная недостаточность яичников (ПНЯ) – мультифакторная патология, в этиопатогенезе которой существенная роль принадлежит генетическим нарушениям [1, 2]. Моногенные формы ПНЯ наследуются в соответствии с законом Менделя. При этом, в большинстве случаев имеет место аутосомно- рецессивный тип наследования с низким риском повторения у потомства. В настоящее время известно более 20 моногенных форм ПНЯ, зарегистрированных в международной медицинской базе наследственных заболеваний OMIM (Online Mendelian Inheritance in Man, менделевское наследование у человека), среди которых ведущая роль принадлежит гену FMR1 [3]. Известно, что наибольшее значение для прогноза потомства представляют Х-сцепленные рецессивные формы синдрома ПНЯ. Ген FMR1 (fragile mental retardation) – ген умственной отсталости картирован на длинном плече Х хромосомы в локусе Хq27.3. В 5’ нетранслируемой области его 1-го экзона содержатся тринуклеотидные CGG повторы [4, 5].

Ген FMR1 экспрессируется в ооците, в гранулезных и лютеиновых клетках, а также в нейронах [5]. Недостаточность выработки белка FMRP (fragile X mental retardation protein) вследствие мутации в гене FMR1 лежит в основе патологии фолликулогенеза, приводя к ановуляции. При этом, в ЦНС наблюдается расстройство нейрогенеза с исходом в когнитивные нарушения и умственную отсталость. Экспансия тринуклеотидных CGG-повторов (более 200) сопровождается аномальным метилированием и отсутствием экспрессии гена FMR1 [6]. Вышеуказанная нестабильность тринуклеотидов может приводить к формированию нескольких генетических синдромов – преждевременная недостаточность яичников I типа (Premature Ovarian Failure 1), синдром Мартина–Белл (FRAXA, Х-сцепленная умственная отсталость) и синдром тремора и атаксии (Fragile X associated tremor/ataxia syndrome, FXTAS).

Согласно российским и международным рекомендациям, всем женщинам с ПНЯ и их родственницам, в настоящее время следует определять CGG повторы в гене FMR1 [7 ,8].

В практике гинекологов в Российской Федерации за норму принят средний диапазон распределения CGG повторов от 28 до 36 тринуклеотидов [9]. Согласно данным Американского колледжа медицинской генетики (ACMG), рассматриваются три варианта нарушений числа CGG повторов в гене FMR1 – «истинная» мутация (синдром ломкой Х-хромосомы, число повторов более 200), премутация гена FMR1 (55–199 тринуклеотидов) и их значения в пределах «серой зоны» (45–54 повторов) [10]. Помимо вышеуказанной классификации, по данным Gleicher N. et al., аллели менее 28 тринуклеотидов расцениваются как «короткие повторы», в то время как диапазон в пределах 37–44 – как удлинение CGG повторов [11].

Частота встречаемости премутации в гене FMR1 имеет выраженные половые различия, у женщин 1:180–1:259, в то время как, у мужчин 1:230– 1:810 случаев [12]. При семейной преждевременной недостаточности яичников ее распространенность составляет 11,5%, а при спорадической форме – 3,2% [10, 13]. Впервые в 1994 г. Schwartz C.E. et al. в многоцентровом исследовании продемонстрировали, что у носительниц премутации в гене FMR1 менопауза наступала в возрасте до 40 лет в три раза чаще, чем в группе контроля [14]. В 2004 г. обнаружено, что у больных с увеличением длины триплетных повторов в гене FMR1, вплоть до премутации гена, выявлено статистически значимое повышение уровня фолликулостимулирующего гормона (ФСГ), снижение уровней ингибина А и В, не соответствующие их возрастной норме в сочетании со снижением овариального резерва. При этом, только в 16–25% случаев у носительниц премутации гена FMR1 развивается ПНЯ [15]. На протяжении последних десяти лет Gleicher N. et al. также доказано формирование ПНЯ как при коротких триплетных повторах гена FMR1, так и у носительниц тринуклеотидов в пределах «серой зоны» [11]. Таким образом, на сегодняшний день в качестве биомаркера прогнозирования преждевременного старения яичников, возможно, использовать наличие числовых нарушений CGG повторов в гене FMR1.

В доступной литературе крайне мало исследований, посвященных анализу особенностей формирования репродуктивного, соматического и неврологического статуса у детей, рожденных от матерей с ПНЯ носительниц аномального числа в гене FMR1.

