Оценка овариального резерва у детей и подростков с синдромом Тернера

Уварова Е.В., Турчинец А.И., Кумыкова З.Х., Пивоварова О.Ю.

1) ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Российская Федерация; 2) ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет), Москва, Российская Федерация; 3) ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, кафедра акушерства и гинекологии педиатрического факультета, Москва, Российская Федерация
Преждевременная недостаточность яичников затрагивает большинство пациенток с синдромом Тернера, в связи с чем только у 5–10% из них наблюдаются регулярные менструации, спонтанная беременность встречается только у 2% женщин с синдромом Тернера, в основном в молодом возрасте и, как правило, у пациенток с мозаичным кариотипом. У девочек с синдромом Тернера отмечается уменьшенный пул оогониев в первичных гонадах и примордиальных фолликулов уже при рождении, что в сочетании с последующей постнатальной потерей гамет приводит к истощению овариального резерва до достижения репродуктивной зрелости у 90% пациенток. Сохранение фертильности у этой когорты пациентов потенциально осуществимо, поскольку у многих девочек с синдромом Тернера фолликулы в яичниках сохраняются до подросткового возраста. Для определения кандидатов среди девочек и подростков с синдромом Тернера, а также сроков проведения процедур по сохранению фертильности необходимы биохимические маркеры, отражающие овариальный резерв в детстве и прогнозирующие степень ухудшения функции яичников. В статье представлен обзор актуальной информации об оценке овариального резерва у девочек с синдромом Тернера, рассмотрена зависимость овариального резерва от кариотипа, описаны результаты биопсии яичниковой ткани, а также опыт использования вспомогательных репродуктивных технологий и криоконсервации для достижения беременности у данных пациенток в будущем.
Заключение: Следует проводить раннюю оценку овариального резерва в возрасте до 10 лет, учитывая кариотип, уровни ФСГ, АМГ и ингибина В, спонтанное менархе и половое созревание, чтобы своевременно рассмотреть возможные варианты сохранения фертильности.

Ключевые слова

синдром Тернера
овариальный резерв
преждевременная недостаточность яичников
сохранение фертильности
криоконсервация

Синдром Тернера (СТ) – одна из наиболее частых аномалий половых хромосом у женщин. Частота встречаемости СТ составляет около 1 случая на 2500 новорожденных женского пола [1]. Около 50% пациентов с СТ имеют моносомный кариотип 45X, мозаичные формы (45,Х/46,ХХ, 45,Х/47,ХХХ, 45,Х/46,ХY, 45,X/47,XYY и 46,X,delXq) составляют 30–40%, из которых наиболее распространенным является кариотип 45X/46XX – 15%, а кариотипы с клеточной линией 46,XY и 47,XXX встречаются в 5–10% и 3–4% случаев соответственно. Наиболее частой структурной аномалией Х-хромосомы является изохромосома 46,X,i(Xq), что составляет 15–18% случаев СТ с мозаицизмом или без него. Кольцевая Х-хромосома обнаруживается примерно у 6% пациентов с СТ, а частота делеции Xp – около 2% [2].

Цитогенетические исследования выявили большую критическую хромосомную область (КХО) между Xq13 и Xq28, отвечающую за нормальную функцию яичников. Позже стало известно, что делеции в проксимальной области Xq13eq21, обозначенной авторами как КХО1, характерны для пациенток с нормальным менcтруальным циклом и фертильностью, что, возможно, связано с инактивацией аутосомных, а не Х-сцепленных генов при сбалансированных Х-аутосомных транслокациях в этой области [3]. Напротив, терминальные и интерстициальные делеции между Xq23 и Xq28 (КХО2) были выявлены у женщин с преждевременной недостаточностью яичников (ПНЯ), что позволяет предположить, что эта область может содержать специфические гены яичников; причем, по данным Mercer С.L. et al. (2013), потеря Xq26-Xq28 оказывает наибольшее влияние на функцию яичников [4]. В связи с полученными данными, в соответствии с клиническими рекомендациями международного консенсуса по СТ 2016 г., пациенток с делецией дистальнее Xq24 рекомендовано рассматривать как страдающих ПНЯ [5]. В исследовании Quilter C.R. et al. (2010) сообщается, что при сравнительном анализе геномной гибридизации (aCGH) 42 пациенток с идиопатической ПНЯ у 15 были обнаружены вариации числа копий генов (CNV) на хромосоме X и хромосоме 7 [6]. Эти исследования предполагают, что аномальная структура Х-хромосомы и даже CNV на аутосомах могут быть связаны с фертильностью пациенток, что служит основой для более детальных исследований вклада отдельных генов в генетическую этиологию ПНЯ при СТ [1].

Исследование Reynaud K. et al. (2004) показало, что развитие яичников у плодов с СТ является нормальным до 12 недель беременности, но потеря ооцитов у многих из них ускоряется после 18 недель беременности. У плодов с нормальным кариотипом взаимодействие ооцитов с клетками мезонефроса начинается на 18-й неделе беременности, примордиальные фолликулы определяются на 20-й неделе, а антральные фолликулы – на 26-й. На той же неделе гестации ооциты присутствуют в яичниках плодов c 45,X моносомией, но фолликулов не наблюдается, а количество половых клеток при рождении значительно меньше, чем у девочек с нормальным кариотипом в том же возрасте [7]. Hook E.B. et al. (2014) также наблюдали, что у эмбриона с аномальным хромосомным кариотипом в репродуктивном гребне было нормальное количество половых клеток. Однако во II триместре беременности количество половых клеток было значительно ниже, чем у нормального плода, что указывает на то, что скорость апоптоза половых клеток во время развития была выше у плода с аномальным хромосомным кариотипом [8].

Таким образом, при СТ отмечается уменьшенный пул оогониев в первичных гонадах и примордиальных фолликулов уже при рождении, что в сочетании с последующей постнатальной потерей гамет приводит к недостаточности яичников и отсутствию спонтанного полового созревания более чем в 80% случаев, а овариальный резерв у 90% девочек истощается до достижения репродуктивной зрелости [7].

Однако более поздние исследования показали, что жизнеспособные фолликулы могут быть даже в яичниках 12–13-летних девочек с классическим СТ без спонтанного пубертата, хотя качество этих фолликулов сомнительно [9].

Функция яичников у больных СТ с разными кариотипами зависит от типа аномалии Х-хромосомы. Плотность фолликулов яичников у пациенток с мозаичным СТ (45,Х/46,ХХ) выше, чем при Х-моносомном СТ, и примерно 50% девочек с мозаицизмом имеют функционирующие яичники и, как следствие, спонтанное половое созревание. Несмотря на различия в плотности фолликулов, ПНЯ затрагивает большинство пациенток с СТ и только у 5–10% наблюдаются регулярные менструации [10]. Спонтанная беременность встречается только у 2% женщин с СТ, в основном в молодом возрасте (23–24 года), и, как правило, у пациенток с мозаичным кариотипом [11].

