Fetal growth restriction and markers for mitochondrial dysfunction

Vishnyakova P.A., Sukhanova Yu.A., Mikaelyan A.G., Bulatova Yu.S., Pyataeva S.V., Balashov I.S., Borovikov P.I., Tetruashvili N.K., Vyssokikh M.Yu.

National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia, Moscow 117997, Ac. Oparina str. 4, Russia
Objective. To comparatively analyze the content of mitochondrial components in the placenta and whole blood of women with physiological and fetal growth restriction-complicated pregnancy.
Subjects and methods. Examinations were made in 32 women (10 patients with physiological pregnancy and 12 patients with diagnosed fetal growth restriction) starting at 24 weeks’ gestation. The levels of OPA1, DRP1, VDAC1, TFAM, and hOGG1 proteins were estimated using chemiluminescence western blotting. The blood levels of mitochondrial DNA copy number were determined by real-time PCR.
Results. There was an increased hOGG1 protein content without changes in the levels of mitochondrial fusion and fragmentation factors in the placental tissue of the examined groups. There was a significant reduction in mitochondrial DNA abundance at 25, 29, and 37 weeks’ gestation in the blood of patients with fetal growth restriction compared to the similar weeks of physiological pregnancy.
Conclusion. There are pronounced manifestations of oxidative stress in fetal growth restriction-complicated pregnancy. The reduction in the maternal blood mitochondrial DNA abundance in fetal growth restriction may be suggestive of obvious mitochondrial dysfunction in the placenta and be used as a prognostic marker for this pathology.

Keywords

pregnancy
fetal growth restriction
placental insufficiency
mitochondrial fusion and fragmentation
mitochondrial DNA

Синдром задержки роста плода (СЗРП) – патологическое состояние, связанное с отставанием размеров плода от предполагаемых для данного срока гестации и массой плода при рождении ниже десятого процентиля для данного срока беременности. СЗРП может приводить к целому спектру перинатальных осложнений, включая внутриутробную асфиксию и гибель плода. Около 60% неонатальных смертей, которые происходят во всем мире каждый год, связаны с низким весом при рождении [1, 2]. Задержка роста плода происходит в результате недостаточного поступления кислорода и нутриентов, в том числе по причине изменений сосудов фето-плацентарного комплекса. Известно, что у пациенток с последующим развитием СЗРП уже в первом триместре беременности происходит нарушение инвазии трофобласта, вследствие чего развиваются гемодинамические нарушения маточно-плацентарного кровотока, приводящее к хронической гипоксии [3]. Патологические изменения кровотока в спиральных артериях и межворсинчатом пространстве приводит к снижению интенсивности газообмена между матерью и плодом. Эндогенная антиоксидантная система при критических уровнях гипоксии оказывается несостоятельной, что приводит к развитию выраженного окислительного стресса [4–6].

Окислительный стресс является закономерным явлением во время беременности, как при нормальном ее течении, так и при патологии [4]. Физиологическая беременность сопровождается увеличением метаболической активности организма и потребности тканей в кислороде, что приводит к окислительному стрессу как следствию интенсификации работы митохондриального аппарата и усиленного клеточного дыхания [7]. Параллельно с этим происходит компенсаторное повышение активности антиоксидантной системы. Митохондриальные дисфункции различного генеза приводят к неконтролируемому окислительному стрессу на клеточном и тканевом уровнях и к развитию осложнений беременности, в том числе и СЗРП [4, 8].

Митохондрии являются основными источниками активных форм кислорода (АФК) в клетке, при этом сами наиболее подвержены их разрушительному влиянию: окислению липидов, белков, нуклеиновых кислот [7]. Во время беременности повреждение клеток свободными радикалами не только приводит к разрушению мембран и нарушениям структуры клеток и тканей, но и способно запускать реакции запрограммированной гибели клеток – апоптоз. При манифестации массовой гибели клеток синцитиотрофобласта в системный кровоток матери, помимо мембранных фрагментов, в значительном количестве попадают компоненты внутриклеточных органелл, в том числе митохондриальная ДНК (мтДНК). В связи с этим определение количества копий мтДНК в крови матери представляет большой интерес в качестве возможного маркера развития осложнений гестации.

Известно, что процессы митохондриального биогенеза и селекции дефектных митохондрий тесно взаимосвязаны и регулируются как внешними, так и внутренними факторами. Поврежденные митохондрии селективно удаляются из клетки путем митофагии. Баланс между скоростью биогенеза и митофагии определяет количество митохондрий в клетке, а следовательно, и ее метаболический статус.

