Клиническое значение исследования условно-патогенной флоры цервикального канала у молодых женщин с острыми воспалениями придатков матки

Кохреидзе Н.А., Кутушева Г.Ф., Пясецкая М.Ф.

Кафедра детской гинекологии и женской репродуктологии ГБОУ СПб ГПМУ Минздрава России; Городская детская клиническая больница № 5 им. Н.Ф. Филатова, Санкт-Петербург, Россия
Цель исследования. Определить клиническую значимость культурального исследования неспецифической бактериальной флоры цервикального канала у молодых женщин с острыми воспалительными заболеваниями придатков матки (ОВЗПМ).
Материал и методы. Ретроспективный анализ историй болезни 87 пациенток, средний возраст которых составил 16,2±0,9 года. Произведено сопоставление результатов бактериологического исследования отделяемого из цервикального канала и материала из маточных труб, полученного при лапароскопии, проведенной по клиническим показаниям. У всех больных лапароскопически подтвержден гнойный характер сальпингита. Наличие гнойного ОВЗПМ, осложненного формированием тубоовариального абсцесса (ТОА), имело место у 32 (36,8%) больных.
Результаты. Выявлено, что доля результатов без роста флоры из цервикального канала составила 4,6%, а из маточных труб – 78,2%. Структура выявленных микробных агентов цервикального канала была следующей: бактерии семейства Enterobacteriaceae и энтерококки (E. coli, Klebsiella spp., P. mirabilis, M. morganii, E. faecalis,) получены в 25 (27,2%) из 92 образцов. Флора, относящаяся к родам Staphylococcus (S. aureus, S. epidermidis, S. saprophyticus) и Streptococcus (S. agalactiae, α-гемолитический, β-гемолитический, негемолитический spp.) выделена почти в половине цервикальных образцов – 45 (48,9%) из 92. Рост микрофлоры рода Corynebacterium spp. выявлен в 9 (9,8%), Moraxella (Acinetobacter spp.) – в 3 (3,3%) случаях из 92. Структура результатов посева материала из маточных труб почти не отличалась от таковой для цервикальных образцов. Так, бактерии семейства Enterobacteriaceae и энтерококки выделены в 7 (33,3%) случаях из 21, Staphylococcus spp. и Streptococcus spp. – в 12 (57,1%). В одном случае получен рост A. baumanii (4,8%), P. aeruginosa выделен также в одном случае (4,8%). У больных, получавших антибактериальную терапию на амбулаторном этапе, в четыре раза чаще посевы отделяемого из маточных труб были стерильными. Не выявлено особенностей микрофлоры цервикального канала и маточных труб у пациенток с ТОА. Несмотря на сходство структуры выделенной условно-патогенной микрофлоры цервикального канала и маточных труб, доля совпадений результатов посевов цервикальных посевов и посевов из маточных труб составила лишь 26,3%.
Заключение. Бактериологическое исследование условно-патогенной флоры цервикального канала у молодых женщин с ОВЗПМ не является клинически значимым. Существенно бо́льшее значение имеет исследование характера микробной флоры отделяемого из маточных труб, результат которого может быть учтен при разработке индивидуальной программы антибактериальной терапии.

Ключевые слова

воспаление придатков матки
цервикальный канал
маточные трубы
микрофлора

В соответствии с приказом Минздрава России № 572н [1] от 12 ноября 2012 г., регламентирующим порядок и протокол ведения беременных и гинекологических больных на всех этапах оказания медицинской помощи, в рубрику А (обязательный минимум обследования) у больных с воспалительной патологией половых органов (код N70 по МКБ-10), помимо обследования на инфекции, передаваемые половым путем (ИППП), входит микробиологическое исследование отделяемого женских половых органов на аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы. «Отделяемым женских половых органов» могут быть влагалищные и цервикальные выделения, секрет полости матки, а также отделяемое из маточных труб. Наиболее доступным, а потому широко используемым в клинической практике является культуральное исследование материала из влагалища и цервикального канала. Изучение микробного пейзажа влагалища у беременных и женщин с клиническими проявлениями влагалищного дисбиоза проводится с целью определения терапевтической тактики [2] и является одним из главных направлений профилактики репродуктивных нарушений. Однако ведение женщин с острыми воспалительными заболеваниями придатков матки (ОВЗПМ) предполагает назначение антибактериальной терапии до получения бактериологических результатов [3–5]. Распространенность ОВЗПМ, подверженность этому заболеванию именно молодых женщин [5–7] делает актуальным определение достаточного, соответствующего надлежащему качеству медицинской помощи, но не избыточного объема обследования этой категории больных.