В литературе имеются сообщения о возникновении спонтанной беременности у женщин с Х-моносомией; в том числе описано два случая повторных спонтанных беременностей, что указывает на возможное различие кариотипа яичников и периферического кариотипа, а также на то, что овариальный резерв может снижаться независимо от периферического кариотипа при СТ [11, 12].

Оценивая исходы спонтанной беременности у 480 пациенток с СТ, Bernard V. et al. в 2016 г. обнаружили, что прогностическими факторами спонтанной беременности у женщин с СТ являются возраст на момент постановки диагноза СТ, спонтанное появление менархе, регулярные менструации и кариотип с мозаицизмом без Y-фрагмента [11].

Сохранение фертильности у пациентов с СТ потенциально осуществимо, поскольку у многих девочек с СТ фолликулы в яичниках сохраняются до подросткового возраста, а у некоторых женщин с мозаичным СТ фолликулы сохраняются в течение многих лет, даже несмотря на то, что у них часто отмечается преждевременная менопауза [10].

В соответствии с клиническими рекомендациями международного консенсуса по СТ 2016 г. рекомендуется консультировать пациентов по поводу быстрого снижения фертильности и рассмотреть вопрос о сохранении фертильности в молодом возрасте, однако оптимальные сроки для сохранения фертильности не определены [5]. Так, в настоящее время нет достаточных данных, чтобы рекомендовать девочкам с СТ в возрасте до 12 лет способы достижения беременности в будущем с помощью программ криоконсервации и вспомогательных репродуктивных технологий [5, 10].

Для определения кандидатов среди девочек и подростков с СТ, а также сроков проведения процедур по сохранению фертильности необходимы биохимические маркеры, отражающие овариальный резерв в детстве.

Также важна возможность прогнозирования степени ухудшения функции яичников, особенно для пациенток с мозаичным кариотипом, что позволит пациенткам своевременно принимать решение относительно сохранения фертильности и планирования семьи [13].

Оценка овариального резерва

В мировой практике для оценки овариального резерва долгое время использовалось измерение количества антральных фолликулов, сывороточных уровней фолликулостимулирующего гормона (ФСГ), ингибина B и эстрадиола в ранней фолликулярной фазе. Однако все эти методы основаны на оси гипоталамус-гипофиз-яичники взрослых женщин. У детей гонадотропин-рилизинг-гормон вырабатывается на базальном уровне до 8 лет; в последующем у здоровых девочек начинается половое созревание. До этого периода уровни ФСГ, ингибина B и эстрадиола низкие. Несмотря на то что уровни гонадотропинов, как правило, выше у пациентов с СТ в первые 2–5 лет жизни, существует значительное сходство между уровнем этих гормонов у здоровых девочек и пациентов с СТ, особенно в периоде среднего детства [14]. Следовательно, считается, что уровень гонадотропинов может не отражать состояние овариального резерва до достижения половой зрелости.

В изучении оценки овариального резерва у девочек с СТ особый интерес представляют продольные исследования, оценивающие уровни гормонов у пациенток на протяжении взросления и соотносящие полученные значения с наличием спонтанного полового созревания. Одной из таких работ является ретроспективное продольное исследование Carpini S. et al. (2018), в котором изучалось динамическое изменение уровней ФСГ и лютеинизирующего гормона (ЛГ) у 15 пациенток с СТ, начиная с возраста менее 5 лет и до пубертатного периода. Исследование также представляет особую значимость тем, что в него вошли пациентки периода полового криза или «мини-пубертата», от рождения до 6 месяцев: у 4 из 5 девочек в возрасте менее полугода авторы отметили постменопаузальные уровни ФСГ (> 25,8 мМЕ/мл), у 1 – пубертатные значения гормона (>3,8, < 25,8 мМЕ/мл), а при последующем наблюдении ни у одной из 5 девочек не развилось спонтанное половое созревание [15]. Высокие концентрации ФСГ и ЛГ в периоде «мини-пубертата» также были выявлены у девочек с СТ в исследовании Johannsen T.H. et al. (2018), в котором авторы также отметили нормальное соотношение ЛГ/ФСГ, неопределяемые или низкие концентрации эстрадиола, ингибина В и АМГ у этих пациенток [16]. Уровни ФСГ у девочек с СТ в работе Carpini S. et al. (2018) отражали двухфазную возрастную модель: высокие значения в период новорожденности, «мини-пубертата» и раннего детства, которые снижались в периоде среднего детства, редко достигая нормального препубертатного диапазона, а затем снова повышались в периоде позднего детства и старше. Структура ЛГ, несмотря на двухфазность, выявила гораздо более высокие уровни в позднем детстве и подростковом возрасте, чем в периоде новорожденности, «мини-пубертате» и раннем детстве. Кроме того, снижение ЛГ в периоде среднего детства в сравнении с ранним детством было менее выраженным, чем снижение ФСГ, и часто наблюдались препубертатные уровни гормона [15]. Снижение уровней гонадотропинов у девочек с СТ в периоде среднего детства вне зависимости от остаточной функции яичников наблюдалось также в работах Hagen C.P. et al. (2010) и Hamza R.T. et al. (2018), что может свидетельствовать о том, что значения гонадотропинов могут не отражать овариальный резерв до начала полового созревания [14, 17]. Более того, в исследовании Carpini S. et al. (2018) обращает на себя внимание то, что спонтанное половое созревание наблюдалось только у девочек с нормальными уровнями ФСГ, зарегистрированными при динамическом наблюдении в периоде детства, а у пациенток с биологическим возрастом 10 лет и старше без спонтанного полового созревания определялись исключительно постменопаузальные концентрации ФСГ [15].

Продольное исследование 70 пациенток с СТ, выполненное Hagen C.P. et al. в 2010 г., выявило, что исключительно неопределяемые уровни ингибина В предсказывали ПНЯ (отсутствие полового созревания или остановку полового созревания) у 20 из 20 девочек с СТ, в то время как у 9 из 10 пациенток со спонтанным половым созреванием было зарегистрировано как минимум одно определяемое измерение ингибина B от начала периода детства до полового созревания. Несмотря на то что специфичность ингибина В в качестве маркера ПНЯ снижена из-за того, что у 37% здоровых девочек (6–12 лет) ингибин В не определяется, авторы отмечают, что последовательное измерение флуктуирующего уровня ингибина В в данной когорте пациентов увеличит возможность обнаружения остаточной функции яичников [14]. Messina M.F. et al. (2015) продемонстрировали, что уровень ингибина В у пациенток с СТ с первичной аменореей значительно ниже (42,0 пг/мл, 38–46 пг/мл), чем в группе контроля (83,0 пг/мл), тогда как у пациенток с регулярными менструальными циклами уровни гормона сопоставимы с таковыми у девочек из контрольной группы [18].

