Quantification of plasma microRNA expression in pregnant women with preeclampsia

Prozorovskaya K.N., Faizullin L.Z., Karnaukhov V.N., Kan N.E., Tyutyunnik V.L., Ganichkina M.B., Sergunina O.A., Chausov A.A., Tyutyunnik N.V., Mantrova D.A., Trofimov D.Yu.

Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow 117997, Ac. Oparina str. 4, Russia
Objective. To study the expression of plasma microRNAs (has-mir-29b-3P, has-mir-34a-5p, has-mir-141-3p, and miR-376c) in preeclampsia (PE).
Material and methods. 36 pregnant women were examined, by analyzing their clinical characteristics and investigating the expression of plasma microRNA.
Results. There was a significant increase in the expression of three microRNAs: has-mir-29b-3p, has-mir-34a-5p, and has-mir-141-3p in the plasma of pregnant women with PE as compared to the control group. There were differences in the expression of miR-376c, but there was a high degree of variation in the expression level in the groups. The highest diagnostic accuracy (76.7%) was achieved with the simultaneous assessment of the expression level of the three microRNAs.
Conclusion. The changes in the expression level of the investigated microRNAs are closely correlated with the development of PE. The quantification of plasma microRNA expression in the period after 30 weeks allows for the identification of pregnant women with PE with high accuracy.

Keywords

preeclampsia
placenta
microRNA
impaired trophoblast invasion
apoptosis
angiogenesis

Одной из актуальных проблем современного акушерства остается преэклампсия (ПЭ), представляющая мультисистемное заболевание. В настоящее время принято выделять два основных варианта ПЭ в зависимости от ее течения: раннюю, ассоциированную с нарушением инвазии трофобласта, и позднюю, обусловленную нарушением иммунологической толерантности [1, 2]. Ключевыми процессами развития плаценты являются инвазия и миграция клеток трофобласта в эндометрий, клеточная пролиферация, апоптоз, и ангиогенез, обеспечивающий ремоделирование спиральных артерий [3–5]. Синхронная регуляция каждого из этих процессов ассоциирована с активизацией или выключением большого количества генов, расположенных в разных хромосомах. Важная роль во временной регуляции фукционирования генов принадлежит микроРНК [6]. МикроРНК – короткие одноцепочечные молекулы длиной 20–25 нуклеотидов, осуществляющие регуляцию экспрессии генов на посттранскрипционном уровне [7]. По данным базы данных miRBase у человека выявлено 2216 зрелых молекул микроРНК, контролирующих функциональную активность трети генов генома [8]. При использовании современной технологии полногеномного скрининга было показано, что в плаценте экспрессируются более 600 разных микроРНК, большая часть из которых синтезируются в клетках трофобласта [9]. Они участвуют практических во всех фундаментальных клеточных процессах развития плаценты от момента прикрепления бластоцисты и до ее отторжения при родах, включая адаптацию эмбриона к иммунной системе матери, миграцию, инвазию, клеточную пролиферацию, апоптоз, ангиогенез. Отклонение уровня экспрессии этих микроРНК от нормы ассоциируется с нарушениями плацентации, приводящими к различным осложнениям беременности [10–13].

К плацентарным микроРНК относятся также has-mir-29b-3р, has-mir-34a-5p, has-mir-141-3p и miR-376с-3p, экспрессия которых выявлялась в плазме и сыворотке крови беременных [9]. В ряде работ было показано, что содержание этих микроРНК может меняться при угрозе прерывания беременности, отслойке плаценты, задержке роста плода и ПЭ [11, 14, 15]. В связи с этим целью настоящей работы было исследование экспрессии has-mir-29b-3р, has-mir-34a-5p, has-mir-141-3p* и miR-376с-3p в плазме крови у беременных с ПЭ.

Материал и методы исследования

В исследование были включены 36 женщин, обследованных и родоразрешенных в ФГБУ НЦАГиП им. В.И. Кулакова Минздрава России. В зависимости от диагноза и разработанных критериев включения пациентки были разделены на две группы (случай-контроль). В I (основную) группу были включены 18 беременных с ПЭ, во II (контрольную) – 18 беременных без ПЭ.