Цель исследования: оценка особенностей здоровья детей, рожденных от матерей с ПНЯ с учетом наследования аномального числа CGG повторов в гене FMR1.

Материалы и методы

Проспективное одноцентровое исследование серии непоследовательных случаев проведено на базе отделения гинекологической эндокринологии и института репродуктивной генетики ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России. В исследование были включены 90 женщин с ПНЯ, проходившие обследование и/или лечение, в соответствии с нашей клинической деятельностью. Набор пациентов проводился с 2018 по 2021 гг. Диагноз ПНЯ был установлен на основании Российских клинических рекомендаций [8]. Исследование одобрено локальным этическим комитетом ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России, регистрационный номер 5 от 14.04.2016 г. От каждой пациентки было получено письменное информированное согласие на участие в исследовании в соответствии с Хельсинкской декларацией, из них 19 пациенток подписали согласие на обследование детей.

Критерии включения в исследование: установленный диагноз ПНЯ; возраст женщин на момент постановки диагноза от 18 до 39 лет; кариотип 46 ХХ.

Критерии исключения из исследования: отсутствие детей у женщин с ПНЯ.

Критерии невключения из исследования: наличие первичной или ятрогенной гипер-, нормо- и гипогонадотропной аменореи.

Для верификации диагноза ПНЯ оценивалось функциональное состояние гипоталамо-гипофизарно-яичниковой системы на основании определения уровней фолликулостимулирующего гормона (ФСГ), эстрадиола (Е2), в сыворотке крови электрохемилюминесцентным методом на автоматическом иммунохимическом анализаторе Cobas е411 (Roche Diagnostics GmbH, Германия). Антимюллеров гормон (АМГ) определяли в сыворотке крови количественно методом ферментно-усиленного двухступенчатого иммуноанализа сэндвич-типа с помощью набора AMH Gen II ELISE (Beckman Coulter, США).

Ультразвуковое исследование органов малого таза проводилось на аппарате 2000 Toshiba SSA-240 (Япония) трансвагинальным конвексным датчиком частотой 7,5 МГц.

Кариотип исследовали по общепринятому методу Seabright (G-окраска).

Методика определения числа повторов CGG в гене FMR1 с помощью амплификации промоторной области гена, включающей CGG-область, была выполнена методом ПЦР с использованием флуоресцентно меченых праймеров и определения точной длины ПЦР-продуктов фрагментным анализом на генетическом анализаторе серии 31хх Applied Biosystems (набор реактивов «ДНК-Технология») в соответствии с протоколом «Стандартные операционные процедуры (СОП) по определению количества повторов CGG в гене FMR1».

Результаты

В исследование вошли 90 женщин с ПНЯ, их средний возраст составил 33,5 лет. Средний возраст дебюта заболевания – 31 год. Средние значения гормонального обследования 90 женщин с ПНЯ составили для ФСГ – 61,88 мМЕд/мл, Е2 – 44,7 пмоль/л, АМГ – 0,13 нг/мл.

На первом этапе работы всем женщинам с установленным диагнозом ПНЯ было проведено определение CGG повторов в гене FMR1 (табл. 1).

94-1.jpg (231 KB)

У 45/90 пациенток (50%) выявлялись различные числовые нарушения тринуклеотидов по отношению к нормативным показателям. При этом, у 8/90 (8,9%) женщин выявлена премутация в гене, у 4/90 (4,4%) – тринуклеотидные повторы находились в пределах «серой зоны» и у 33/90 (36,7%) пациенток обнаружены короткие повторы. В двух случаях у носительниц премутации в гене FMR1 детей не было, в связи с чем, в дальнейшем, они были исключены из исследования. На втором этапе исследования проводилось генетическое тестирование 27 детей, рожденных от 19 носительниц аллелей с аномальным числом CGG повторов.

В первой серии случаев анализировались варианты наследования потомством аномальных тринуклеотидных повторов от матерей с премутацией в гене FMR1 и их репродуктивный статус. Результаты FMR1-тестирования матерей-носительниц премутации и их потомства представлены в таблице 2. У 6 носительниц премутационных аллелей менархе было своевременным и до дебюта заболевания регулярный ритм менструации, а также сохраненная детородная функция, что подтверждалось наступлением 18 беременностей, 12 из которых закончились рождением 7 мальчиков и 5 девочек; в остальных 6 случаях было произведено искусственное прерывание беременностей по желанию женщин. Детородная функция у женщин, входящих в данную серию случаев была реализована до 30 лет (в среднем 27,6 лет). Средний возраст дебюта заболевания составил 32 года. Первый аллель у матерей находился в диапазоне от 20 до 30, второй – от 80 до 86 триплетных повторов.