Известно, что уровень сывороточного АМГ является достоверным маркером растущего пула фолликулов и, косвенно, состояния овариального резерва. У женщин репродуктивного возраста уровень АМГ в сыворотке сильно коррелирует с количеством антральных фолликулов и становится неопределяемым в период постменопаузы. Снижение уровня АМГ в сыворотке предшествует изменениям традиционных маркеров резерва яичников, таких как ФСГ, ингибин B и эстрадиол. В связи с чем считается, что уровень АМГ в сыворотке крови представляет собой маркер овариального резерва у взрослых женщин, независимо от оси гипоталамус-гипофиз-яичники. В детском возрасте уровень АМГ незначительно повышается с момента рождения и достигает плато в подростковом возрасте; его снижение с возрастом начинает отмечаться только после 25 лет. Тем не менее оценка сывороточного АМГ в молодом возрасте также указывает на продолжающееся фолликулярное развитие [19].

Одной из самых значимых работ по изучению овариального резерва девочек с СТ является продольное исследование Европейского общества педиатрической эндокринологии (Visser J.A. et al.) 2013 г., в котором производилась оценка уровней АМГ в сыворотке 270 девочек с СТ с определением корреляции значений с возрастом, кариотипом, половым развитием и биохимическими маркерами функции гонад пациенток (сывороточный ЛГ, ФСГ, ингибин B и эстрадиол). В когорте пациентов с измеряемым уровнем АМГ авторы наблюдали пограничную квадратичную зависимость между уровнем АМГ и возрастом девочек с повышением уровня в раннем детстве и начальным снижением в старшей возрастной группе, что может свидетельствовать о том, что динамика фолликулов у пациентов с СТ с измеримым уровнем AMГ подобна динамике в здоровой группе контроля [20]. Также была обнаружена положительная корреляция между уровнем АМГ в сыворотке крови и клиническими признаками полового созревания (телархе, менархе), а спонтанное менархе было зарегистрировано у 58,3 и 2,9% девочек с измеряемым уровнем АМГ в сыворотке и без него соответственно, что находит подтверждение и в работе Hagen C.P. et al. (2010) [19]. Особый интерес в исследовании Visser J.A. et al. (2013) представляет выявление сильной отрицательной связи между уровнями ФСГ и АМГ у девочек старше и младше 12 лет: вероятность определения измеримого уровня АМГ была в 19 раз ниже, если уровень ФСГ повышался в 10 раз, в то время как отрицательная связь для ЛГ и АМГ отмечалась лишь у девочек старше 12 лет и была менее значимой, а между уровнями AMГ, эстрадиола и ингибина B вовсе не было обнаружено значимой связи. Visser J.A. et al. (2013) также отметили, что в группе девочек старше 12 лет ФСГ менее 10 Ед/л коррелировал с измеримым уровнем АМГ [20]. Полученные результаты согласуются с продольным исследованием 120 пациенток с СТ, выполненным Lunding S.A. et al. в 2015 г., которое обнаружило, что АМГ<4 пмоль/л (<-2 SD) является предиктором отсутствия полового созревания у девочек в препубертатном периоде и ПНЯ в старшем возрасте, а уровень АМГ≤3 пмоль/л как маркер ПНЯ имеет чувствительность и специфичность 95% [21]. Отрицательная корреляция уровней АМГ и ФСГ была также описана в работе Hamza R.T. et al. (2018), где авторы также выявили положительную корреляцию между вероятностью определения измеримых уровней АМГ в сыворотке и увеличением возраста у пациенток с СТ младше 12 лет и обратную связь у девочек старше 12 лет [17].

Зависимость овариального резерва от кариотипа

Данные Fechner P.Y. et al. (2006) демонстрируют отчетливые различия в характере секреции ФСГ между девочками 4–6 лет с моносомным СТ, у которых отмечались повышенные уровни ФСГ (68,3±36,0 МЕ/л) до 6 лет, несмотря на его медленное снижение за двухлетний период наблюдения, и девочками с 45,X/46,XX мозаицизмом, уровни ФСГ которых указывают на сохраненную функцию яичников в большинстве случаев и не имеют тенденции к существенному изменению за период наблюдения [22]. Результаты этого исследования нашли подтверждение в продольном исследовании 70 пациенток с СТ Hagen C.P. et al., выполненном в 2010 г. [14].

По результату крупного исследования Европейского общества педиатрической эндокринологии Visser J.A. et al. (2013), уровни АМГ в сыворотке у пациенток с СТ сильно коррелировали с кариотипом: вероятность наличия измеримого сывороточного AMГ у девочек с мозаичным кариотипом 45,X/46,XX была в 37 раз выше, а у девочек с другими кариотипами (46,X,i(Xq), 46,X,i(Xp), 46,X,del(X), 46,X,r(X), 45,X/47,XXX и др.) в 3,4 раза выше в сравнении с пациентками с кариотипом 45,X [20]. Аналогичные результаты были получены и другими авторами: Hamza R.T. et al. (2018) [14], Hagen SP et al. (2010) [19], Purushothaman R. et al. (2010) [23].

Hagen S.P. et al. в 2010 г. представили значения сывороточного АМГ у 172 пациенток с СТ в зависимости от их возраста, кариотипа и функции яичников, продемонстрировав, что у пациенток с кариотипом 45,X, у которых уровень АМГ находился в референсном диапазоне, отмечалась нормальная функция яичников, что не позволяет исключить возможность того, что в тканях яичников этих пациенток мог присутствовать мозаицизм с преобладанием нормальной клеточной линии, не выявляемой в периферической крови [19, 24].

В работе Purushothaman R. et al. (2010) показано, что уровень ингибина А был значительно выше в группе пациенток с СТ с удовлетворительной вероятностью фертильности (45,X/46,XX; 46,X del(Xp)) в сравнении с группой с плохим прогнозом фертильности (45,X; 45,X/46,Xr(X); 46,X del(Xq); 45,X/46,XY), это позволяет предположить, что он может быть полезен при оценке потенциала фертильности у девочек с СТ [23]. В то время как в работе Messina M.F. et al. (2015) средний уровень ингибина В значимо не различался среди различных подгрупп по отношению к кариотипу: 42,0 пг/мл – у пациентов с моносомией, 41,2 пг/мл – при мозаицизме и 42,2 пг/мл – при структурных аномалиях Х-хромосомы [25].

Hankus M. et al. в 2018 г. исследовали предикторы спонтанного полового созревания, проведя продольное исследование 110 девочек с СТ. В работе авторы описали, что у пациентов с Х-моносомным кариотипом вероятность спонтанного полового созревания была вдвое ниже, а вероятность спонтанного менархе – в 3 раза ниже, чем у пациентов с иным кариотипом СТ (45,X/46,XX; 45,X/46,Xr(X); 46,Xi(Xq); 45,X/46,Xi(X)(q10); 45,X/46,XX/47,XXX; 45,X/47,XXX). Из результатов исследования следует вывод о том, что возраст начала спонтанного полового созревания и менархе нельзя предсказать только на основании кариотипа, поскольку авторы не выявили различий между обеими группами [26].