Критерии включения: в I группу – наличие ПЭ, установленной по данным клинического обследования, результатам функциональных методов исследования; во II группу – отсутствие ПЭ по данным клинического обследования, результатам функциональных методов исследования.

Критерии исключения: тяжелая экстрагенитальная патология, многоплодная беременность, пороки развития плода.

Всем беременным, включенным в исследование, был выполнен стандартный набор обследований и произведен забор крови для реализации задач, поставленных в исследовании. Все беременные были ознакомлены с целью и методами исследования, дали письменное согласие на их участие в научном исследовании.

Возраст беременных, включенных в исследование, колебался от 19 до 46 лет и составил в среднем 30,6±7,8 и 28,9±4,5 года соответственно по группам. На основании изучения соматических и гинекологических заболеваний, были выявлены различия в частоте перенесенных инфекционных заболеваний в детстве: в I группе чаще встречались ОРВИ (38,9%, OR=5,1 (0,8–29,2)) и ангина (38,9%, OR=2,2 (0,5–9,6)), в то время как во II группе преобладали коклюш (16,7%) и пневмония (38,9%, OR=1,2 (0,3–1,2)). В структуре заболеваний ЛОР-органов у пациенток основной группы имел место хронический гайморит (16,7%, OR=1,6, (0,2–10,9)), у пациенток II группы – хронический тонзиллит (33,3%, OR=0,2, (0,4–1,6)). Среди заболеваний дыхательной системы у пациенток основной группы встречались в 22,2% хронический бронхит (11,1%) и бронхиальная астма (11,1%).

Заболевания мочевыделительной системы чаще встречались у пациенток контрольной группы, с преобладанием хронического пиелонефрита (50%, OR=1,6, (1,2–10,9)). При анализе заболеваний сердечно-сосудистой системы было выявлено достоверное увеличение частоты хронической артериальной гипертензии в основной группе (11,1%). При этом среднее артериальное давление в I и II группах составило 113±10,0/73±9,6 и 106±10,9/87±7,7 мм рт. ст. соответственно. При изучении структуры заболеваний эндокринной системы достоверных отличий получено не было.

Следует отметить более частое развитие осложнений течения беременности в основной группе в сравнении с контрольной.

Все пациентки были родоразрешены в доношенном сроке. В основной группе средний срок составил 38,9±0,8 недели беременности, в контрольной группе – 39,1±1 недели. При этом частота оперативного родоразрешения в основной группе была значительно выше, чем в контрольной – 77,8% (n=14) и 33,3% (n=6), OR=7 (2–31) соответственно.

Среди рожденных детей обращает на себя внимание более высокая оценка по шкале Апгар и больший вес при рождении во II группе.

Образцы периферической крови собирали в пробирки с ЭДТА и немедленно центрифугировали при 1600g в течение 10 минут. Надосадок отбирали и повторно откручивали при 13000g в течение 10 минут. Плазму расфасовывали по пробиркам по 500 мкл и помещали на хранение при -80° C. Суммарную РНК выделяли из 100 мкл плазмы с использованием набора реагентов miRNeasy Mini Kit (Qiagen GmbH, Hilden, Germany) в соответствии с инструкцией к нему. Реакцию обратной транскрипции проводили, используя коммерческие микроРНК-специфические праймеры и набор реактивов TaqMan microRNA Reverse Transcription Kit (Life Technologies, Grand Island, NY). Измерение уровня экспрессии микроРНК проводили методом количественной полимеразной цепной реакции в реальном времени с использованием коммерческих праймеров TaqMan miRNA Assay (Life Technologies, Grand Island, NY), набора реагентов TaqMan Universal PCR Master Mix (Life Technologies, Grand Island, NY) и детектирующего амплификатора ДТ-96 (компания ДНК-Технология, Россия). Количественное измерение микроРНК проводили в условных единицах путем оценки ∆Сt и нормализации по отношению к объему плазмы крови. В табл. 1 приведено описание микроРНК, исследовавшихся в данной работе.

Статистическую обработку результатов исследования экспрессии микроРНК проводили методом непараметрического анализа с использованием программы Statistica 10, IBM SPSS Statistics v22. Для сопоставления двух групп по количественным признакам применяли U-критерий Манна–Уитни. Различие между группами полагали статистически значимыми при р<0,05. Для выявления точки отсечки положительных результатов диагностического теста и определения его диагностической точности использовались бинарная логистическая регрессия и ROC-кривая.