При анализе наследования числовых нарушений гена FMR1 у детей, рожденных от носительниц премутации выявлено следующее их распределение: у сына (1/12 детей, 8,3%), выявлены триплетные повторы в пределах нормальных значений за счет наследования первого материнского аллеля. У 3 дочерей (3/12, 25%) наблюдались короткие повторы, при этом, первый аллель они унаследовали от матери, а второй, вероятно, от отцов. При детальном изучении анамнеза выявлено, 2 девочки находились в препубертатном периоде, у третьей – менархе было своевременным и до настоящего времени регулярный ритм менструации. У 2 девочек и 4 мальчиков (6/12, 50%) обнаружено наследование от матерей премутации в гене FMR1. Число триплетных CGG повторов колебалось от 78 до 106, при этом, их увеличение в процессе наследования наблюдалось у 4 детей, у 1 – сокращение и в одном случае – стабильная передача. При детальном изучении анамнеза выявлено, что у 1 мальчика половое созревание в соответствии с возрастом. Трое мальчиков находились в препубертатном периоде, дополнительно у одного из них были выявлены числовые хромосомные аномалии по типу синдрома Клайнфельтера. У 2 дочерей отмечен тяжелый яичниковый фенотип ПНЯ с очень ранним дебютом заболевания в 17 и 18 лет (через 4–5 лет после менархе). Обращает на себя внимание, что у их матерей дебют заболевания наступил значительно позже (через 19 и 21 год после менархе). У 2 сыновей (2/12, 16,7%) была обнаружена экспансия тринуклеотидов до полной мутации гена FMR1, родились мальчики с синдромом Мартина–Белл с типичными клиническими (психопатические и речевые нарушения в виде двигательной расторможенности, признаки аутизма) и фенотипическими проявлениями заболевания (долихоцефалия, выступающий лоб, удлиненное лицо, массивный подбородок, крупные ушные раковины, эпикант, крупные кисти и стопы, гипермобильность суставов, макроорхизм).

Во второй серии случаев анализировались варианты наследования потомством аномальных тринуклеотидных повторов от матерей с тринуклеотидами в пределах «серой зоны» в гене FMR1 и их репродуктивный статус. Результаты генетического обследования матерей с повторами в пределах «серой зоны» и их потомства представлены в таблице 3. У всех обследованных нами пациенток носительниц триплетных аллелей в пределах «серой зоны» менархе было своевременным, до дебюта заболевания ритм менструаций регулярный и сохраненная детородная функция, что подтверждалось наступлением 7 беременностей, 4 из которых закончились рождением 2 мальчиков и 2 девочек. Средний возраст на момент родов – 25,5 лет. Изучение числа триплетных повторов у детей выявило следующее их распределение, в 50% (2/4) в пределах популяционной нормы, в 50% (2/4) – наследование, коротких тринуклеотидных повторов. Все дети, рожденные в данной серии случаев, находились в препубертатном периоде без диагностированных неврологических и психических нарушений.

95-1.jpg (235 KB)

В третьей серии случаев анализировались варианты наследования потомством аномальных тринуклеотидных повторов от матерей с короткими повторами в гене FMR1 и их репродуктивный статус. Результаты генетического обследования матерей с короткими повторами в гене FMR1 и их потомства представлены в таблице 4. У всех обследованных нами пациенток носительниц триплетных аллелей в пределах укороченных повторов менархе было своевременным, до дебюта заболевания ритм менструаций регулярный и сохраненная детородная функция, что подтверждалось наступлением 17 беременностей 11 из которых закончились рождением 4 мальчиков и 7 девочек, остальные беременности закончились искусственным их прерыванием по желанию женщин. Средний возраст пациенток на момент родов составил 29,7 лет. У матерей первый аллель попадал в диапазон от 20 до 24 CGG повторов, второй – от 29 до 36 тринуклеотидов. Стабильная передача коротких повторов была выявлена у 3 дочерей и 2 сыновей (5/11, 45,5%), у 4 девочек и 2 мальчиков (6/11, 54,5%) триплетные повторы были в пределах рефересных значений. Из 11 детей 7 находятся в препубертатном периоде, у 3 – половое созревание в соответствии с возрастом. Все дети без диагностированной соматической и неврологической патологии. У 1 дочери 19 лет (1/11, 9,1 %) был диагностирован тяжелый фенотип ПНЯ в возрасте 18 лет, в то время как у матери, дебют заболевания отмечен в 31 год.