Fitz V.W. et al. (2021) в недавней работе охарактеризовали возраст возникновения недостаточности яичников у пациенток с СТ в зависимости от кариотипа на основании ретроспективного анализа 79 девочек с СТ. Возраст ПНЯ определялся на момент впервые зарегистрированного уровня ФСГ>30 МЕ/мл или АМГ<0,01 нг/мл. Среднее время от постановки диагноза СТ до потери функции яичников среди 55 человек с ПНЯ составило 4,9 года. Средний возраст манифестации недостаточности яичников в группе пациентов с Х-моносомией составил 10 лет, причем у всех 30 девочек этой группы зарегистрирована ПНЯ, в то время как в группе пациентов со смешанным кариотипом без Y-хромосомного материала манифестация ПНЯ происходила в среднем в 13 лет. Наименьший риск потери овариального резерва наблюдался в группе девочек с мозаичным кариотипом 45X/46XX, в которой была только 1 пациентка с потерей яичникового резерва в возрасте 4 лет. Статистически значимо получен результат, определяющий, что на каждый процентный пункт увеличения 45,X клеток в периферическом кариотипе наблюдалось снижение возраста яичниковой недостаточности на 0,09 года. На основании исследования авторы предлагают мониторинг биомаркеров яичников и рассмотрение возможности направления к репродуктологу в возрасте 10–12 лет, особенно пациентов с мозаичным кариотипом, чтобы дать время для обсуждения и рассмотрения индивидуальных вариантов сохранения фертильности [13].

Характеристика биоптатов ткани яичников у девочек с синдромом Тернера

В 2002 г. Hreinsson J.G. et al. исследовали ткань гонад 9 девочек с СТ в возрасте 12–19 лет перед проведением криоконсервации, обнаружив фолликулы в образцах биопсии у 8 из 9 пациенток, причем наибольшее количество наблюдалось у младших девочек. Авторы отметили корреляцию между уровнями ФСГ у пациенток без применения гормональной терапии и плотностью фолликулов: у лиц с самым низким уровнем ФСГ была самая высокая плотность фолликулов.

Корреляция между плотностью фолликулов и кариотипом была менее ясна, поскольку, несмотря на то, что наибольшее количество фолликулов наблюдалось у лиц с мозаичным СТ, у 2 девочек с моносомным кариотипом 45,X также определялись первичные и примордиальные фолликулы с плотностью 50–128 фолликулов/мм3. В соответствии с полученными результатами авторы рекомендовали оптимальное время для получения как можно большего количества фолликулов для криоконсервации – возраст 12–13 лет, особенно в случаях Х-моносомии [27].

Позже результаты биопсии яичниковой ткани в исследовании Borgstrom B. et al. (2009) позволили выделить 5 факторов, значимых для обнаружения оставшихся фолликулов в яичниках девочек с СТ в возрасте 13–17 лет: кариотип, низкий уровень ФСГ, высокий уровень АМГ, спонтанное менархе и спонтанное начало полового созревания. Авторы определили следующие категории девочек, которые имеют самые высокие шансы на наличие фолликулов и могут стать кандидатами для проведения криоконсервации: 1) девочки с мозаицизмом (45X/46XX/47XXX); 2) девочки со спонтанным половым созреванием и кариотипом 45Х или 45Х/46Х+SAs и 3) девочки с нормальным сывороточным уровнем ФСГ и/или нормальным уровнем АМГ с наличием или отсутствием спонтанного полового созревания. Исследование продемонстрировало, что уровни АМГ в сыворотке напрямую коррелировали с количеством фолликулов яичников, оцененным с помощью гистологического анализа 47 биоптатов [10].

Работа Mamsen L.S. et al. (2019) стала первым исследованием, в котором охарактеризованы фолликулы 15 пациенток с СТ в возрасте 5–22 лет, ткань яичников которых была получена для последующей криоконсервации, а также изучен потенциал созревания их ооцитов in vitro. Фолликулы были обнаружены в 60% биоптатов (9 из 15) из яичников пациенток с СТ: у 8 девочек с мозаичным кариотипом и 1 с моносомным кариотипом в возрасте 5 лет. У всех пациенток, в яичниковой ткани которых были обнаружены фолликулы, определялся измеряемый уровень АМГ и/или ФСГ<10 МЕ/л. В 78% яичников (7 из 9) с фолликулами плотность фолликулов находилась в пределах 95% доверительного интервала контрольной группы. Корреляции между плотностью фолликулов и возрастом обнаружено не было.

Фолликулы большинства яичников (6 из 9) имели аномальную морфологию: деформацию, вакуолизацию ооцитов и неполный слой гранулезных клеток, окружающих ооцит, что приводило к неправильной форме ооцита и частичному отсутствию связи с базальной мембраной и стромальными клетками. Более того, шесть фолликул-специфических белков экспрессировались одинаково у пациентов с СТ и в контрольной группе, однако было обнаружено, что апоптоз и экспрессия белка zona pellucida при СТ являются аномальными. Фолликулярная жидкость, полученная из мелких антральных фолликулов пациентов с СТ, имела более низкие концентрации эстрогена и тестостерона и более высокие концентрации АМГ, чем в контрольной группе [28].

Peek R. et al. в 2019 г. первыми опубликовали анализ кариотипа примордиальных и первичных фолликулов яичников, клеток гранулезы и стромальных клеток 10 пациенток с СТ, в котором сообщают о том, что обнаружена корреляция между мозаицизмом яичниковой и экстраовариальной ткани (лимфоциты, буккальные клетки и клетки мочи). Большинство ооцитов из мелких фолликулов пациентов с мозаичным СТ имели нормальный кариотип, но все или большая часть гранулезных клеток отдельных фолликулов были анеуплоидными. Фолликулы в одном яичнике у пациенток с СТ могут различаться уровнем мозаичности гранулезных клеток. В яичниках пациенток с X-моносомией не было обнаружено фолликулов и признаков мозаицизма в клетках стромы, однако уровень мозаицизма, наблюдаемый в неяичниковой ткани девочек с мозаичным СТ, не коррелировал с таковым в клетках яичников. Однако, несмотря на наличие морфологически нормальных фолликулов, у пациенток с мозаичным СТ аберрантный кариотип клеток гранулезы и стромального компартмента яичников может оказывать негативное влияние на функцию яичников. Из-за ускоренного апоптоза и более длительного клеточного цикла сроки пролиферации гранулезных клеток во время созревания фолликулов могут быть искажены.

Примечательно, что яичник, стромальный компартамент клеток которого содержал 10% клеток 46,ХХ, также имел нормальную морфологическую картину. Явной корреляции между количеством фолликулов в яичнике и кариотипом соматических клеток или ооцитов пациенток в исследовании не было обнаружено [29].