Результаты исследования

Все пациентки, включенные в исследование, были сопоставимы по исходной клинико-анамнестической характеристике для снижения возможного влияния особенностей соматического или гинекологического статуса на профиль выделяемых микроРНК. Более высокая частота осложнений беременности в основной группе не имела статистической значимости в связи с небольшой выборкой. Вместе с тем, отсутствие вышеуказанных достоверных различий также нивелировало влияние других осложнений беременности на уровень изучаемых микроРНК, что позволяет говорить о взаимосвязи изменения уровней экспрессии с развитием ПЭ.

Было изучено содержание микроРНК в плазме периферической крови у беременных в норме и при ПЭ (табл. 2). Экспрессия трех микроРНК: has-mir-29b-3р, has-mir-34a-5p и has-mir-141-3p была значительно повышена в плазме крови беременных с ПЭ по сравнению с контрольной группой. В то же время не было выявлено различий в экспрессии miR-376с-3p, но отмечалась высокая степень разброса по уровню экспрессии в исследуемых группах.

Был проведен ROC-анализ и логистический регрессионный анализ результатов экспрессии микроРНК в плазме крови у исследуемых групп беременных (табл. 3). Анализ показал, что уровень экспрессии has-mir-141-3p выше 363 у.е. позволял диагностировать ПЭ с чувствительностью 80,0%, но с низкой специфичностью 66,6%. Наоборот, уровень экспрессии has-mir-34a-5p выше 923,4 у.е. позволяет диагностировать заболевание с высокой специфичностью (88,9%), но с низкой чувствительностью (61,1%). Максимальная диагностическая точность достигалась только при одновременной оценке уровня экспрессии трех микроРНК: has-mir-29b-3р, has-mir-34a-5p и has-mir-141-3p. Результирующий уровень экспрессии одновременно по трем микроРНК у каждого пациента оценивался по формуле: М=5,9А1+2А2+А3, где А1, А2 и А3 – значения уровня экспрессии has-mir-29b-3р, has-mir-34a-5p и has-mir-141-3p соответственно. ROC-анализ одновременно по трем микроРНК позволил диагностировать ПЭ с чувствительностью 73,3%, специфичностью 80% и диагностической точностью 76,7% при значении результирующего уровня экспрессии (М) более 2104,4 у.е.

Обсуждение

На сегодняшний день имеются убедительные данные, показывающие присутствие в плазме крови беременных внеклеточных плацентарных микроРНК. Показано, что их содержание может меняться при возникновении угрозы прерывания беременности, отслойке плаценты, задержке роста плода, ПЭ [11, 14, 15]. Циркулирующие в крови микроРНК упакованы в микровезикулы и обладают высокой стабильностью к факторам внешней среды, что делает их перспективной моделью в качестве диагностических маркеров для оценки состояния плаценты и характера течения беременности. Настоящая работа посвящена оценке эффективности диагностики ПЭ на основании данных измерения уровня экспрессии микроРНК has-mir-29b-3р, has-mir-34a-5p, has-mir-141-3p* и miR-376с в плазме периферической крови беременных.

Известно, что в клетках трофобласта has-mir-29b-3р индуцирует апоптоз путем прямого взаимодействия с мРНК гена MCL1 (myeloid cell leukemia-1), кодирующего анти-апоптотический белок, входящий в семейство Bcl-2 [16]. Кроме того, данная микроРНК ингибирует в плаценте процессы инвазии путем прямого взаимодействия с ММР2 (матриксная металлопротеиназа 2) и ангиогенеза взаимодействуя с VEGFA (сосудистый эндотелиальный фактор роста 1) и INGB1 (интегрин β1). Повышенный уровень свободной внеклеточной has-mir-29b-3р в плазме крови ассоциируется с различными осложнениями беременности, в том числе и с ПЭ [17]. Полученные в настоящей работе данные также показали повышенный уровень экспрессии has-mir-29b-3р в плазме крови беременных с ПЭ.

