Морфологические особенности и экспрессия TLR4 и CD117 при хроническом цистите и резистентном гиперактивном мочевом пузыре у женщин

Демура Т.А., Тетерина Т.А., Аполихина И.А., Коган Е.А., Ефремов Г.Д., Глыбочко П.В., Сухих Г.Т.

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, Москва; ГБОУ ВПО Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова, Россия; ФГБУ НИИ урологии Минздрава России, Москва
Цель. Сравнить клинико-морфологические и иммуногистохимические особенности резистентного гиперактивного мочевого пузыря (ГМП) и хронического цистита у женщин репродуктивного возраста и в перименопаузе. Материал и методы. Исследовано 16 биоптатов стенки мочевого пузыря, полученных от женщин с подтвержденным клинически хроническим циститом в ходе стандартной цистоскопии с биопсией стенки мочевого пузыря и 14 – с ГМП. Средний возраст пациентов составил 40,6±10,4 года. В группе больных с ГМП средний возраст составил 38,0±5,4 года, с хроническим циститом – 41,8±2,3 года. Проведено морфологическое исследование биоптатов, изучение иммуногистохимических маркеров (CD177 и TLR4). Результаты. Обнаружено, что в группе с клиническим подтвержденным хроническим циститом биоптаты, как правило, представлены поверхностными слоями слизистой мочевого пузыря, покрытой многослойным плоским эпителием (МПЭ), с признаками атрофии, в подлежащей строме – диффузная лимфоплазмоцитарная инфильтрация, склероз, гиалиноз стенок сосудов, полнокровие и атрофия мышечных волокон. В группе с ГМП наблюдалась отличная гистологическая картина – слизистая мочевого пузыря покрыта многорядным эпителием (МРЭ) или МПЭ с гиперкератозом, в подслизистом слое – отек, склероз, тонкостенные сосуды, очаговая воспалительная инфильтрация, а также отмечалась очаговая гипертрофия мышечных волокон. Исследование выявило значимые различия в выраженности некоторых морфологических параметров: атрофия эпителия и атрофия мышечного слоя были более выражены у больных хроническим циститом (р<0,001), отек стромы (р<0,04) и гипертрофия мышечного слоя (р<0,001) – в группе ГМП. При оценке иммуногистохимической экспрессии TLR4 маркер выявлялся в виде коричневого окрашивания цитоплазмы эпителия, клеток воспалительного инфильтрата и в цитоплазме клеток эндотелия сосудов. При оценке экспрессии CD117 в воспалительном инфильтрате в строме, отмечено высокое накопление маркера в клетках в обеих группах, однако при ГМП отмечается тенденция к более высокой экспрессии маркера. Заключение. Подтверждена гипотеза о воспалительном генезе ГМП. Кроме того, при анализе иммуногистохимической экспрессии CD177 в клетках воспалительного инфильтрата стромы обнаружена высокая концентрация маркера в группе ГМП и хронического цистита. Это подтверждает теорию о том, что именно эти клетки за счет пейсмейкерной функции обеспечивают спонтанную миогенную активность окружающих их гладкомышечных клеток и приводят к их гипертрофии.

Ключевые слова

резистентный гиперактивный мочевой пузырь
хронический цистит
toll-like receptor 4
CD117
клетки Кахаля
пейсмейкер

В современном здравоохранении проблема нарушения акта мочеиспускания – одна из актуальных и социально значимых. Известно, что среди женщин в возрасте 20–40 лет в 25–30% случаев встречаются неосложненные инфекции мочевыводящих путей, причем в 85% острых и 60% хронических рецидивирующих циститов выявляется E. сoli [1]. Среди женщин, впервые перенесших острый цистит, у 24% рецидив происходит через 6 месяцев, а более чем у 50% – в течение 1 года [2]. В крупных популяционных исследованиях выявлена распространенность гиперактивного мочевого пузыря (ГМП), которая составила 15–20% среди женщин и около 6% среди взрослых девочек (15–20 лет) [3]; распространенность ГМП среди женской популяции США составила в 2003 г. более 20%.