В исследовании Balen A.H. et al. (2010) 60% стромальных клеток яичников пациентки 45,X/46,XX, из которых ооциты 46,XX были извлечены после стимуляции ФСГ, имели моносомный кариотип 45,X, что может указывать на возможность развития фолликулов, даже если большинство стромальных клеток яичников анеуплоидны [30].

В 2020 г. Nadesapillai S. et al. описали случай обнаружения фолликулов у 14-летней девочки с моносомным СТ при наличии скрытого гонадного мозаицизма. Кариотипирование экстраовариальных клеток (лимфоциты, буккальные клетки и клетки мочи) определило исключительно клеточную линию 45,X. FISH-анализ показал, что большинство ооцитов имело нормальное тетраплоидное содержание Х-хромосомы в профазе мейоза I, в компартменте стромальных клеток были клеточные линии 45,Х и 47,ХХХ, а все клетки фолликулярной гранулезы имели кариотип 45,Х. Анализ роста фолликулов in vitro продемонстрировал, что однослойные фолликулы способны созревать во вторичные фолликулы, но слои их гранулезных клеток и базальная мембрана деформированы. Авторы сообщают, что аномальная толстая базальная пластинка, которую они наблюдали во вторичных фолликулах пациентки с СТ, может нарушать рост массы делящихся гранулезных клеток, что приводит к искажению клеточных слоев и фолликулярной морфологии [31]. Более того, она задерживает завершение клеточного цикла 45,X-клеток, что может нарушать не только пролиферацию моносомных гранулезных клеток во время фолликулогенеза, но также и стадийно-специфическую двунаправленную передачу сигналов между ооцитом и окружающими гранулезными клетками [32].

Также функциональная способность ткани яичника после аутотрансплантации может зависеть от процентного содержания нормальных клеток 46,ХХ, необходимых для роста фолликулов и овуляции, и наличия анеуплоидии в ооцитах примордиальных и первичных фолликулов [7, 29, 33].

Результаты сохранения фертильности у пациенток с синдромом Тернера

Криоконсервация ооцитов после стимуляции овуляции является возможным вариантом сохранения фертильности у молодых женщин с мозаичным СТ с персистирующей функцией яичников [5]. За последние 10 лет было доложено о 18 случаях криоконсервации зрелых ооцитов у пациенток с СТ [34].

В ретроспективном когортном исследовании Talaulikar V.S. et al. (2019) описаны 7 пациенток с СТ в возрасте 18–26 лет с кариотипами 45,X(100%); 45,X (83%)/46,XX (17%); 45,X (61%)/46,XX (39%); 45,X/46,XX/47,XXX; 45,X (63%)/46,XX (37%); 45,X (50%)/46,XX (50%); 45,X (88%)/46,XX (12%), которым были произведены стимуляция суперовуляции, пункция антральных фолликулов с их последующей криоконсервацией. Было получено 9, 13, 9, 10, 4, 6, 12 ооцитов соответственно, из которых больше половины или все ооциты были подвержены криоконсервации в зрелом состоянии. Авторы не обнаружили взаимосвязи между исходным количеством антральных фолликулов, уровнем АМГ и числом полученных ооцитов [35].

Oktay K. et al. (2014) описали успешное проведение криоконсервации зрелых ооцитов у 3 девочек с мозаичным СТ в возрасте 13 лет с кариотипами 45,X (27/30)/47,XXX (3/30), 46,ХХ (11/20)/45,Х (9/20), 46,ХХ (16/20)/45,Х (4/20). Было получено соответственно 19, 18 и 16 ооцитов, из которых 10, 12 и 13 зрелых ооцитов были подвержены криоконсервации (часть ооцитов была получена при повторном проведении пункции или при проведении процедуры созревания ооцитов in vitro) [36].

В последней работе Strypstein L. et al. (2022) доложили о случае первого живорождения после витрификации ооцитов у женщины с мозаичным кариотипом СТ (45,X/46,XX) [37].

К сожалению, количество зрелых ооцитов, получаемых за один цикл стимуляции овуляции у пациенток с СТ, крайне мало, в связи с чем процедуру часто приходится повторять, чтобы в итоге получить более 10 зрелых ооцитов [1].

Применение криоконсервации ооцитов ограничено небольшим процентом девочек с СТ, у которых овариальный резерв будет сохранен после спонтанного начала полового созревания и менархе. Кроме того, пациентка должна быть эмоционально зрелой, чтобы пройти процедуру, включающую стимуляцию суперовуляции и последующую трансвагинальную пункцию фолликулов [38]. Альтернативным методом сохранения фертильности является криоконсервация ткани яичника.

Первый случай криоконсервации ткани яичника у женщины с мозаичным СТ был зарегистрирован в 2008 г. [39]. Более 10 лет назад было предложено, что сочетание криоконсервации ткани яичника и сбора незрелых ооцитов из ткани с последующей активацией in vitro и витрификацией созревших ооцитов представляет собой многообещающий подход к сохранению фертильности для пациенток с мозаичным СТ [40]. Однако протоколы, подтверждающие его использование, получены в основном от пациенток со злокачественными заболеваниями.

Donnez J. et al. в 2004 г. впервые сообщили о том, что пациентка с ПНЯ, вызванной химиотерапией лимфомы Ходжкина, успешно забеременела и родила после ортотопической трансплантации ее криоконсервированной ткани яичника [41]. По актуальным данным, к 2017 г. количество живорождений по этой технологии превысило 130 детей, причем коэффициент живорождения постоянно растет [42]. В 2020 г. было зарегистрировано около 200 живорождений в результате трансплантации яичниковой ткани, которая была криоконсервирована для сохранения фертильности пациенток [43].

В исследовании Poirot С. et al. (2019) сообщалось о криоконсервации ткани яичников у 418 девочек и подростков в возрасте до 15 лет со злокачественными и доброкачественными заболеваниями. Недавно 3 пациентам была проведена аутотрансплантация, но о беременности пока не сообщалось [44].

Corkum K.S. еt al. (2019) доложили о 1019 пациентах, прошедших криоконсервацию овариальной ткани, в возрасте от 0,4 до 20,4 года, из которых 298 были моложе 13 лет. 18 пациенткам была проведена аутотрансплантация размороженной ткани коры яичника (средний возраст на момент аутотрансплантации – 24 года), которая была криоконсервирована в возрасте до 21 года, в результате чего родились 10 детей. Среднее время между криоконсервацией яичниковой ткани и ее аутотрансплантацией составило 8,7 года [45]. Gellert S.E. et al. (2018) сообщили о рождении в общей сложности 93 детей после аутотрансплантации размороженной ткани яичника, причем 51% беременностей наступили в результате естественного зачатия. Возрастной диапазон пациенток на момент криоконсервации овариальной ткани, у которых зарегистрированы живорождения или сохранение беременности, составил от 9 до 38 лет [46].