Изучение митохондриального биогенеза, процессов митохондриального слияния и фрагментации, а также митофагии является важным этапом в понимании причинно-следственных связей гестационных осложнений при СЗРП и участия в них митохондрий.

В связи с вышесказанным целью исследования было оценить экспрессию основных маркеров слияния и фрагментации митохондрий в ткани плаценты, а также определить число копий мтДНК в крови женщин при физиологическом течении беременности и с диагностированным СЗРП.

Материал и методы исследования

На первом этапе в исследование были включены 27 женщин, родоразрешенных путем плановой операции кесарева сечения и была создана коллекция образцов ткани плаценты. Все пациентки были разделены на две группы: в основную группу вошли беременные женщины с диагностированным СЗРП; контрольную группу составили женщины с физиологическим течением беременности (ФБ) и неотягощенным акушерско-гинекологическим анамнезом. Все обследованные женщины подписали информированное согласие на участие в исследовании.

Для выполнения второго этапа была сформирована коллекция образцов цельной крови, полученной в разные сроки гестации у пациенток с диагностированным СЗРП и ФБ (контроль). В группе ФБ было проанализировано 10 женщин / 30 образцов крови, в группе СЗРП – 12 женщин / 33 образца крови.

Критериями включения в исследование являлись: возраст от 18 до 45 лет; одноплодная беременность с гестационным сроком от 24 до 40 недель, наступившая самопроизвольно; родоразрешение путем операции кесарева сечения. Критериями исключения являлись тяжелая экстрагенитальная патология, включая сахарный диабет, заболевания почек и сердечно-сосудистой системы, инфекционные заболевания.

В работе проводили общеклиническое и лабораторное обследование женщин. В качестве специальных методов исследования были использованы гель-электрофорез, Вестерн-блот анализ с детекцией хемилюминесценции и полимеразная цепная реакция в реальном времени (ПЦР-РВ). Оценивали содержание белков OPA, DRP, VDAC1, TFAM, hOGG1 и уровень экспрессии гена OPA1 в тканях плаценты. В образцах цельной крови был проведен количественный анализ копийности мтДНК методом ПЦР-РВ. Количество ПЦР-продукта целевого гена – участка D-петли мтДНК (mtDNA D-loop), нормировали на количество ПЦР-продукта ядерного гена – β2-микроглобулина.

Статистическую обработку полученных данных проводили с помощью программы GraphPad Prism. Выборки проверяли на нормальность распределения тестов Шапиро–Уилка. В случае нормально распределенных данных использовали параметрические методы оценки (ANOVA, t-тест Стьюдента), в обратном случае – непараметрические методы (критерий Краскела–Уоллиса, тест Манна–Уитни).

Результаты исследования

На первом этапе работы оценивали экспрессию основных факторов слияния (OPA1) и фрагментации (DRP1) митохондрий, а также структурно-функциональных белков VDAC1 и TFAM и белка системы репарации мтДНК (hOGG1) в образцах ткани плаценты. Клинические и демографические данные пациенток, вошедших в это исследование, представлены в таблице. В группе СЗРП наблюдали значимые различия с контролем по следующим параметрам: срок гестации (ФБ – 39,0±0,9 недель; СЗРП – 34,7±3,1 недель, * – р<0,05), масса тела новорожденного (ФБ – 3396,5±471,8 г; СЗРП – 1948,3±513,7 г, * – р<0,05) и длина тела новорожденного (ФБ – 51,2±2,3 см; СЗРП – 43,6±5,6 см, * – р<0,05).

ПЦР-анализ не выявил достоверных различий в уровне относительной экспрессии гена OPA1 в исследованных группах (рис. 1А). С этим результатом хорошо согласуются данные, полученные методом Вестерн-блот анализа – уровень обеих форм OPA1 (1-я полоса соответствует нерасщепленному белку, 2-я полоса – расщепленному белку; рис. 1Б) в группе с СЗРП также не изменялся по сравнению с ФБ (рис. 1В).

Анализ уровня белка DRP1 – важного фактора фрагментации митохондрий также не выявил статистически значимых различий между двумя группами (рис. 1Г). Таким образом, можно сделать вывод, что, по-видимому, при СЗРП в плаценте основные механизмы слияния и фрагментации митохондрий не затронуты.