Слизистая мочевого пузыря часто колонизируется уропатогенными микроорганизмами, такими как E. сoli, вирулентность которой обусловлена способностью связываться посредством фимбрий с гликосфинголипидами/гликопротеинами, находящимися на поверхности уроэпителиальных клеток слизистой. В исследованиях последних лет показано, что фимбрии играют двоякую роль во взаимодействии макроорганизма и E. coli: с одной стороны, они способствуют прикреплению и дальнейшей репликации бактерий, а с другой – образующиеся при адгезии с оболочкой уроэпителиальной клетки-комплексы запускают иммунный ответ посредством toll-like receptor 4 (TLR4) [4].

Рathogen-associated molecular patterns (PAMPs), продуцирующиеся при внедрении E. coli, являющейся причиной неосложненных инфекций мочевыводящих путей в 70–90% случаев, распознаются несколькими видами TLR, включая TLR 1, 2, 4, 5, 6 и 11 [5–7]. Известно, что в организме человека некоторые штаммы E. сoli могут размножаться, не вызывая воспалительную реакцию, вследствие чего развивается бессимптомная бактериурия (ББУ) [8]. Таким образом, низкий уровень экспрессии TLR4 на уроэпителиальных клетках ассоциирован с развитием пиелонефрита, рецидивирующего цистита и ББУ [9].

В некоторых исследованиях показано, что помимо уроэпителия, в распознавании липополисахаридов бактериальных клеток при ББУ активно участвуют также TLR4 клеток миелоидного происхождения, в частности, нейтрофилы. B. Ragnarsdottir и соавт. [10] и A. Smithson и соавт. [11] показали, что сниженный уровень экспрессии TLR4 и CXCR1 нейтрофилов коррелирует с развитием пиелонефрита, рецидивирующего цистита и ББУ у детей и женщин в пременопаузе.

Этиология и патогенез ГМП остаются не изученными. В последнее время накапливается все больше данных об инфекционном генезе рефрактерного ГМП, характеризующегося сохранением его симптомов после проведения пациенткой лечения более чем двумя М-холиноблокаторами с тренировкой мочевого пузыря в течение более чем 1 года [12]. Впервые в исследовании R.K. Khasriya и соавт. [13], а затем другими исследователями было выявлено, что внутриклеточная бактериальная колонизация может быть причиной ГМП. Рядом авторов при изучении биоптатов мочевого пузыря, взятых у пациентов с ГМП, были также выявлены признаки воспаления. Следовательно, у части больных с симптомами резистентного ГМП воспалительные изменения детрузора при отсутствии инфекции мочевого тракта могут являться патогенетическим звеном развития данного заболевания.

В последнее время в литературе появились данные о существовании в мочевых путях популяции клеток, способных к спонтанным колебаниям мембранного потенциала, а именно особых интерстициальных клеток (ИК), имеющих нейрогенное происхождение и мигрирующих в процессе онтогенеза в висцеральные органы [14]. ИК несут нейрональный маркер – Kit-рецептор тирозинкиназы (CD117+) и маркер клеток мезенхимального происхождения виментин [14–16], что используется для идентификации этих клеток в тканях разных органов. Исследования последних лет показали, что ИК помимо желудочно-кишечного тракта обнаруживаются в мускулатуре многих органов – миокарде, фаллопиевых трубах, желчном пузыре, поджелудочной железе [14, 17], а также в органах мочеполовой системы – в почечной лоханке и мочеточнике, мочевом пузыре, уретре, предстательной железе, кавернозных телах полового члена. В связи с этим была выдвинута гипотеза, предполагающая, что именно эти клетки за счет пейсмейкерной функции обеспечивают спонтанную миогенную активность окружающих их гладкомышечных клеток [14, 18, 19]. Амплитуда их ритмических сокращений ниже, чем амплитуда сокращений, инициирующих мочеиспускание, и составляет 5–12% [14]. До недавнего времени роль спонтанной ритмической активности практически не учитывалась, поскольку ее физиологическая функция была неясной, и новые данные позволили предположить, что спонтанная ритмическая активность мочевого пузыря является механизмом регуляции его тонуса и может участвовать в передаче информации в центральную нервную систему о степени наполненности мочевого пузыря [14, 20].

Результатом наличия многих пейсмейкерных зон в детрузоре и не координированности их активности являются низкоамплитудные сокращения отдельных групп гладкомышечных клеток, формирующие тонус детрузора, что проявляется в симптомах ГМП.