Повышенная экспрессия has-mir-34a-5p в плацентарных клетках ингибирует процессы пролиферации, инвазии и миграции путем прямого ингибирования трансляционной функции мРНК гена MYC, продуктом которого является многофункциональный фосфопротеин – транскрипционный регулятор комплекса генов, обеспечивающих пролиферативные и апоптотические процессы в клетке [18]. При ПЭ в плаценте уровень экспрессии has-mir-34a-5p повышен в 3–5 раз, однако данных о содержании ее в плазме крови на сегодняшний день отсутствуют [18, 19]. Исследования, проведенные в настоящей работе, показали повышенную по сравнению с нормой экспрессию has-mir-34a-5p в плазме крови беременных с ПЭ (р=0,035). Более того, из четырех изученных в работе микроРНК только для has-mir-34a-5p были получены значимые показатели логистической регрессии, а именно, что при уровне экспрессии выше 891,4 у.е. чувствительность диагностики составила 83%, специфичность – 61% и диагностическая точность – 72,2%.

Несмотря на то что has-mir-141-3p является одной из наиболее высоко экспрессирующихся в плаценте микроРНК, о ее роли при осложнениях беременности известно недостаточно. Показано, что при ПЭ значительно увеличивается содержание в плазме крови внеклеточной has-mir-141-3p [15]. Полученные в настоящей работе данные также показали более высокую экспрессию has-mir-141-3p в плазме крови беременных с ПЭ, по сравнению с контрольной группой.

MiR-376с играет важную роль в обеспечении пролиферации клеток трофобласта, миграции и инвазии. Было показано, что при ПЭ значительно снижается уровень экспрессии miR-376с как в плаценте, так и в плазме периферической крови [10]. Однако в настоящей работе не было выявлено различий в содержании этой микроРНК в плазме крови у женщин с физиологическим течением беременности и ПЭ.

Заключение

Таким образом, проведенное исследование показало, что экспрессия трех из четырех микроРНК значительно повышена в плазме крови беременных с ПЭ по сравнению с контрольной группой. Количественная оценка экспрессии только has-mir-34a-5p или суммированный показатель экспрессии по трем микроРНК – has-mir-29b-3р, has-mir-34a-5p и has-mir-141-3p в плазме крови в сроках после 30 недель позволяют с высокой диагностической точностью (72–76,7%) дифференцировать беременных с ПЭ и обосновывают перспективность их применения в акушерстве.

References

1. Khodzhaeva Z.S., Kogan E.A., Klimenchenko N.I., Akatyeva A.S., Kholin A.M., Vavina O.V., Sukhikh G.T. Clinical and pathogenetic features of early and late preeclampsia. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2015; (1): 12-17. (in Russian)

2. Khodzhaeva Z.S., Akatyeva A.S., Kholin A.M., Safonova A.D., Vavina O.V., Muminova K.T. Molecular determinants of the development of early and late preeclampsia. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2014; 6: 14-9. (in Russian)

3. Brown M.A., Lindheimer M.D., de Swiet M., Van Asshe A., Moutquin J.M. The classification and diagnosis of the hypertensive disorders of pregnancy: statement from the International Society for the Study of Hypertension in Pregnancy (ISSHP). Hypertens. Pregnancy. 2001; 20(1): IX-XIV.

4. Sidorova I.S., Nikitina N.A. Pathogenesis of endotheliosis in preeclampsia. Akusherstvo i ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2015; (1): 72-8. (in Russian)

5. Dolgushina V.F., Syundyukova E.G. The specific features of placental apoptosis and cell proliferation in preeclampsia. Akusherstvo i ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2015; (2): 12-9. (in Russian)

6. Bartel D.P. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions. Cell. 2009; 136(2): 215-33.

7. Baek D., Villen J., Shin C., Camargo F.D., Gygi S.P., Bartel D.P. The impact of microRNAs on protein output. Nature. 2008; 455(7209): 64-71.

8. Griffiths-Jones S., Saini H.K., van Dongen S., Enright A.J. MiRBase: tools for microRNA genomics. Nucleic Acids Res. 2008; 36 (Database issue): D154-8.

9. Mouillet J.F., Chu T., Sadovsky Y. Expression patterns of placental microRNAs. Birth Defects Res. A Clin. Mol. Teratol. 2011; 91(8): 737-43.