Содержание структурно-функционального белка внешней мембраны митохондрий – VDAC1 и активатора транскрипции и репликации мтДНК – белка TFAM, статистически значимо не различалось между группами (рис. 2А, Б). При этом уровень белка hOGG1 – фермента, ответственного за удаление окисленного гуанина при повреждении мтДНК в группе СЗРП оказался значимо выше, чем при ФБ (р<0,05, рис. 2В), что свидетельствует об активации системы репарации мтДНК.

Повышение содержания белка hOGG1 диктует необходимость исследовать копийность мтДНК, являющуюся важным маркером митохондриального биогенеза. В связи с этим на втором этапе работы мы оценивали этот показатель в цельной крови женщин исследуемых групп ФБ и СЗРП.

Применение одностороннего дисперсионного анализа Крaскела–Уоллиса не выявило достоверного влияния срока гестации на количество копий мтДНК в группе ФБ (рис. 3А), тогда как в группе СЗРП данный фактор оказывал значимое (p=0,02) влияние на копийность мтДНК в крови. Применение пост-теста критерия Данна для последующего множественного сравнения показало значимое увеличение содержания мтДНК на 29-й, 33-й и 37-й неделе по сравнению с 25-й неделей гестации в группе женщин с СЗРП (рис. 3Б). Таким образом, можно заключить, что копийность мтДНК не изменяется по мере прогрессирования беременности у женщин с неотягощенным акушерско-гинекологическим анамнезом, в то время как у пациенток с СЗРП наблюдается увеличение количества копий мтДНК в крови, начиная с 29-й недели гестации с достижением максимума на сроке 33-й недели.

Попарный анализ групп на разных сроках гестации с помощью критерия Манна–Уитни выявил, что на разных сроках гестации копийность мтДНК была достоверно ниже в группе СЗРП по сравнению с контролем (25 недель p=0,01; 29 недель p=0,04; 37 недель p=0,01; рис. 4).

Заключение

Полученные данные свидетельствуют, что при СЗРП в плаценте не происходят изменения в содержании белков, отвечающих за слияние и фрагментацию митохондрий. Однако мы обнаружили значимое повышение экспрессии фермента системы репарации мтДНК – hOGG1 в группе СЗРП по сравнению с контролем. Повышение экспрессии hOGG1 в группе СЗРП указывает на развитие окислительного стресса, усиление репарации поврежденной мтДНК, копийность которой достигает своего максимума на 33-й неделе беременности в этой группе.

Уровень мтДНК положительно коррелирует с количеством и размером митохондрий [9] и регулируется эндогенными и экзогенными факторами, такими как гипоксемия и стероидные гормоны [10]. Определение относительного уровня копийности мтДНК служит классическим тестом для анализа содержания митохондрий. Как правило, мтДНК располагается вблизи внутренней мембраны митохондрии и, в отличие от ядерной, не защищена гистонами, поэтому постоянно подвергается воздействию свободных радикалов, образуемых дыхательной цепью митохондрий [11, 12]. Поэтому мтДНК особенно чувствительна к повреждениям, вызванным окислительным стрессом.

Копийность мтДНК рассматривается в литературе как новый маркер системной митохондриальной дисфункции, поскольку отражает количество и качество митохондрий. Ранее было показано, что в крови женщин увеличение копийности мтДНК положительно коррелировало с вероятностью отслойки плаценты [13]. В нашей работе было выявлено, что у женщин с диагнозом СЗРП количество мтДНК в крови ниже практически на всех сроках беременности по сравнению с женщинами с нормально протекающей беременностью в те же сроки. Это может свидетельствовать о наличии системной митохондриальной дисфункции у пациенток с СЗРП, которая может служить одной из причин возникновения плацентарной недостаточности. С другой стороны, также отмечается положительная динамика роста количества мтДНК в крови матерей с СЗРП после 25-й недели беременности, сохраняющаяся вплоть до родов, что может свидетельствовать о запуске адаптивного ответа организма.

Дальнейшие исследования в данной области позволят разработать подходы к ранней диагностике СЗРП и прогнозированию исходов беременности при плацентарной недостаточности на базе анализа уровня мтДНК в крови.

References

1. Romo A., Carceller R., Tobajas J. Intrauterine growth retardation (IUGR): epidemiology and etiology. Pediatr. Endocrinol. Rev. 2009; 6(Suppl. 3):332-6.

2. Lawn J.E., Cousens S., Zupan J.; Lancet Neonatal Survival Steering Team. 4 million neonatal deaths: When? Where? Why? Lancet. 2005; 365(9462):891-900.