Целью нашей работы стало выявление морфологических особенностей и изучение экспрессии TLR4 и CD117 при резистентном ГМП и хроническом цистите у женщин репродуктивного возраста и в перименопаузе.

Материал и методы исследования

Исследование выполнено на биоптатах задней стенки мочевого пузыря и перешеечной области, взятых у женщин в ходе цистоуретроскопии с биопсией стенки мочевого пузыря в ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России совместно с ФГБУ НИИ урологии Минздрава России. Исследовано 30 биоптатов, из них 16 получены от пациенток с диагнозом хронический рецидивирующий цистит и 14 – от пациенток с резистентным ГМП (табл. 1).

Критериями отбора для исследования были: возраст пациенток от 18 до 55 лет; наличие симптомов ГМП: поллакиурия (мочеиспускание более 8 раз в день), ноктурия (более 1 мочеиспускания за ночь) в течение более 3 месяцев; наличие у пациентки как минимум 3 ургентных позывов к мочеиспусканию с недержанием мочи или без него (степень 3 или 4) в течение 3 дней по данным дневника мочеиспусканий; объем остаточной мочи не более 30 мл; диагноз ГМП, подтвержденный комбинированным уродинамическим исследованием; наличие в анамнезе неэффективного лечения М-холиноблокаторами (не менее 2 препаратов в течение не менее 3 месяцев); смешанный тип недержания мочи с преобладанием ургентного компонента; пациентки с хроническим рецидивирующим циститом (не менее 2 эпизодов обострения в 6 месяцев или 3 эпизода в год).

Средний возраст пациенток составил 40,6±10,4 года. В группе больных ГМП средний возраст составил 38,0±5,4 года, с хроническим циститом – 41,8±2,3 года. Отсутствие достоверных различий по возрасту (p=0,45) позволило провести корректное сравнение указанных морфологических характеристик.

1. Морфологические методы исследования

Материал фиксировали в 10% нейтральном формалине с фосфатным буфером, обрабатывали в аппарате гистологической проводки тканей фирмы «Pool Scientific Instruments» (Швейцария) и заливали в парафин. Суммарное время фиксации, проводки и заливки материала, как правило, не превышало 48 ч. Затем готовились серийные парафиновые срезы (не менее 12 серийных срезов) толщиной 4–5 микрон. Срезы фиксировали на предметные стекла, покрытые адгезивом (полилизин) и инкубировали в термостате при 37 оС в течение 12 ч. Далее срезы депарафинировали и обезвоживали в батарее из 3 ксилолов, 2 абсолютных спиртов, 2 95% спиртов, 80 и 70% спирта и дистиллированной воды. По стеклу от каждого случая окрашивали гематоксилин-эозином и толуидиновым синим (для выявления тучных клеток).

2. Иммуногистохимические методы исследования

Проводились на депарафинированных срезах толщиной 4–5 мкм, расположенных на стеклах, покрытых APES-слоем (A. Janice, 1983). Неокрашенные срезы от каждого случая обрабатывались с помощью стандартного метода иммуногистохимии. В качестве первичных антител использовались моноклональные и поликлональные антитела к CD117, с-kit (YR145) (Cell Marque, 1:100), toll-like receptor 4 (TLR4) (Abbiotec, 1:100).

Оценка интенсивности реакции для TLR4 проводилась по 6-балльной системе: 2 балла – до 20% окрашенных клеток; 4 балла – от 20 до 40% окрашенных клеток; 6 баллов – более 40% окрашенных клеток, а для CD117 – по проценту окрашенных клеток в 5 полях зрения на увеличении 40, что необходимо для более точной оценки экспрессии маркера.

Статистический анализ данных проводили с помощью программ Statistica 10.0 (StatSoft) и Sigma Stat 3.5 (Systat Sowtware Inc.). Вычисляли среднее и стандартную ошибку среднего, а также медианы и межквартильный размах. Межгрупповые сравнения проводили с помощью U-теста Манна–Уитни и критерия Пирсона. Проводили также корреляционный анализ по методу Спирмена. Различия считали статистически значимыми при достигнутом уровне значимости p≤0,05.