Обсуждение

На протяжении многих лет носительство премутации в гене FMR1 не связывали с развитием каких-либо соматических заболеваний. Однако, в последние десятилетия доказано, что у носительниц премутации возможно развитие коморбидной патологии, в структуре которой в 16–25% случаев встречается ПНЯ. При этом, помимо нарушений репродуктивной системы могут развиваться аутоиммунная патология, Х-ассоциированный тремор-атаксический синдром, а также нейрокогнитивные и эмоционально-личностные расстройства. В связи с вышеизложенным, обсуждение полученных нами результатов по оценке особенностей здоровья детей, рожденных от матерей с ПНЯ носительниц аномального числа тринуклеотидных CGG повторов в гене FMR1, представляет собой определенную как научную, так и практическую значимость.

По данным многочисленных литературных источников, доказано, что риск экспансии CGG повторов в последующем поколении до состояния полной мутации возрастает по мере увеличения у матерей числа тринуклеотидов в гене FMR1. Согласно данным Nolin S.L. et al., при обследовании 936 женщин с различными числовыми повторами в гене FMR1 в рамках премутационного диапазона был рассчитан риск формирования в последующем поколении полной мутации с учетом длин материнских повторов. При диапазоне CGG тринуклеотидов в пределах 55–59 (n=26) он составил 3,7%, в интервале числовых повторов 80–89 (n=133) – 57,8%, при 90–99 тринуклеотидов (n=118) риск достигал 80%. Максимальный риск (94–100%) наблюдался при длине CGG повторов от 100 до 109 (n=26). Вышеуказанное исследование, к сожалению, было проведено без учета овариального резерва женщин и развития в последующем у них ПНЯ [16]. По нашим данным, у матерей с ПНЯ с триплетными повторами в рамках премутации 22/80 и 20/86 экспансия CGG тринуклеотидов с исходом в полную мутацию и рождением мальчиков с синдромом Мартина–Белл в течение одного поколения выявлена в 16,7% случаев, что в 3,7 раза ниже при сопоставимых числовых повторах в вышеуказанной работе [16] (рисунок).

96-1.jpg (57 KB)

В то же время, частота формирования синдрома Мартина–Белл в нашем исследовании соотносится с результатами работы Beke A. et al., в которой показано, что у 9 женщин с ПНЯ при носительстве премутации в гене FMR1, синдром Мартина–Белл у потомства был диагностирован еще реже, в 11,1% случаев [17].

В конце ХХ в. было выявлено, что в норме тринуклеотидные CGG повторы в гене FMR1 прерываются AGG тринуклеотидами, чаще всего в положениях 10 и 20, что обеспечивает стабильность их передачи. В случае отсутствия AGG прерываний или их недостаточного числа триплетные CGG повторы становятся крайне нестабильными с возможностью выраженной экспансии и формирования синдрома Мартина–Белл в последующем поколении [18]. Однако, к сожалению, расширенный анализ гена FMR1 c одновременным определением CGG и AGG тринуклеотидов матерям с премутацией в гене FMR1 нами выполнен не был.

В ходе нашей работе в 50% случаев (6/12) мы наблюдали стабильное наследование детьми премутации в гене FMR1 от женщин с ПНЯ. У 2 дочерей с премутацией отмечался тяжелый фенотип ПНЯ, с дебютом заболевания в 17 и 18 лет, в то время как в работе Табеевой и соавт. при обследовании 200 пациенток с ПНЯ средний возраст дебюта заболевания составил 29,4±7,66 лет [19].