Считается, что полное биологическое развитие яичников завершается в III триместре беременности, следовательно, возможно, что размороженная ткань яичника после аутотрансплантации будет функционировать независимо от возраста ребенка, в котором эта ткань была криоконсервирована [40]. Подтверждение этому представлению нашлось в сообщении о первом живорождении после аутотрансплантации размороженной ткани яичника, криоконсервированной до менархе, о котором сообщалось в 2015 г. [47]. Если ткань яичников не подвергается криоконсервации в раннем возрасте, успех этой технологии у девочек с СТ, особенно с моносомным кариотипом, может быть предсказуемо ограничен в результате ускоренного истощения фолликулярного пула [40].

Mamsen L.S. et al. сообщили о 15 пациентках с СТ в возрасте от 5 до 22 лет, которым была проведена криоконсервация ткани яичников. В этой работе также был собран 31 ооцит-кумулюсный комплекс из яичниковой ткани пациентки с СТ в возрасте 18 лет и культивирован в течение 48 ч in vitro, в результате чего было получено 5 ооцитов метафазы II (скорость созревания 16%, скорость дегенерации 19%). Автор предполагает, что преимущества процедуры могут быть ограничены тщательно отобранной группой пациентов с мозаичным кариотипом [28].

По данным систематического обзора литературы Jeve Y.B. (2019), за последние 16 лет криоконсервация ооцитов или ткани яичников проведена экспериментально более чем у 150 девочек и подростков с СТ, однако эффективность для этой подгруппы пациентов до сих пор неизвестна из-за отсутствия данных последующего наблюдения [40].

В настоящее время проводятся 2 крупных многоцентровых исследования, направленных на оценку актуальности криоконсервации ткани яичников у пациенток с СТ от 0 до 25 лет (Франция, с 2011 г.), а также по изучению частоты живорождения у женщин с СТ после криоконсервации ткани яичников в детском возрасте от 2 до 18 лет с последующей аутотрансплантацией во взрослом возрасте (Нидерланды, с 2018 г.), которые, вероятно, предоставят доказательную базу эффективности сохранения фертильности у девочек с СТ и позволят выявить пациенток, которым процедуры сохранения фертильности принесут наибольшую пользу [48, 49]. Также с февраля 2020 г. в Нидерландах проводится исследование гормонального спектра ЛГ, ФСГ, АМГ, ингибина В, тестостерона и эстрадиола у девочек с СТ в периоде мини-пубертата для оценки овариальной функции и прогнозирования овариального резерва в будущем [50].

Заключение

Поскольку резервная способность яичников у девочек с СТ различается, необходимо как можно раньше выявлять пациенток, которые смогут сохранить свою фертильность. Основываясь на вышеупомянутых исследованиях, девочкам с СТ следует проводить раннюю оценку овариального резерва в возрасте до 10 лет, учитывая кариотип, уровни ФСГ, АМГ и ингибина В, спонтанное менархе и половое созревание, чтобы своевременно рассмотреть возможные варианты сохранения фертильности. Сывороточный АМГ является достоверным маркером функции яичников у девочек препубертатного периода и подростков с СТ, а последовательное измерение флуктуирующих уровней ФСГ и ингибина В уже в периоде детства у этой когорты пациентов может быть перспективным методом обнаружения остаточной функции яичников.

По причине ограничений применения криоконсервации ооцитов у девочек с СТ криоконсервация ткани яичника представляется более многообещающим методом сохранения их фертильности, поскольку она может быть выполнена у детей независимо от их возраста и активности яичников и, вероятно, позволит сохранить фертильность большему количеству пациентов.