Цель исследования: сопоставить результаты культурального исследования условно-патогенной микрофлоры материала из цервикального канала и маточных труб и оценить клиническое значение исследования условно-патогенной флоры цервикального канала у молодых женщин с острыми гнойными воспалениями придатков матки.

Материал и методы исследования

Произведен ретроспективный анализ результатов бактериологического исследования на аэробные и факультативно-анаэробные микроорганизмы у 87 пациенток, госпитализированных в пе­­риод с 2004 по 2010 гг. в отделение гинекологии ДГКБ № 5 им. Н.Ф. Филатова Санкт-Петербурга с диагнозом «Острый сальпингоофорит». Лечебно-диагностическая лапароскопия предпринималась в соответствии с принятой в настоящее время тактикой, которой предусмотрено проведение санационной хирургической эндоскопической процедуры всем молодым нерожавшим женщинам с подозрением на гнойный характер ОВЗПМ [8–11].

Всем пациенткам при поступлении проведен клинико-лабораторный комплекс обследования, позволивший поставить клинический диагноз и определить тактику ведения, и включающий помимо выявления возбудителей ИППП, исследование на флору и чувствительность к антибиотикам материала из цервикального канала при поступлении и отделяемого из маточных труб во время санационной лапароскопии. Выявление N. gonorrhoeae и T. vaginalis проводилось микроскопией высушенных мазков из цервикального канала после окраски по Граму, а выделение С. trachomatis – методом полимеразной цепной реакции (ПЦР).

Микробиологические исследования материала из цервикального канала и материала из маточных труб проводили в отделе микробиологии лаборатории ДГКБ № 5 им. Н.Ф. Филатова в соответствии с действующим приказом об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений [12], и методическими указаниями по технике сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории [13]. Для определения чувствительности к антибиотикам применялся диско-диффузионный метод. При возникновении затруднений при использовании этого метода, чувствительность к антибиотикам исследовали методом серийных разведений на анализаторе «AutoSceptor» (Becton Dickinson, США) и «Vitek-Compact» (Bio-Merieux, Франция). При культуральном выделении из образца материала микроогранизмов разных видов, принимали во внимание те виды, рост которых отмечен как умеренный или обильный.

Для оценки межгрупповых различий применяли t-критерий Стьюдента, χ2-критерий Пирсона и точный метод Фишеpа. Статистически достоверными считали различия, для которых значение вероятности p не превышало 0,05.

Результаты исследования

Средний возраст включенных в исследование больных составил 16,2±0,9 года. Во всех случаях гнойный характер воспаления в маточных трубах у пациенток подтвержден лапароскопически. Гнойный сальпингоофорит, осложненный формированием тубоовариального абсцесса (ТОА), имел место у 32 (36,8%) больных из 87.

Клинический диагноз «цервицит» при поступлении был поставлен 21 (24%) больной. Цервикальный лейкоцитоз при микроскопии цервикального мазка ≥10 в поле зрения (увел. ×1000) имел место у 54 пациенток из 87 (62,1%). Инфекции, вызванные T. vaginalis, выявлены у 3 (3,4%) больных, N. gonorrhoeae – у одной (2,3%), С. trachomatis – у 28 пациенток (32,2%).