Результаты исследования

В ходе морфологического исследования полученных биоптатов были получены характерные патоморфологические особенности представленных нозологий: в группе с клинически подтвержденным циститом биоптаты, как правило, представлены поверхностными слоями слизистой мочевого пузыря, с плоскоклеточной метаплазией в виде многослойного плоского эпителия (МПЭ), с признаками атрофии, в подлежащей строме – диффузная лимфоплазмоцитарная инфильтрация, склероз, гиалиноз стенок сосудов, полнокровие и атрофия мышечных волокон (рис. 1 в, г см. на вклейке). В группе пациенток с ГМП наблюдалась отличная гистологическая картина – биоптаты чаще были представлены поверхностными слоями слизистой мочевого пузыря, покрытой с многорядным эпителием (МРЭ) или метаплазированным МПЭ с гиперкератозом, в подслизистом слое – отек, склероз, тонкостенные сосуды, очаговая воспалительная инфильтрация, а также отмечалась очаговая гипертрофия мышечных волокон (рис. 1 а, б).

Исследование выявило значимые различия в выраженности некоторых морфологических параметров. Так, атрофия эпителия и атрофия мышечного слоя были более выражены у больных хроническим циститом, отек стромы и гипертрофия мышечного слоя – в группе с ГМП (p<0,05).

Межгрупповые сравнения, проведенные с помощью критерия χ2, также выявили статистически значимые различия в частоте обнаружения атрофии эпителия и мышечного слоя при хроническом цистите, отека стромы и гипертрофии мышечного слоя при ГМП (p<0,05).

При оценке иммуногистохимической экспрессии TLR4 маркер выявлялся в виде коричневого окрашивания цитоплазмы эпителия, клеток воспалительного инфильтрата и в цитоплазме клеток эндотелия сосудов (рис. 2 а, б см. на вклейке). В связи с тем, что в группе с хроническим циститом при морфологическом исследовании биоптатов чаще выявлялась плоскоклеточная метаплазия с высокой экспрессией TLR4, а при ГМП – многорядный эпителий, также с высокой экспрессией рецептора, следует оценивать общую экспрессию маркера в эпителии в группах, которая значимо не различалась.

Клетки воспалительного инфильтрата также экспрессировали TLR4 (лимфоциты, макрофаги, лейкоциты и др.) в большом количестве в обеих группах, однако статистически значимых различий по группам не выявлено (рис. 3). Однако наличие экспрессии TLR4 в клетках эндотелия сосудов отмечено в основном в группе с хроническим циститом, что, возможно, отражает интенсивность воспалительной реакции в группе данных пациентов.

При иммуногистохимической оценке экспрессии CD117 было обнаружено коричневое окрашивание цитоплазмы клеток стромы и воспалительного инфильтрата (рис. 2 в, г см. на вклейке). Следует отдельно отметить, что толуидиновым синим CD117 положительные клетки не окрашивались, что позволило нам дифференцировать пейсмейкерные и тучные клетки.

При оценке экспрессии CD117 в воспалительном инфильтрате в строме отмечено высокое накопление маркера в клетках в обеих группах, однако при ГМП отмечается тенденция к более высокой экспрессии маркера, особенно в клетках стромы, что, вероятно, является следствием наличия большего количества клеток с пейсмейкерной активностью в стенке мочевого пузыря при данной патологии (рис. 4). Таким образом, нами выявлены морфологические особенности ГМП в виде гипертрофии гладкомышечных клеток и, напротив, атрофия при хроническом цистите и иммуногистохимические особенности – более высокая экспрессии CD117 при ГМП.

Корреляционный анализ объединенных данных обеих групп позволил выявить общие для них характеристики протекания патологических процессов. Интересно, что интенсивность экспрессии TLR4 в эндотелии обнаруживает положительную корреляцию средней силы с атрофией мышц (r=0,812) и отрицательную – с гипертрофией мышц (r=– 0,812).

Интенсивность экспрессии TLR4 в многорядном эпителии в группе пациенток с хроническим циститом не обнаруживала статистически значимой корреляции с атрофией мышц, а с гипертрофией мышц корреляция была положительной (r=0,828).