Список литературы

  1. Ye M., Yeh J., Kosteria I., Li L. Progress in fertility preservation strategies in turner syndrome. Front. Med. (Lausanne). 2020; 7: 3. https://dx.doi.org/10.3389/fmed.2020.00003.
  2. Hall J.G., Gilchrist D.M. Turner syndrome and its variants. Pediatr. Clin. North Am. 1990; 37(6): 1421-40. https://dx.doi.org/10.1016/s0031-3955(16)37018-3.
  3. Rizzolio F., Bione S., Sala C., Goegan M., Gentile M., Gregato G. et al. Chromosomal rearrangements in Xq and premature ovarian failure: mapping of 25 new cases and review of the literature. Hum. Reprod. 2006; 21(6): 1477-83. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dei495.
  4. Mercer C.L., Lachlan K., Karcanias A., Affara N., Huang S., Jacobs P.A., Thomas N.S. Detailed clinical and molecular study of 20 females with Xq deletions with special reference to menstruation and fertility. Eur. J. Med. Genet. 2013; 56(1): 1-6. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejmg.2012.08.012.
  5. Gravholt C.H., Andersen N.H., Conway G.S., Dekkers O.M., Geffner M.E., Klein K.O. et al.; International Turner Syndrome Consensus Group. Clinical practice guidelines for the care of girls and women with Turner syndrome: proceedings from the 2016 Cincinnati International Turner Syndrome Meeting. Eur. J. Endocrinol. 2017; 177(3): G1-70. https://dx.doi.org/10.1530/EJE-17-0430.
  6. Quilter C.R., Karcanias A.C., Bagga M.R., Duncan S., Murray A., Conway G.S. et al. Analysis of X chromosome genomic DNA sequence copy number variation associated with premature ovarian failure (POF). Hum. Reprod. 2010; 25(8): 2139-50. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deq158.
  7. Reynaud K., Cortvrindt R., Verlinde F., De Schepper J., Bourgain C., Smitz J. Number of ovarian follicles in human fetuses with the 45,X karyotype. Fertil. Steril. 2004; 81(4): 1112-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2003.12.011.
  8. Hook E.B., Warburton D. Turner syndrome revisited: review of new data supports the hypothesis that all viable 45,X cases are cryptic mosaics with a rescue cell line, implying an origin by mitotic loss. Hum. Genet. 2014; 133(4): 417-24. https://dx.doi.org/10.1007/s00439-014-1420-x.
  9. Hreinsson J.G., Otala M., Fridström M., Borgström B., Rasmussen C., Lundqvist M. et al. Follicles are found in the ovaries of adolescent girls with Turner's syndrome. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002; 87(8): 3618-23. https://dx.doi.org/10.1210/jcem.87.8.8753.
  10. Borgström B., Hreinsson .J, Rasmussen C., Sheikhi M., Fried G., Keros V. et al. Fertility preservation in girls with turner syndrome: prognostic signs of the presence of ovarian follicles. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2009; 94(1): 74-80. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2008-0708.
  11. Bernard V., Donadille B., Zenaty D., Courtillot C., Salenave S., Brac de la Perrière A. et al. CMERC Center for Rare Disease. Spontaneous fertility and pregnancy outcomes amongst 480 women with Turner syndrome. Hum. Reprod. 2016; 31(4): 782-8. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dew012.
  12. Mortensen K.H., Rohde M.D., Uldbjerg N., Gravholt C.H. Repeated spontaneous pregnancies in 45,X Turner syndrome. Obstet. Gynecol. 2010; 115(2, Pt 2): 446-9. https://dx.doi.org/10.1097/AOG.0b013e3181cb5b2a.
  13. Fitz V.W., Law J.R., Peavey M. Karyotype is associated with timing of ovarian failure in women with Turner syndrome. J. Pediatr. Endocrinol. Metab. 2021; 34(3): 319-23. https://dx.doi.org/10.1515/jpem-2020-0304.
  14. Hagen C.P., Main K.M., Kjaergaard S., Juul A. FSH, LH, inhibin B and estradiol levels in Turner syndrome depend on age and karyotype: longitudinal study of 70 Turner girls with or without spontaneous puberty. Hum. Reprod. 2010; 25(12): 3134-41. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deq291.
  15. Carpini S., Carvalho A.B., de Lemos-Marini S.H.V., Guerra-Junior G., Maciel-Guerra A.T. FSH may be a useful tool to allow early diagnosis of Turner syndrome. BMC Endocr. Disord. 2018; 18(1): 8. https://dx.doi.org/10.1186/s12902-018-0236-4.
  16. Johannsen T.H., Main K.M., Ljubicic M.L., Jensen T.K., Andersen H.R., Andersen M.S. et al. Sex differences in reproductive hormones during mini-puberty in infants with normal and disordered sex development. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2018; 103(8): 3028-37. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2018-00482.
  17. Hamza R.T., Mira M.F., Hamed A.I., Ezzat T., Sallam M.T. Anti-Müllerian hormone levels in patients with turner syndrome: Relation to karyotype, spontaneous puberty, and replacement therapy. Am. J. Med. Genet. A. 2018; 176(9): 1929-34. https://dx.doi.org/10.1002/ajmg.a.40473.
  18. Messina M.F., Aversa T., Salzano G., Costanzo D., Sferlazzas C., Mirabelli S. et al. Inhibin B in adolescents and young adults with Turner syndrome. J. Pediatr. Endocrinol. Metab. 2015; 28(11-12): 1209-14. https://dx.doi.org/10.1515/jpem-2014-0229.
  19. Hagen C.P., Aksglaede L., Sorensen K., Main K.M., Boas M., Cleemann L. et al. Serum levels of anti-Mullerian hormone as a marker of ovarian function in 926 healthy females from birth to adulthood and in 172 Turner syndrome patients. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2010; 95(11): 5003-10. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2010-0930.
  20. Visser J.A., Hokken-Koelega A.C., Zandwijken G.R., Limacher A., Ranke M.B., Flück C.E. Anti-Müllerian hormone levels in girls and adolescents with Turner syndrome are related to karyotype, pubertal development and growth hormone treatment. Hum. Reprod. 2013; 28(7): 1899-907. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/det089.
  21. Lunding S.A., Aksglaede L., Anderson R.A., Main K.M., Juul A., Hagen C.P., Pedersen A.T. AMH as predictor of premature ovarian insufficiency: A Longitudinal Study of 120 Turner Syndrome Patients. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2015; 100(7): E1030-8. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2015-1621.
  22. Fechner P.Y., Davenport M.L., Qualy R.L., Ross J.L., Gunther D.F., Eugster E.A. et al.; Toddler Turner Study Group. Differences in follicle-stimulating hormone secretion between 45,X monosomy Turner syndrome and 45,X/46,XX mosaicism are evident at an early age. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2006; 91(12): 4896-902. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2006-1157.
  23. Purushothaman R., Lazareva O., Oktay K., Ten S. Markers of ovarian reserve in young girls with Turner's syndrome. Fertil. Steril. 2010; 94(4): 1557-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.12.026.
  24. Fernández-García R., García-Doval S., Costoya S., Pásaro E. Analysis of sex chromosome aneuploidy in 41 patients with Turner syndrome: a study of 'hidden' mosaicism. Clin. Genet. 2000; 58(3): 201-8. https://dx.doi.org/10.1034/j.1399-0004.2000.580307.x.
  25. Messina M.F., Aversa T., Salzano G., Costanzo D., Sferlazzas C., Mirabelli S. et al. Inhibin B in adolescents and young adults with Turner syndrome. J. Pediatr. Endocrinol. Metab. 2015; 28(11-12): 1209-14. https://dx.doi.org/10.1515/jpem-2014-0229.
  26. Hankus M., Soltysik K., Szeliga K., Antosz A., Drosdzol-Cop A., Wilk K. et al. Prediction of spontaneous puberty in Turner syndrome based on mid-childhood gonadotropin concentrations, karyotype, and ovary visualization: A Longitudinal Study. Horm. Res. Paediatr. 2018; 89(2): 90-7. https://dx.doi.org/10.1159/000485321.
  27. Hreinsson J.G., Otala M., Fridström M., Borgström B., Rasmussen C., Lundqvist M. et al. Follicles are found in the ovaries of adolescent girls with Turner's syndrome. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002; 87(8): 3618-23. https://dx.doi.org/10.1210/jcem.87.8.8753.
  28. Mamsen L.S., Charkiewicz K., Anderson R.A., Telfer E.E., McLaughlin M., Kelsey T.W. et al. Characterization of follicles in girls and young women with Turner syndrome who underwent ovarian tissue cryopreservation. Fertil. Steril. 2019; 111(6): 1217-25.e3. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2019.02.003.
  29. Peek R., Schleedoorn M., Smeets D., van de Zande G., Groenman F., Braat D. et al. Ovarian follicles of young patients with Turner's syndrome contain normal oocytes but monosomic 45,X granulosa cells. Hum. Reprod. 2019; 34(9):1686-96. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dez135.
  30. Balen A.H., Harris S.E., Chambers E.L., Picton H.M. Conservation of fertility and oocyte genetics in a young woman with mosaic Turner syndrome. BJOG. 2010; 117(2): 238-42. https://dx.doi.org/10.1111/j.1471-0528.2009.02423.x.
  31. Nadesapillai S., van der Velden J., Smeets D., van de Zande G., Braat D., Fleischer K., Peek R. Why are some patients with 45,X Turner syndrome fertile? A young girl with classical 45,X Turner syndrome and a cryptic mosaicism in the ovary. Fertil. Steril. 2021; 115(5): 1280-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.11.006.
  32. McLaughlin E.A., McIver S.C. Awakening the oocyte: controlling primordial follicle development. Reproduction. 2009; 137(1): 1-11. https://dx.doi.org/10.1530/REP-08-0118.
  33. Modi D.N., Sane S., Bhartiya D. Accelerated germ cell apoptosis in sex chromosome aneuploid fetal human gonads. Mol Hum Reprod. 2003; 9(4): 219-25. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gag031.
  34. Schleedoorn M.J., van der Velden A.A.E.M., Braat D.D.M., Peek R., Fleischer K. To Freeze or Not to Freeze? An update on fertility preservation in females with Turner syndrome. Pediatr. Endocrinol. Rev. 2019; 16(3): 369-82. https://dx.doi.org/10.17458/per.vol16.2019.svb.tofreezeornot.
  35. Talaulikar V.S., Conway G.S., Pimblett A., Davies M.C. Outcome of ovarian stimulation for oocyte cryopreservation in women with Turner syndrome. Fertil. Steril. 2019; 111(3): 505-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.11.010.
  36. Oktay K., Bedoschi G. Oocyte cryopreservation for fertility preservation in postpubertal female children at risk for premature ovarian failure due to accelerated follicle loss in Turner syndrome or cancer treatments. J. Pediatr. Adolesc. Gynecol. 2014; 27(6): 342-6. https://dx.doi.org/10.1016/j.jpag.2014.01.003.
  37. Strypstein L., Van Moer E., Nekkebroeck J., Segers I., Tournaye H., Demeestere I. et al. First live birth after fertility preservation using vitrification of oocytes in a woman with mosaic Turner syndrome. J. Assist. Reprod. Genet. 2022; 39(2): 543-9. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-022-02420-4.
  38. Oktay K., Bedoschi G., Berkowitz K., Bronson R., Kashani B., McGovern P. et al. Fertility preservation in women with Turner syndrome: A comprehensive review and practical guidelines. J. Pediatr. Adolesc. Gynecol. 2016; 29(5): 409-16. https://dx.doi.org/10.1016/j.jpag.2015.10.011.
  39. Huang J.Y., Tulandi T., Holzer H., Lau N.M., Macdonald S., Tan S.L., Chian R.C. Cryopreservation of ovarian tissue and in vitro matured oocytes in a female with mosaic Turner syndrome: case report. Hum. Reprod. 2008; 23(2): 336-9. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dem307.
  40. Jeve Y.B., Gelbaya T., Fatum M. Time to consider ovarian tissue cryopreservation for girls with Turner's syndrome: an opinion paper. Hum Reprod Open. 2019; 2019(3): hoz016. https://dx.doi.org/10.1093/hropen/hoz016.
  41. Donnez J., Dolmans M.M., Demylle D., Jadoul P., Pirard C., Squifflet J. et al. Livebirth after orthotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue. Lancet. 2004; 364(9443): 1405-10. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(04)17222-X.
  42. Schleedoorn M., van der Velden J., Braat D., Beerendonk I., van Golde R., Peek R. et al. Turner fertility trial: PROTOCOL for an observational cohort study to describe the efficacy of ovarian tissue cryopreservation for fertility preservation in females with Turner syndrome. BMJ Open. 2019; 9(12): e030855. https://dx.doi.org/10.1136/bmjopen-2019-030855.
  43. Dolmans M.M., Falcone T., Patrizio P. Importance of patient selection to analyze in vitro fertilization outcome with transplanted cryopreserved ovarian tissue. Fertil. Steril. 2020; 114(2):279-80. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.04.050.
  44. Poirot C., Brugieres L., Yakouben K., Prades-Borio M., Marzouk F., de Lambert G. et al. Ovarian tissue cryopreservation for fertility preservation in 418 girls and adolescents up to 15 years of age facing highly gonadotoxic treatment. Twenty years of experience at a single center. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2019; 98(5): 630-7. https://dx.doi.org/10.1111/aogs.13616.
  45. Corkum K.S., Rhee D.S., Wafford Q.E., Demeestere I., Dasgupta R., Baertschiger R. et al. Fertility and hormone preservation and restoration for female children and adolescents receiving gonadotoxic cancer treatments: a systematic review. J. Pediatr. Surg. 2019; 54(11): 2200-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.jpedsurg.2018.12.021.
  46. Gellert S.E., Pors S.E., Kristensen S.G., Bay-Bjørn A.M., Ernst E., Yding Andersen C. Transplantation of frozen-thawed ovarian tissue: an update on worldwide activity published in peer-reviewed papers and on the Danish cohort. J. Assist. Reprod. Genet. 2018; 35(4): 561-70. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-018-1144-2.
  47. Demeestere I., Simon P., Dedeken L., Moffa F., Tsepelidis S., Brachet C. et al. Live birth after autograft of ovarian tissue cryopreserved during childhood. Hum. Reprod. 2015; 30(9): 2107-9. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dev128.
  48. База данных клинических исследований, финансируемых из частных и государственных источников по всему миру, ClinicalTrials.gov.
  49. База данных клинических исследований, финансируемых из частных и государственных источников по всему миру, ClinicalTrials.gov.
  50. База данных клинических исследований, финансируемых из частных и государственных источников по всему миру, ClinicalTrials.gov.