Бактериологические посевы из цервикального канала не дали роста у 4 больных из 87 (4,6%). У остальных 83 больных получены 92 позитивных результата посевов, при этом у 60 пациенток микроорганизм выявлен в монокультуре, а в 23 случаях выявлены ассоциации 2–4 видов микрофлоры (табл. 1). Качественный состав микробного пейзажа цервикального канала был следующим: бактерии семейства Enterobacteriaceae и энтерококки (E. coli, Klebsiella spp., P. mirabilis, M. morganii, E. faecalis) получены в 25 (27,2%) из 92 образцов. Флора, относящаяся к родам Staphylococcus (S. aureus, S. epidermidis, S. saprophyticus) и Streptococcus (S. agalactiae, α-гемолитический, β-ге­молитический, негемолитический spp.), выделена почти в половине цервикальных образцов – 45 (48,9%) из 92. Рост микрофлоры рода Corynebacterium spp. выявлен в 9 (9,8%), Acinetobacter spp. – в 3 (3,3%) случаях из 92.

Культуральное исследование отделяемого из маточных труб дало позитивный результат у 19 больных из 87 (21,8%) включенных в исследование, то есть доля негативных результатов посевов составила 78,2%. В материале одной пациентки была ассоциация 3 микроорганизмов, и таким образом был получен 21 позитивный образец. Структура результатов посева материала из маточных труб почти не отличалась от таковой для цервикальных образцов. Так, бактерии семейства Enterobacteriaceae и энтерококки выделены в 7 (33,3%) случаях из 21, Staphylococcus spp. и Streptococcus spp. – в 12 (57,1%). В одном случае получен рост A. baumanii (4,8%), P. aeruginosa выделен также в одном случае (4,8%).

Различий в результатах культуральных исследований материала из цервикального канала у больных с ТОА и без ТОА не выявлено.

Санирующие хирургические вмешательства в 1–2-е сутки предприняты почти у половины пациенток: у 50 (57,5%). На 3–5-е сутки оперированы 21 (24,1%), на 6–11-е сутки – 16 (18,3%) человек из 87. Показанием к отсроченным лапароскопическим вмешательствам была необходимость верификации диагноза и объективной оценки характера воспалительных изменений в придатках матки у пациенток с упорным болевым синдромом, у которых первоначально показания к диагностической и санационной лапароскопии не были поставлены.

Наиболее важной частью исследования было определение соответствия микрофлоры цервикального канала и маточных труб. Среди 19 больных с позитивными бактериальными посевами из маточных труб соответствие микробных агентов верхних и нижних отделов генитального тракта установлено лишь у 5 пациенток (26,3%) (табл. 2).

Следует отметить, что в 4 (80,0%) из пяти случаев совпадений микрофлоры цервикального канали и маточных труб имел место рост S. epidermidis (образцы № 2, 11, 14, 18) и в одном случае (20,0%) – K. pneumoniaе (образец № 7).

Для выявления возможных факторов, влияющих на результативность посевов отделяемого из маточных труб у обследованных больных, с учетом большой доли негативных результатов посевов, проведен сравнительный анализ групп больных с наличием (группа 1 – 19 пациенток) и отсутст­вием роста микрофлоры из маточных труб (группа 2 – 68 больных). Длительность дооперационного периода и, соответственно, продолжительность дооперационной терапии антибиотиками в стационаре в группах больных не различалась: в группе 1 – 3,2±2,5 дня, в группе 2 – 2,8±2,2 дней (t1-2=0,64; p>0,05). При изучении анамнестических данных установлено, что за врачебной помощью до госпитализации обращалась почти треть больных, а именно – 26 (29,9%) из 87 пациенток, из них к гинекологам – 14 больных, к педиатрам – 8, к хирургам – 3, к инфекционисту – 1. Этими специалистами на догоспитальном этапе была назначена антибактериальная терапия 15 (57,7%) больным из 26, в том числе 9 (64,2%) из 14 обратившихся к гинекологу, 5 (62,5%) из 8 обратившихся к педиатрам, 1 из 3 (33,3%) консультированных хирургом. Оказалось, что в группе 1 антибактериальную терапию на амбулаторном этапе получала только 1 (5,3%) больная из 19, а в группе 2 – 14 (20,5%) человек из 68. Статистический анализ не доказал достоверности этих различий (χ21-2=1,49; p=0,222; точный метод Фишера: p=0,174), однако невозможно игнорировать выявленную тенденцию.