Обсуждение

В проведенном нами исследовании продемонстрировано, что, несмотря на похожую симптоматику при хроническом цистите и ГМП: учащенное мочеиспускание (более 8 раз в день и более 2 раз за ночь), ургентные позывы к мочеиспусканию, малые или средние объемы мочи при мочеиспускании, дискомфорт во время акта мочеиспускания и др., гистологическая картина отличается. Так, многорядный эпителий наиболее часто встречался в биоптатах стенки мочевого пузыря, полученных от пациенток с подтвержденным ГМП, в то время как плоскоклеточная метаплазия более характерна для хронического цистита; атрофия эпителия и атрофия мышечного слоя были более выражены у больных хроническим циститом, отек стромы и гипертрофия мышечного слоя – в группе ГМП. Тем не менее, в обеих группах отмечались характерные признаки воспалительного процесса: выраженная лимфоплазмоцитарная инфильтрация стромы, гиалиноз и полнокровие сосудов, отек стромы и склероз.

При иммуногистохимической оценке степени экспрессии TLR4 в слизистой мочевого пузыря значимых отличий между группами не выявлено, что, вероятно, связано с наличием общего патологического процесса в тканях – воспаления. Так как TLR4 обеспечивают врожденный иммунитет путем распознавания химических структур, синтезируемых микроорганизмами, а также эндогенных лигандов, образующихся при повреждении собственных тканей организма [20], они являются первыми сигнальными молекулами, распознающими лиганды микроорганизмов и координирующими иммунный ответ слизистой оболочки женского урогенитального тракта [21]. Связывание TLR4 c лигандом приводит к выработке цитокинов и антимикробных пептидов, что опосредуется внутриклеточной передачей сигнала двумя возможными путями. Первый путь связан с включением адаптерного белка MyD88 (белок первичного ответа миелоидной дифференцировки 88), который активирует ядерный транскрипционный фактор NF-kB, инициирующий в ядре транскрипцию генов провоспалительных цитокинов и антимикробных пептидов. Кроме того, TLR 4 способны запускать иммунный ответ по MyD88-независимому пути. Он осуществляется посредством адаптерного белка, индуцирующего интерферон-1β (Toll/ИЛ-1 domain containing adaptor inducing interferon-1β, TRIF), что приводит к фосфорилированию интерферон-регулирующего фактора-3 (IRF-3) [22]. Альтернативный путь стимулирует выработку интерферонов I типа и активацию интерферон-индуцируемых генов [23, 24].

Таким образом, мы пришли к выводу о схожести этиопатогенетического характера обоих заболеваний, в основе которого, очевидно, лежит воспалительный процесс различной степени выраженности, чем объясняется наличие экспрессии TLR4 в клетках эндотелия сосудов в группе с хроническим циститом, что, возможно, отражает большую интенсивность воспалительной реакции в группе данных пациентов.

Кроме того, при анализе иммуногистохимической экспрессии CD117 в клетках воспалительного инфильтрата стромы обнаружена высокая концентрация маркера в группе ГМП и хронического цистита, что подтверждает теорию о том, что именно эти клетки за счет пейсмейкерной функции обеспечивают спонтанную миогенную активность окружающих их гладкомышечных клеток, приводящую к их гипертрофии. Помимо этого, данный факт объясняет и отличия в клинической картине: например, при хроническом цистите ургентные позывы и поллакиурия чаще отмечаются при обострении заболевания, в то время как при ГМП данная симптоматика носит относительно стойкий постоянный характер. Эти отличия, по-видимому, связаны с наличием большего количества клеток с пейсмейкерной активностью при ГМП ввиду обнаруженной нами более выраженной тенденции к высокой экспрессии CD117, чем при хроническом цистите. Очевидно, данные клетки при хроническом цистите вне обострения неактивны, что косвенно подтверждается при гистологическом исследовании выявлением атрофии мышечных клеток.

Заключение

Гипертрофия мышечных клеток и высокая концентрация CD117+ клеток в слизистой стенки мочевого пузыря при ГМП, возможно, являются следствием гиперактивности пейсмейкерных клеток, которая возникла в результате воспаления в слизистой, что подтверждается также высокой экспрессией TLR4.

При хроническом цистите отмечается атрофия мышечных клеток в стенке мочевого пузыря и более выраженный склероз, что является следствием длительно протекающего хронического воспалительного процесса.