10. Fu G., Brkic J., Hayder H., Peng C. MicroRNAs in human placental development and pregnancy complications. Int. J. Mol. Sci. 2013; 14(3): 5519-44.

11. Higashijima A., Miura K., Mishima H., Kinoshita A., Jo O., Abe S. et al. Characterization of placenta-specific microRNAs in fetal growth restriction pregnancy. Prenat. Diagn. 2013; 33(3): 214-22.

12. Zhu X.M., Han T., Sargent I.L., Yin G.W., Yao Y.Q. Differential expression profile of microRNAs in human placentas from preeclamptic pregnancies vs normal pregnancies. Am. J. Obstet. Gynecol. 2009; 200(6): 661. e1-7.

13. Mouillet J.F., Ouyang Y., Coyne C.B., Sadovsky Y. MicroRNAs in placental health and disease. Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 213(4, Suppl.): S163-72.

14. Tsochandaridis M., Nasca L., Toga C., Levy-Mozziconacci A. Circulating microRNAs as clinical biomarkers in the predictions of pregnancy complications. Biomed. Res. Int. 2015; 2015: 294954.

15. Li H., Ge Q., Guo L., Lu Z. Maternal plasma miRNAs expression in preeclamptic pregnancies. Biomed. Res Int. 2013; 2013: 970265.

16. Li P., Guo W., Du L., Zhao J., Wang Y., Liu L., Hu Y., Hou Y. MicroRNA-29b contributes to pre-eclampsia through its effects on apoptosis, invasion and angiogenesis of trophoblast cells. Clin. Sci. 2013; 124(1): 27-40.

17. Murphy M.S., Casselman R.C., Tayade C., Smith G.N. Differential expression of plasma microRNA in preeclamptic patients at delivery and 1 year postpartum. Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 213(3): 367. e1-9.

18. Doridot L., Houry D., Gaillard H., Chelbi S.T., Barbaux S., Vaiman D. Mir-34a expression, epigenetic regulation, and function in human placental diseases. Epigenetics. 2014; 9(1): 142-51.

19. Sun M., Chen H., Liu J., Tong C., Meng T. MicroRNA-34a inhibits human trophoblast cell invasion by targeting MYC. BMC Cell Biol. 2015;16: 21.

Received 23.05.2016

Accepted 27.05.2016

About the Authors

Prozorovskaya Ksenia N., obstetrician-gynecologist in obstetrical observational department, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +79036240036. E-mail: ksenyap@inbox.ru
Fayzullin Leonid Z., M.D., senior scientific researcher in the laboratory of molecular and genetic methods, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954384951. E-mail: l_faizullin@oparina4.ru
Karnauhov Vitaliy N., junior scientific researcher in the laboratory of molecular and genetic methods, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954384951.
Kan Natalia E., M.D., PhD; the head of the obstetrical observational department, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +79262208655. E-mail: kan-med@mail.ru
Tyutyunnik Victor L., M.D., PhD; the head of the obstetric physiological department, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +79039695041. E-mail: tioutiounnik@mail.ru
Ganichkina Maria B., junior scientific researcher, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +79152397743. E-mail: mariaganichkina@yandex.ru
Sergunina Olga A., obstetrician-gynecologist in obstetrical observational department, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +79639948469. E-mail: o_sergunina@oparina4.ru
Tyutyunnik Nataliya V., the resident, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954380988. E-mail: tysia07@bk.ru
Chausov Andrey A., junior scientific researcher in the department of medical and social researches, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954386948. E-mail: a_chausov@oparina4.ru
Mantrova Diana A., junior scientific researcher, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +79096367259. E-mail:d-mantrova@yandex.ru
Trofimov Dmitry U., M.D., PhD, the Head of the laboratory of molecular and genetic methods, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954384951. E-mail: d_trofimov@oparina4.ru

For citations: Prozorovskaya K.N., Faizullin L.Z., Karnaukhov V.N., Kan N.E., Tyutyunnik V.L., Ganichkina M.B., Sergunina O.A., Chausov A.A., Tyutyunnik N.V., Mantrova D.A., Trofimov D.Yu. Quantification of plasma microRNA expression in pregnant women with preeclampsia. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2016; (12): 47-52. (in Russian)
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.12.47-52

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.