Обсуждение

Цервикальный канал не является в норме стерильным локусом, в отличие от содержимого плевральной, брюшной, перикардиальной, суставной полостей [14, 15], поэтому само по себе наличие не гонококковых и не хламидийных бактериальных агентов в материале из этого отдела полового тракта не является признаком заболевания. Основными проблемами бактериологического исследования материала из половых путей женщин являются контаминация и получение негативных результатов. В значительной степени контаминация может быть предупреждена соблюдением правил забора материала. Получение негативных, то есть неинформативных для клинициста результатов посева – это более комплексная проблема. Например, в работе C.A. Parker [16] доля негативных результатов бактериальных посевов из цервикального канала у женщин с цервицитом достигала 58%. S. Lurie и соавт. [17]

сравнили в динамике результаты посевов из цервикального канала у женщин с воспалительными заболеваниями органов малого таза (ВЗОМТ) через двадцатилетний интервал: в 1988 и 2008 гг. в одном и том же стационаре. Было установлено отсутствие какой-либо динамики в доле получения негативных результатов этих посевов, которая равнялась 32%. В нашем исследовании число негативных результатов посевов материала из цервикального канала было невысоким (4,6%), в то же время доля негативных результатов материала из маточных труб составила 78,2%, то есть посев был информативен лишь у 21,8% пациенток. Возможную причину получения негативных результатов посевов авторы упомянутых исследований видели в том, что в ряде случаев присутствует флора, для роста которой не создано специфических условий [17–19], особенно это касается условий культивирования анаэробной флоры.

Интерес к микрофлоре влагалища как к «зеркалу» микрофлоры верхних отделов полового тракта в норме и патологии привел к проведению ряда исследований [14–20]. К настоящему времени получены данные о том, что нет причинно-следственной связи между бактериальным вагинозом и инфекциями верхних отделов половых путей [2, 21, 22]. Также показано, что отсутствует специфичность микробного пейзажа цервикального канала при цервиците и ОВЗПМ [6, 14, 16, 17].

Установлено, что доля совпадений результатов бактериологического исследования цервикального канала и полости матки у женщин с хроническим эндометритом, подтвержденным гистероскопически и гистологически, составила лишь 32% [18]. Опыт, накопленный в результате широкого использования лапароскопических методов диагностики и лечения ОВЗПМ, позволил выявить, что доля соответствия результатов цервикальных и трубных культур не превышает 50% [23]. Учитывая приведенные литературные данные, становится понятен результат нашего наблюдения, в котором доля видового совпадения микрофлоры материала из цервикального канала и материала из маточных труб у молодых женщин с гнойными ОВЗПМ составила лишь 26,3%. Столь явные различия в микрофлоре ниже- и вышележащих отделов генитального тракта при восходящих воспалительных процессах находят в различной способности микрооганизмов к выживанию в определенной микроэкологической нише, а также в том, что микробные агенты, в том числе представители сапрофитной микрофлоры, имеют разную степень устойчивости к проводимой или проведенной антибактериальной терапии [14, 17, 18]. Практическим подтверждением такого предположения, с одной стороны, может быть установленный нами факт четырехкратного возрастания доли негативных результатов посевов материала из маточных труб у пациенток, получавших антибактериальную терапию на догоспитальном этапе (20,5 против 5,3%), а с другой – преимущественный высев представителей сапрофитной флоры (80%) среди случаев совпадения результатов посевов из цервикального канала и маточных труб.

Американские и европейские стандарты по ведению женщин с ВЗОМТ не содержат рекомендаций по исследованию условно-патогеннной флоры цервикального канала у этой категории больных [4, 5].

Стандарты микробиологического обследования при ВЗОМТ, принятые в Великобритании, также не включают исследование не относящейся к ИППП цервикальной микрофлоры. Рекомендовано исследование аспирационного материала маточных труб, абсцессов, брюшной полости [15, 23] и при разработке или коррекции индивидуальной программы антибактериальной терапии у женщин с ВЗОМТ рекомендовано учитывать результаты посева материала только из очага воспаления.