Полученные данные подтверждают гипотезу о воспалительном генезе ГМП, что может быть использовано для оптимизации тактики лечения таких пациенток.

Однако данное исследование проведено на малом количестве материала и носит пилотный характер, поэтому необходимо проведение дальнейших научно-исследовательских работ в этом направлении.

Список литературы

  1. Sivick K.E., Mobley H.L. Waging war against uropathogenic Escherichia coli: winning back the urinary tract (minireview). Infect. Immun. 2010; 78(2): 568–85.
  2. Haylen B.T., de Ridder D., Freeman R.M., Swift S.E., Berghmans B., Lee J. et al. An International Urogynecological Association (IUGA)/ International Continence Society (ICS) joint report on the terminology for female pelvic floor dysfunction. Neurourol. Urodyn. 2010; 29(1): 4–20.
  3. Irwin D.E., Milsom I., Hunskaar S., Reilly K., Kopp Z., Herschorn S. еt al. Population – based survey of urinary incontinence, overactive bladder and other lower urinary tract symptoms in five countries: results of EPIC study. Eur. Urol. 2006; 50(6): 1306–14; discussion 1314–5.
  4. Аполихина И.А., Глыбочко П.В., Тетерина Т.А. Генетическая предрасположенность к развитию неосложненных инфекций мочевыводящих путей и рефрактерного гиперактивного мочевого пузыря у женщин. Экспериментальная и клиническая урология. 2012; 4: 14–21.
  5. Beutler B., Jiang Z., Georgel P., Crozat K., Croker B., Rutschmann S. et al. Genetic analysis of host resistance: Toll-like receptor signaling and immunity at large. Annu. Rev. Immunol. 2006; 24: 353–89.
  6. Akira S., Uematsu S., Takeuchi O. Pathogen recognition and innate immunity. 2006; 124: 783–801.
  7. Medzhitov R. Recognition of microorganisms and activation of the immune response. Nature. 2007; 449: 819–26.
  8. Fischer H., Yamamoto M., Hoebe K., Akira S., Beutler B., Svanborg C. Mechanism of pathogen specific TLR4 activation in the mucosa: fimbriae, recognition receptors and adaptor protein selection. Eur. J. Immunol. 2006; 36(2): 267–77.
  9. Karoly E., Fekete A., Banki N.F., Szebeni B., Vannay A., Szabo A.J. et al. Heat shock protein 72 (HSPA1B) gene polymorphism and Toll-like receptor (TLR) 4 mutation are associated with increased risk of urinary tract infection in children. Pediatr. Res. 2007; 61(3): 371–4.
  10. Ragnarsdóttir B., Samuelsson M., Gustafsson M.C., Leijonhufvud I., Karpman D., Svanborg C. Reduced toll-like receptor 4 expression in children with asymptomatic bacteriuria. J. Infect. Dis. 2007; 196(3): 475–84.
  11. Smithson A., Sarrias M.R., Barcelo J., Suarez B., Horcajada J.P., Soto S.M. et al. Expression of interleukin–8 receptors (CXCR1 and CXCR2) in premenopausal women with reccurent urinary tract infections. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2005; 12(12): 1358–63.
  12. Alışkan H.E., Colakoğlu S., Turunç T., Demiroğlu Y.Z. Evaluation of the ChromID ESBL agar for the detection of ESBL – positive Enterobacteriaceae and vancomycin-resistant enterococcus isolates from urine cultures. Mikrobiyol. Bul. 2012; 46(1): 17–25.
  13. Khasriya R.K., Ismail S., Wilson M., Malonee–Lee J. A new aethiology for OAB: intracellular bacterial colonization of urothelial cells. Int. J. Urogynecol. 2011; 22(Suppl.1): 141–2.
  14. Кирпатовский В.И., Фролова Е.В., Надточий О.Н. Спонтанная ритмическая активность органов мочеполовой системы: роль интерстициальных клеток, биологическая значимость, патофизиологические аспекты. Экспериментальная и клиническая урология. 2012; 2: 70–7.
  15. Bradling A.F., McCloskey K.D. Mechanisms of disease: specialized interstitial cells of the urinary tract – an assessment of current knowledge. Nat. Clin. Pract. Urol. 2005; 2(11): 546–54.
  16. Калигин М.С., Гумерова А.А., Титова М.А., Газизов И.М., Сметанникова Т.С., Андреева Д.И., Киясов А.П. Экспрессия рецептора фактора стволовых клеток (c-kit) в ходе развития внутренних органов человека. Морфологические ведомости. 2008; 1(1–2): 63–6.
  17. Данелян Л.Г., Гебхарт Р., Бунятян Г.К. Экспрессия кислого глиального белка фибриллярного белка в эндокарде, интерстициальных клетках сердца, подобных клеткам Кахаля, и периваскулярных структурах селезенки. Нейрохимия. 2008; 25(4): 327–30.
  18. Hashitani H., Fukuta H., Takano H., Klemm M., Suzuki H. Origin and propagation of spontaneous excitation in smooth muscle of guinea pig urinary bladder. J. Physiol. 2001; 530: 273–86.
  19. Sergeant G.P., Hollywood M.A., McCloskey K.D., McHale N.G., Thornbury K.D. Role of IP3 in modulation of spontaneous activity in pacemaker cells of rabbit urethra. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2001; 280(5): C1349–56.
  20. Lagou M., Drake M.J., Markerink-Van Ittersum M., De Vente J., Gillespie J.I. Interstitial cells and phase activity in the isolated mouse bladder. Br. J. Urol. Int. 2006; 98: 643–50.
  21. Nasu K., Narahara Н. Pattern recognition via toll-like receptor system in the human female reproductive tract. Mediators Inflamm. 2010; 2010: 976024.
  22. Akira S., Hoshinо K. Myeloid differentiation factor 88-dependent and independent pathways in toll-like receptor signaling. J. Infect. Dis. 2003; 187 (2): 356–63.
  23. Ахматова Н.К., Киселевский М.В. Врожденный иммунитет: противоопухолевый и противоинфекционный. М.: Практическая Медицина; 2008. 255 с.
  24. Лебедева О.П., Калуцкий П.В., Пахомов С.П., Чурносов М.И., Карпов П.А., Самборская Н.И. Толл-подобные рецепторы женского репродуктивного тракта и их лиганды. Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2012; 1: 19–26.