В последние годы в литературе активно обсуждается роль коротких CGG повторов в гене FMR1, при которых наблюдаются расстройства репродуктивной и нервной систем [11]. В нашей работе в 36,7% случаев выявлены носительницы коротких повторов. В 2014 г. Mailick M.R. et al. было представлено уникальное долгосрочное исследование, включающее 10 317 человек, за которыми наблюдали в течение 54 лет. К концу исследования возраст респондентов достиг 72 лет и на финальном этапе работы 3469 (51,5%) женщинам было проведено определение СGG повторов в гене FMR1, в ходе которого выявлено 20,8% носительниц коротких повторов, что в 1,8 раз реже в сравнении с нашими пациентками с ПНЯ. Авторы отметили, что у женщин, носительниц коротких повторов в гене FMR1 в 2 раза чаще диагностировался рак молочной железы и в 4 раза – рак эндометрия, чем у носительниц нормальных СGG повторов. У их потомства значительно чаще диагностировалась тяжелая умственная отсталость в сравнении с популяционными данными (отношение шансов 1,68, р<0,05). В то время как у мужчин носителей коротких повторов преобладал тремор-атаксический синдром [20]. По нашим данным, при стабильной передаче коротких CGG повторов в 9,1% случаев, у дочери выявлен тяжелый фенотип ПНЯ с дебютом заболевания в 18 лет.

Известно, что триплетные повторы в пределах «серой зоны» подвержены экспансии в последующих поколениях, однако, в нашем исследовании, ввиду крайне ограниченной выборки, данный феномен подтвержден не был [21, 22].

В результате проведенного исследования доказано, что для детей, рожденных от матерей с различными вариантами аномальных CGG тринуклеотидов в гене FMR1 характерны следующие варианты наследования числовых повторов:

1) нормальные триплетные CGG повторы обнаружены в 33,3% (9/27) случаев;

2) короткие повторы встречались в 37% (10/27). При стабильной передаче коротких повторов в 9,1% случае выявлен тяжелый фенотип ПНЯ у дочери.

3) премутации гена FMR1 обнаружена в 22,2% (6/27) с формированием у девочек тяжелого фенотипа ПНЯ.

4) расширение повторов до полной мутации с рождением мальчиков с синдромом Мартина–Белл выявлено в 7,5% (2/27).

В настоящее время развитие молекулярно-генетических технологий позволяет пациенткам-носительницам премутации и гетерозиготной мутации в гене FMR1 планировать рождение биологически родного ребенка. При обсуждении репродуктивного прогноза им принято рекомендовать медико-генетическое консультирование, при котором пациентка с ПНЯ получает информацию о возрастных ограничениях детородного потенциала (желательна реализация беременности до 30 лет), о высоком риске рождения мальчика с синдромом Мартина–Белл и возможностях преимплантационного генетического тестирования эмбрионов (определение пола эмбриона и селекция его в пользу женского) [23]. Также пациентки должны быть информированы, что при спонтанном наступлении беременности им показано проведение пренатальной (дородовой) диагностики, которая может включать: определение пола плода с 10 недель беременности путем проведения неинвазивного пренатального скрининга ДНК плода (НИПС) по крови матери; ультразвуковую диагностику врожденных аномалий и половой принадлежности плода; инвазивную пренатальную диагностику кариотипа (в том числе, пола) и мутаций в гене FMR1 у плода путем биопсии хориона в 10–13 недель, или амниоцентеза в 16–20 недель беременности.

Однако, селекция эмбриона/плода по половой принадлежности в пользу женского пола, не всегда позволяет избежать появления на свет девочки с репродуктивными проблемами, унаследованными от матери. Ресурсом для уточнения характера наследования тринуклеотидных повторов может быть более детальное исследование влияния локусов прерывания AGG [24]. Требует дальнейшего исследования неоднозначная роль коротких повторов в развитии ПНЯ и рисках для потомства. Учитывая наличие множества других моногенных форм ПНЯ пациенткам «серой зоны» и с нетипичными проявлениями, может быть рекомендован поиск мутаций в других генах, ассоциированных с ПНЯ, методом полноэкзомного секвенирования.

Ограничения исследования. Небольшая выборка пациентов. Отсутствие результатов тестирования СGG повторов в гене FMR1 отцов. Отсутствие результатов исследования на локусы AGG вкраплений.

Заключение

Неблагоприятный исход для потомства наблюдается в серии случаев от матерей носительниц премутационных аллелей в гене FMR1, что традиционно давало основания для рекомендаций таким женщинам достижения беременности за счет донорских яйцеклеток или эмбрионов в программе вспомогательных репродуктивных технологии. Таким образом, в случае планирования беременности у этой категории пациенток клинический генетик должен учитывать точное количество CGG повторов в гене FMR1, а также AGG прерываний, чтобы получить надежные результаты для индивидуальной оценки риска.