3. Kaufmann P., Black S., Huppertz B. Endovascular trophoblast invasion: implications for the pathogenesis of intrauterine growth retardation and preeclampsia. Biol. Reprod. 2003; 69(1): 1-7.

4. Duhig K., Chappell L.C., Shennan A.H. Oxidative stress in pregnancy and reproduction. Obstet. Med. 2016; 9(3): 113-6.

5. Biri A., Bozkurt N., Turp A., Kavutcu M., Himmetoglu Ö., Durak I. Role of oxidative stress in intrauterine growth restriction. Gynecol. Obstet. Invest. 2007; 64(4): 187-92.

6. Karacay Ö., Sepici-Dincel A., Karcaaltincaba D., Sahin D., Yalvaç S., Akyol M. et al. A quantitative evaluation of total antioxidant status and oxidative stress markers in preeclampsia and gestational diabetic patients in 24-36 weeks of gestation. Diabetes Res. Clin. Pract. 2010;89(3): 231-8.

7. Korshunov S.S., Skulachev V.P., Starkov A.A. High protonic potential actuates a mechanism of production of reactive oxygen species in mitochondria. FEBS Lett. 1997; 416(1): 15-8.

8. Мартусевич А.К., Карузин К.А. Окислительный стресс и его роль в формировании дизадаптации и патологии. Биорадикалы и антиоксиданты. 2015; 2(2): 5-18.

9. Lee H.C., Wei Y.H. Mitochondrial biogenesis and mitochondrial DNA maintenance of mammalian cells under oxidative stress. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2005; 37(4): 822-34.

10. Shadel G.S. Expression and maintenance of mitochondrial DNA: new insights into human disease pathology. Am. J. Pathol. 2008;172(6): 1445-56.

11. Tan D., Goerlitz D.S., Dumitrescu R.G., Han D., Seillier-Moiseiwitsch F., Spernak S.M. et al. Associations between cigarette smoking and mitochondrial DNA abnormalities in buccal cells. Carcinogenesis. 2008; 29(6): 1170-7.

12. Holland O., Nitert M.D., Gallo L.A., Vejzovic M., Fisher J.J., Perkins A.V. Placental mitochondrial function and structure in gestational disorders. Placenta. 2017; 54: 2-9.

13. Williams M.A., Sanchez S.E., Ananth C.V., Hevner K., Qiu C., Enquobahrie D.A. Maternal blood mitochondrial DNA copy number and placental abruption risk : results from a preliminary study. Int. J. Mol. Epidemiol. Genet. 2013; 4(2): 120-7.

Received 06.04.2018

Accepted 20.04.2018

About the Authors

Polina A. Vishnyakova, PhD, Researcher, Laboratory of mitochondrial medicine, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named
after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str. 4. E-mail: p_vishnyakova@oparina4.ru
Iuliia A. Sukhanova, Researcher, Laboratory of mitochondrial medicine, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named
after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str. 4. E-mail: suhanova_julia@hotmail.com
Asmik G. Mikaelyan, Graduate student, Department of pregnancy loss prevention and therapy, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str. 4. Tel.: +74954381477. E-mail: mikaelyan_asmik@bk.ru
Yulia S. Bulatova, Graduate student, Department of pregnancy loss prevention and therapy, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str. 4. Tel.: +74954381477. E-mail: yu.bulatova@mail.ru
Sofia V. Pyataeva, PhD, Researcher, Laboratory of mitochondrial medicine, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str. 4. E-mail: biosonya@gmail.com
Ivan S. Balashov, Expert, the Bioinformatics research group, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named
after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str. 4. Tel.: +79104462005. E-mail: i_balashov@oparina4.ru
Pavel I. Borovikov, Head of the Bioinformatics research group, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named
after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str. 4. Tel.: +79191091264. E-mail: p_borovikov@oparina4.ru
Nana K. Tetruashvili, M.D., PhD, Head of the Department of pregnancy loss prevention and therapy, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str. 4. Tel.: +74954381477. E-mail: tetrauly@mail.ru
Mikhail Y. Vyssokikh, PhD, Head of the Mitochondrial medicine research group, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named
after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str. 4. Tel.: +74954387633. E-mail: m_vysokikh@oparina4.ru

For citations: Vishnyakova P.A., Sukhanova Yu.A., Mikaelyan A.G., Bulatova Yu.S., Pyataeva S.V., Balashov I.S., Borovikov P.I., Tetruashvili N.K., Vyssokikh M.Yu. Fetal growth restriction and markers for mitochondrial dysfunction. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2018; (6): 31-6. (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2018.6.31-36

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.