 

Об авторах / Для корреспонденции

Демура Татьяна Александровна, к.м.н., с.н.с. 1-го патологоанатомического отделения ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, доцент кафедры патологической анатомии им. А.И. Струкова ГБОУ ВПО ПМГМУ им. И.М. Сеченова. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. E-mail: uursula90@gmail.com
Тетерина Татьяна Александровна, аспирант ФГБУ НЦАГиП им. академика Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (985) 645-14-78. E-mail: palpebra@inbox.ru
Аполихина Инна Анатольевна, д.м.н., руководитель гинекологического отделения восстановительного лечения и дневного стационара ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, профессор кафедры акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии ФППОВ ГБОУ ВПО ПМГМУ им. И.М. Сеченова. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 735-10-55. E-mail: apolikhina@inbox.ru
Коган Евгения Алтаровна, д.м.н., руководитель 1-го патологоанатомического отделения ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, профессор кафедры патологической анатомии им. А.И. Струкова ГБОУ ВПО ПМГМУ им. И.М. Сеченова. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. E-mail: koganev@gmail.com
Ефремов Геннадий Дмитриевич, зав. лабораторией патологической анатомии ФГБУ НИИ урологии Минздрава России. Адрес: 105425, Россия, Москва, ул. 3-я Парковая, д. 51, стр. 4. Телефон: 8 (916) 496-17-46. E-mail: efremov.gen@yandex.ru
Глыбочко Петр Витальевич, профессор, д.м.н., ректор ГБОУ ВПО ПМГМУ им. И.М. Сеченова, член-корреспондент РАМН. Адрес: 119991, Россия, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2. Телефон: 8 (499) 248-05-53
Сухих Геннадий Тихонович, академик РАМН, д.м.н., профессор, заслуженный деятель науки Российской Федерации, директор ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздравa России, зав. кафедрой акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии ФППОВ ПМГМУ им. И.М. Сеченова. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-18-00. E-mail: g_sukhikh@oparina4.ru

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.