По нашему мнению, необходимо проведение генеалогического анализа пациенток с ПНЯ носительниц аномального числа CGG повторов в гене FMR1 c учетом генетического тестирования их родственников 1–2 степени родства для определения вариантов наследования. Для обнаружения на раннем этапе фенотипических особенностей у потомства целесообразно проведение коллегиального консультирования, включая педиатра, детского гинеколога, генетика и невролога с целью необходимости назначения детям поведенческой или медикаментозной терапии.

Список литературы

  1. Qin Y., Jiao X., Simpson J.L., Chen Z.-J. Genetics of primary ovarian insufficiency: new developments and opportunities. Hum. Reprod. Update. 2015; 21(6): 787-808. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmv036.
  2. França M.M., Mendonca B.B. Genetics of ovarian insufficiency and defects of folliculogenesis. Best Pract. Res. Clin. Endocrinol. Metab. 2022; 36(1): 101594. https://dx.doi.org/10.1016/j.beem.2021.101594.
  3. Bouilly J., Beau I., Barraud S., Bernard V., Azibi K., Fagart J. et al. Identification of multiple gene mutations accounts for a new genetic architecture of primary ovarian insufficiency. J. Clin. Endocr. Metab. 2016; 101(12): 4541-50.https://dx.doi.org/10.1210/jc.2016-2152.
  4. Tabolacci E., Nobile V., Pucci C., Chiurazzi P. Mechanisms of the FMR1 repeat instability: how does the CGG sequence expand? Int. J. Mol. Sci. 2022; 23(10): 5425. https://dx.doi.org/10.3390/ijms23105425.
  5. Eichler E.E., Richards S., Gibbs R.A., Nelson D.L. Fine structure of the human FMR1 gene. Hum. Mol. Genet. 1993; 2(8): 1147-53.https://dx.doi.org/10.1093/hmg/2.8.1147.
  6. Chen L.S., Tassone F., Sahota P., Hagerman P.J. The (CGG)n repeat element within the 5' untranslated region of the FMR1 message provides both positive and negative cis effects on in vivo translation of a downstream reporter. Hum. Mol. Genet. 2003; 12(23): 3067-74. https://dx.doi.org/10.1093/hmg/ddg331.
  7. Webber L., Davies M., Anderson R., Bartlett J., Braat D., Cartwright B. et al.; European Society for Human Reproduction and Embryology (ESHRE) Guideline Group. ESHRE guideline: management of women with premature ovarian insufficiency. Hum. Reprod. 2016; 31(5): 926-37.https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dew027.
  8. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Клинические рекомендации. Аменорея и олигоменорея. М.; 2021.
  9. Шамилова Н.Н., Марченко Л.А., Долгушина Н.В., Кузнецова Е.Б., Залетаев Д.В. Роль генетических и аутоиммунных нарушений в развитии преждевременной недостаточности яичников. Акушерство и гинекология. 2012; 4-2: 67-72.
  10. Spector E., Behlmann A., Kronquist K., Rose N.C., Lyon E., Reddi H.V.; ACMG Laboratory Quality Assurance Committee. Laboratory testing for fragile X, 2021 revision: a technical standard of the American College of Medical Genetics and Genomics (ACMG). Genet. Med. 2021; 23(5): 799-812.https://dx.doi.org/10.1038/s41436-021-01115-y.
  11. Gleicher N., Barad D.H. The FMR1 gene as regulator of ovarian recruitment and ovarian reserve. Obstet. Gynecol. Surv. 2010; 65(8): 523-30.https://dx.doi.org/10.1097/OGX.0b013e3181f8bdda.
  12. Dombrowski C., Lévesque S., Morel M.L., Rouillard P., Morgan K., Rousseau F. Premutation and intermediate-size FMR1 alleles in 10572 males from the general population: loss of an AGG interruption is a late event in the generation of fragile X syndrome alleles. Hum. Mol. Genet. 2002; 11(4): 371-8.https://dx.doi.org/10.1093/hmg/11.4.371.
  13. Bussani C., Papi L., Sestini R., Baldinotti F., Bucciantini S., Bruni V., Scarselli G. Premature ovarian failure and fragile X premutation: a study on 45 women. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2004; 11(2): 189-91.https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2003.06.003.