Безусловно, нарушения на преаналитическом этапе микробиологической диагностики, связанные с забором и доставкой материала в лабораторию, которые трудно исключить в работе ургентного стационара, могли внести свой вклад в снижение информативности проводимых культуральных исследований. Но представленные литературные данные, отражающие результаты более фундаментальных работ, показали, что существуют и объективные предпосылки, ограничивающие информативность культуральных исследований условно-патогенной микрофлоры цервикального канала у молодых женщин с ОВЗПМ.

Выводы

  1. Доля неинформативных культуральных исследований условно-патогенной микрофлоры цервикального канала молодых женщин, подвергнутых санирующим лапароскопическим вмешательствам по поводу ОВЗПМ, составила 4,6%, при исследовании материала из маточных труб – 78,2%. Неинформативные результаты посевов из маточных труб в четыре раза чаще получены у больных, получавших антибактериальную терапию на амбулаторном этапе лечения.
  2. Совпадение результатов бактериальных посевов из цервикального канала и маточных труб у молодых женщин с гнойными ОВЗПМ имело место лишь в 26,3%.

Заключение

Таким образом, исследование условно-патогенной флоры цервикального канала у молодых женщин с ОВЗПМ не является клинически значимым, поскольку и ранее установлено, что отсутствует достоверная связь между характером микробной флоры влагалища, шейки матки и верхних отделов генитального тракта при ОВЗПМ [2, 6, 15, 17–19, 22, 23]. Тактика ведения молодых женщин с ОВЗПМ не может строиться на учете результатов культуральных исследований материала из цервикального канала. При наличии клинических показаний к проведению санационной лапароскопии существенно бо'льшее клиническое значение имеет исследование характера микробной флоры отделяемого из маточных труб, результат которого и следует учесть при разработке индивидуальной программы антибактериальной терапии.