Поступила 21.03.2022

Принята в печать 28.03.2021

Об авторах / Для корреспонденции

Уварова Елена Витальевна, чл.-корр. РАН, д.м.н., профессор кафедры акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии Института профессионального образования, Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет); заведующая 2-м гинекологическим отделением,
НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова, президент Межрегиональной общественной организации «Объединение детских и подростковых гинекологов», elena-uvarova@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0002-3105-5640, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Турчинец Анна Ильинична, ординатор кафедры акушерства и гинекологии педиатрического факультета, РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России,
+7(926)522-87-39, Ponomarevaanna28@gmail.com, https://orcid.org/0000-0002-4478-9133, 117997, Москва, Россия, ул. Островитянова, д. 1.
Кумыкова Заира Хасановна, к.м.н., с.н.с. 2-го гинекологического отделения (гинекологии детского и юношеского возраста), НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова
Минздрава России, zai-kumykova@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0001-7511-1432, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Пивоварова Оксана Юрьевна, к.м.н., доцент кафедры акушерства и гинекологии педиатрического факультета, РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России,
pou@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-8957-3248, 117997, Москва, Россия, ул. Островитянова, д. 1.
Автор, ответственный за переписку: Анна Ильинична Турчинец, Ponomarevaanna28@gmail.com

Вклад авторов: Уварова Е.В., Турчинец А.И. – концепция и дизайн исследования, анализ данных; Пивоварова О.Ю., Турчинец А.И. – сбор и обработка материала; Кумыкова З.Х., Турчинец А.И. – написание текста; Уварова Е.В., Кумыкова З.Х., Пивоварова О.Ю. – редактирование.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование: Работа выполнена без дополнительного финансирования.
Для цитирования: Уварова Е.В., Турчинец А.И., Кумыкова З.Х., Пивоварова О.Ю.
Оценка овариального резерва у детей и подростков с синдромом Тернера.
Акушерство и гинекология. 2022; 6: 40-49
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.6.40-49

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.