  14. Schwartz C.E., Dean J., Howard-Peebles P.N., Bugge M., Mikkelsen M., Tommerup N. et al. Obstetrical and gynecological complications in fragile X carriers: a multicenter study. Am. J. Med. Genet. 1994; 51(4): 400-2.https://dx.doi.org/10.1002/ajmg.1320510419.
  15. Welt C.K., Smith P. C., Taylor A.E. Evidence of early ovarian aging in fragile X premutation carriers. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2004; 89(9): 4569-74.https://dx.doi.org/10.1210/jc.2004-0347.
  16. Nolin S.L., Brown W.T., Glicksman A., Houck G.E. Jr, Gargano A.D., Sullivan A. et al. Expansion of the fragile X CGG repeat in females with premutation or intermediate alleles. Am. J. Hum. Genet. 2003; 72(2): 454-64.https://dx.doi.org/10.1086/367713.
  17. Beke A., Piko H., Haltrich I., Karcagi V., Rigo J. Jr, Molnar M.J., Fekete G. Study of patterns of inheritance of premature ovarian failure syndrome carrying maternal and paternal premutations. BMC Med. Genet. 2018; 19(1): 113. https://dx.doi.org/10.1186/s12881-018-0634-5.
  18. Eichler E.E., Holden J.J., Popovich B.W., Reiss A.L., Snow K., Thibodeau S.N. et al. Length of uninterrupted CGG repeats determines instability in the FMR1 gene. Nat. Genet. 1994; 8(1): 88-94. https://dx.doi.org/10.1038/ng0994-88.
  19. Табеева Г.И., Шамилова Н.Н., Жахур Н.А., Позднякова А.А., Марченко Л.А. Преждевременная недостаточность яичников – загадка XXI века. Акушерство и гинекология. 2013; 12: 16-21.
  20. Mailick M.R., Hong J., Rathouz P., Baker M.W., Greenberg J.S., Smith L., Maenner M. Low - normal FMR1 CGG repeat length: phenotypic associations. Front. Genet. 2014; 5: 309. https://dx.doi.org/10.3389/fgene.2014.00309.
  21. Fernandez-Carvajal I., Lopez Posadas B., Pan R., Raske C., Hagerman P.J., Tassone F. Expansion of an FMR1 grey-zone allele to a full mutation in two generations. J. Mol. Diagn. 2009; 11(4): 306-10. https://dx.doi.org/10.2353/jmoldx.2009.080174.
  22. Terracciano A., Pomponi M.G., Marino G.M., Chiurazzi P., Rinaldi M.M., Dobosz M., Neri G. Expansion to full mutation ofa FMR1 intermediate allele over two generations. Eur. J. Hum. Genet. 2004; 12(4): 333-6.https://dx.doi.org/10.1038/sj.ejhg.5201154.
  23. Rajan-Babu I.-S., Lian M., Cheah F.S.H., Chen M., Tan A.S.C., Prasath E.B., Loh S.F., Chong S.S. FMR1 CGG repeat expansion mutation detection and linked haplotype analysis for reliable and accurate preimplantation genetic diagnosis of fragile X syndrome. Expert Rev. Mol. Med. 2017; 19: e10.https://dx.doi.org/10.1017/erm.2017.10.
  24. Ardui S., Race V., de Ravel T., Van Esch H., Devriendt K., Matthijs G., Vermeesch J.R. Detecting AGG interruptions in females with a FMR1 premutation by long-read single-molecule sequencing: A 1 year clinical experience. Front. Genet. 2018; 9: 150. https://dx.doi.org/10.3389/fgene.2018.00150.

Поступила 30.11.2022

Принята в печать 23.03.2023

Об авторах / Для корреспонденции

Рштуни Сандра Джониевна, аспирант отделения гинекологической эндокринологии, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России, +7(915)200-33-11, rshtunisandra@gmail.com, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Зарецкая Надежда Васильевна, к.м.н., заведующая лабораторией клинической генетики, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России, +7(916)603-79-24, znadezda@yandex.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Кузнецова Мария Владимировна, к.б.н., с.н.с. лаборатории молекулярно-генетических методов Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России, +7(916)170-26-80, mkarja@mail.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Марченко Лариса Андреевна, д.м.н., профессор, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России, +7(903)547-60-58, l_marchenko@yandex.ru,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.