Список литературы

  1. Приказ Министерства здравоохранения Российской Федерации 1 ноября 2012 г. № 572н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи по профилю «акушерство и гинекология (за исключением использования вспомогательных репродуктивных технологий)». Зарегистрирован в Минюсте РФ 2 апреля 2013 г. Регистрационный № 27960. Available at: http://www.rg.ru/2013/04/25/ginekologya-dok.html //
  2. Кира Е.Ф. Микрофлора влагалища и воспалительные заболевания органов малого таза. В кн.: Кира Е.Ф. Бактериальный вагиноз. М.: МИА; 2012: 306–19.
  3. Кулаков В.И., Манухин И.Б., Савельева Г.М., ред. Гинекология. Национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2011: 720–4.
  4. Ross J.D. United Kingdom national guidelines for the management of pelvic inflammatory disease. British Association for Sexual Health and HIV Clinical Effectiveness Group (BASHH). Available at: http://www.bashh.org/guidelines.asp
  5. Sexually transmitted diseases treatment guidelines inflammatory disease. MMWR Recomm. Rep. 2006; 55(RR-11): 56–60.
  6. Creatsas G., Deligeoroglou E. Microbial ecology of the lower genital tract in women with sexually transmitted diseases. J. Med. Microbiol. 2012; 61 (10): 1347–51.
  7. Уткин Е.В. Клиника, диагностика и терапия воспалительных заболеваний придатков матки неспецифической этиологии. Кемерово: ИПП «Кузбасс»; 2010. 168 с.
  8. Буянова С.Н., Щукина Н.А., Горшилин А.В. Репродуктивный прогноз у больных с гнойными воспалительными заболеваниями органов малого таза: проблемы и решения. Российский вестник акушера-гинеколога. 2009; 9(2): 65–8.
  9. Краснопольский В.И., Буянова С.Н., Щукина Н.А. Гнойная гинекология. 2-е изд. М.: МЕДпресс-информ; 2006. 304 с.
  10. Штыров С.В. Лапароскопия при неотложных состояниях в гинекологии : Автореф. дис. … д-ра мед. наук. М.; 2005. 46 с.
  11. Краснопольский В.И., Буянова С.Н., Щукина Н.А., Попов А.А. Оперативная гинекология. 2-е изд. М.: МЕДпресс-информ; 2013: 229–40.
  12. Приказ министерства здравоохранения СССР от 22 апреля 1985 г. № 535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений». Available at: http://www.clinlabs.ru/document/prikaz-mz-sssr-ot-22041985-g-no-535-ob-unifikacii-mikrobiologicheskih-bakteriologicheskih //
  13. МУ 4.2.2039-05. Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории: Методические указания. Available at: http://bondaroksana.ucoz.ru/_ld/0/93__files_pdf_MY20.pdf //
  14. Bartlett J.G., Moon N.E., Goldstein P.R., Goren B., Onderdonk A.B., Polk B.F. Cervical and vaginal bacterial flora: ecologic niches in the female lower genital tract. Am. J. Obstet. Gynecol. 1978; 130(6): 658–61.
  15. UK Standards for Microbiology Investigations. Investigation of genital tract and associated specimens. Available at: http://www.hpa.org.uk/webc/HPAwebFile/HPAweb_C/1317132861109
  16. Parker C.A., Topinka M.A. The incidence of positive cultures in women suspected of having PID/Salpingitis. Acad. Emerg. Med. 2000; 7(10): 1170.
  17. Lurie S., Asaala H., Harari O.S., Golan A., Sadan O. Uterine сervical non-gonococcal and non-chlamydial bacterial flora and its antibiotic sensitivity in women with pelvic inflammatory disease: did it vary over 20 years? Isr. Мed. Assoc. J. 2010; 12(12): 747–50.
  18. Cicinelli E., De Zieger D., Nicoletti R.N., Colafiglio G., Saliani N., Resta L. et al. Chronic endometritis: correlation among hysteroscopic, histologic and bacteriologic findings in a prospective trial with 2190 consecutive office hysteriscopies. Fertil. Steril. 2008; 89(3): 677–84.
  19. Chow A.W., Malkasian K.L., Marshall J.R., Guze L.B. The bacteriology of acute pelvic inflammatory disease. Am. J. Obstet. Gynecol. 1975; 122(7): 876-9.
  20. Faro S., Martens M., Maccato M., Hammill H., Pearlman M. Vaginal flora and pelvic inflammatory disease. Am. J. Obstet. Gynecol. 1993; 169(2, Pt2): 470–4.
  21. Ness R.B., Hiltier S.L., Kip K.E., Soper D.E., Stamm C.A., McGregor J.A. et al. Bacterial vaginosis and risk of pelvic inflammatory disease. Obstet. Gynecol. 2004; 104(4): 761–9.
  22. Taylor-Robinson D. Investigating the microbial aetiology of pelvic inflammatory disease. Sex. Transm. Infect. 2003; 79(5): 424–9.
  23. Eckert L.O., Lentz G.M. Infections of the lower and upper genital tracts. Vulva, vagina, cervix, toxic shock syndrome, endometritis and salpingitis. In: Lentz G.M., Lobo R.A., Gershenson D.M., Katz V.L., eds. Comprehensive gynecology. 6th ed. Philadelphia: Mosby Elsevier; 2013: 519–59.

 

Об авторах / Для корреспонденции

Кохреидзе Надежда Анатольевна, к.м.н., доцент кафедры детской гинекологии и женской репродуктологии ФП и ДПО ГБОУ ВПО СПБ ГПМУ. Адрес: 197110, Россия, Санкт-Петербург, ул. Петрозаводская, д. 13, кв. 172. Телефон: 8 (911) 813-58-11. E-mail: kokhreidze@mail.ru
Кутушева Галия Феттяховна, д.м.н., профессор, зав. кафедрой детской гинекологии и женской репродуктологии ФП и ДПО ГБОУ ВПО СПБ ГПМУ. Адрес: 194100, Россия, Санкт-Петербург, ул. Литовская, д. 2. Телефон: 8 (812) 295-22-92. E-mail: galiya@chadogyn.ru
Пясецкая Мария Федоровна, врач-бактериолог высшей категории КДЛ ДГКБ № 5 им. Н.Ф. Филатова. Адрес: 192289, Россия, Санкт-Петербург, ул. Бухаресткая, д. 134. E-mail: mariamber62@mail.ru

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.